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基于病毒受体捕获与环介导等温扩增技术实现传染性SARS-CoV-2的快速精准检测
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年07月02日 来源:Virologica Sinica 4.3
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为解决RT-qPCR无法区分完整传染性病毒与非传染性病毒颗粒的问题,研究人员开发了结合hACE2受体捕获与RT-LAMP的新型检测方法。该技术通过特异性捕获具有感染活性的冠状病毒颗粒,实现了90 PFU/mL的检测限、96.2%灵敏度和100%特异性,为疫情防控提供了精准高效的POCT解决方案。
研究背景
新冠疫情暴发以来,全球已累计确诊超6亿例,传统RT-qPCR检测虽广泛应用,但存在关键缺陷:无法区分完整传染性病毒颗粒与失活病毒或游离RNA。这导致过度隔离和资源浪费,尤其在评估环境样本传播风险时更为突出。现有解决方案如细胞培养法需BSL-3实验室,而CRISPR/Cas9等技术又面临设备依赖性强等问题。如何建立快速、精准且能区分病毒活性的检测方法,成为疫情防控的迫切需求。
广州国家实验室与中山大学的研究团队在《Virologica Sinica》发表创新成果,提出将病毒受体捕获与逆转录环介导等温扩增(RT-LAMP)相结合的检测策略。该研究通过构建rVSV-eGFP-SARS-CoV-2假病毒模型,验证了重组hACE2蛋白对传染性病毒的特异性捕获能力,开发出可在30分钟内完成可视化检测的方法,为传染病防控提供了新工具。
关键技术方法
研究采用假病毒构建(rVSV-eGFP-SARS-CoV-2)、原核表达重组hACE2蛋白、噬斑试验定量病毒滴度、ELISA板受体捕获、RT-qPCR/RT-LAMP平行检测等核心技术。其中RT-LAMP采用针对VSV N基因设计的6组引物,通过pH指示剂实现肉眼判读;环境样本检测涵盖唾液和物体表面拭子模拟实验。
研究结果
假病毒模拟SARS-CoV-2细胞附着
构建的rVSV-eGFP-SARS-CoV-2假病毒携带SARS-CoV-2刺突蛋白(S蛋白)和GFP报告基因,感染Vero E6细胞后产生典型荧光(图1B)。噬斑试验证实其滴度达106 PFU/mL(图1C),为后续实验提供安全有效的替代模型。
重组hACE2蛋白的功能验证
通过原核表达系统获得92 kDa重组hACE2蛋白(图2B),Western blot验证其抗原性(图2C)。中和实验显示该蛋白剂量依赖性地抑制假病毒感染(图2D-E),10 μg/mL时荧光强度降低85%(P<0.0001),证实其可竞争性结合病毒S蛋白。
受体捕获区分病毒活性
ELISA板固定hACE2捕获病毒后,RT-qPCR显示传染性病毒Ct值显著低于热灭活病毒(P<0.0001)(图3B)。捕获的病毒接种细胞后仍具感染性(图3C),而环境稳定性实验显示病毒在纸张表面9小时、玻璃表面96小时丧失捕获能力(图3D),证明该方法可动态监测病毒活性衰减。
RT-LAMP可视化检测
针对VSV N基因设计的引物组(附表S2)在65°C恒温条件下扩增,通过颜色变化(粉红→黄)实现肉眼判读(图4C)。该方法特异性检测ACE2依赖性病毒(如HCoV-NL63),对HCoV-OC43等其他冠状病毒无交叉反应(图4D),检测限达90 PFU/mL(图4E)。
临床样本验证
在模拟唾液和物体表面样本中,该方法保持96.8%准确率(图5E),唯一假阴性出现在最低浓度组(90 PFU/mL),反映极低病毒载量下的技术局限。
结论与意义
该研究创新性地将病毒受体亲和性与等温扩增技术结合,突破传统核酸检测的活性判别瓶颈。hACE2捕获确保只有具备完整S蛋白的病毒颗粒被检出,而RT-LAMP实现无需仪器的快速可视化读值。虽然低病毒载量样本存在灵敏度限制,但该方法在疫情暴发时可作为社区筛查的有力工具。更深远的意义在于,通过替换不同病毒受体(如MERS-CoV的DPP4),该技术框架可扩展至其他高致病性冠状病毒的活性检测领域。
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