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调控免疫-干细胞互作的宏孔支架组成优化促进骨再生
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年07月02日 来源:npj Regenerative Medicine 6.4
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本研究针对关键尺寸骨缺损难以自愈的临床难题,通过构建可调组成(Gel/CS)的微带(μRB)支架,首次揭示了Gel50_CS50比例通过增强巨噬细胞(Mφ)-间充质干细胞(MSC)互作,显著促进血管生成和骨再生。单细胞测序(scRNA-seq)结合CellChat分析发现该支架富集促修复型M2样Mφ亚群,激活WNT、TGFβ等通路,为无外源因子骨再生提供了新型生物材料策略。
骨再生的免疫调控密码:解码支架组成如何重塑细胞对话
骨骼作为人体最活跃的再生组织之一,其修复过程高度依赖免疫细胞与干细胞的精密协作。然而当遭遇创伤或肿瘤切除导致的临界尺寸骨缺损(critical-sized defect)时,这种再生能力往往失效。传统组织工程策略多聚焦于直接递送生长因子或干细胞,但存在成本高昂、免疫排斥等问题。更关键的是,巨噬细胞(Mφ)作为损伤微环境的"指挥家",其与间充质干细胞(MSC)的互作机制尚未被有效利用。
斯坦福大学Fan Yang团队在《npj Regenerative Medicine》发表的研究,通过精巧设计明胶(Gel)与硫酸软骨素(CS)复合的微带(μRB)支架,首次证明50:50配比(Gel50_CS50)能通过调控免疫-干细胞对话实现无外源因子的骨再生。研究人员创新性地采用3D共培养模型模拟体内微环境,结合单细胞转录组(scRNA-seq)和CellChat算法,揭示了材料组成如何编程Mφ亚群命运,进而激活促再生信号网络的分子密码。
关键技术方法
研究通过湿法纺丝制备五种Gel/CS比例(100%Gel、90:10、50:50、25:75、100%CS)的μRB支架,表征其理化性质后,建立MSC单培养和MSC-Mφ(5:1)共培养3D模型评估成骨分化。采用小鼠颅骨缺损模型(直径3.5mm)验证材料效果,通过μCT、组织学及流式细胞术分析再生过程。对植入7天后的组织进行单细胞测序,结合生物信息学分析细胞互作网络。关键实验均设置≥3次生物学重复。
支架特性与体外筛选
通过SEM和共聚焦成像证实所有μRB支架均保持>100μm的宏孔结构(图1A),力学测试显示CS>50%时模量显著增加。在MSC单培养中,100%CS组通过上调Runx2、骨钙素(osteocalcin)等标志物表现出最强成骨活性(图1B,D)。但共培养模型却呈现截然不同的结果:Gel50_CS50组在5周时矿化面积达峰值(图1C,D),而高CS组因诱导M1型Mφ极化(CD86+、TNF-α分泌增加)显著抑制骨形成(图3A-D)。这种"体外矛盾"提示免疫微环境对材料效应的调控至关重要。
体内再生验证
颅骨缺损实验显示,Gel50_CS50组2周即实现50%缺损修复,6周时新生骨体积(BV/TV)显著高于对照组(图2A,B)。组织学显示该组胶原沉积更丰富(图2C,D),CD31+血管密度增加3倍(图2E),且早期(7天)即招募更多CD90+ MSC(图2F,G)。值得注意的是,100%CS组虽在单培养中表现优异,体内却因持续炎症(M1 Mφ占比70%)导致再生失败,印证了共培养模型的预测优势。
单细胞解码互作机制
scRNA-seq在7天时间点捕获到14个细胞群体(图4A),其中Gel50_CS50特异性富集M2样2型Mφ(占18%,Gel100组仅1%)。该亚群高表达Arg1、Fn1等基因(图4B),功能富集于血管生成(GO:0045446)和骨化(GO:0043542)(图4C)。流式验证显示该组CD206+Arg1+ Mφ比例达45%(图4E)。CellChat分析揭示Gel50_CS50显著增强Mφ-基质细胞的WNT、PDGF通路交流(图5D),其中M2样2型Mφ通过OSM通路激活基质细胞增殖(图6F)。
临床转化意义
该研究突破性地证明:1)材料组成通过编程Mφ亚群比例调控再生微环境;2)3D共培养模型较传统单培养更能预测体内效果;3)Gel50_CS50支架无需外源因子即可启动"自驱动"再生程序。这种基于ECM仿生的免疫调控策略,为骨缺损治疗提供了具临床转化潜力的现成(off-the-shelf)解决方案。未来研究可探索该支架在承重骨缺损中的应用,并进一步解析Mφ亚群动态转化轨迹。
(注:所有数据均来自原文,图示引用已转换为图X格式,专业术语首次出现时标注英文,Mφ、MSC等缩写保留原文格式)
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