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酵母多重代谢工程实现高效全反式维甲酸生物合成:从β-胡萝卜素底盘构建到1.84 g/L发酵突破
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年07月05日 来源:Microbial Cell Factories 4.3
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本研究针对全反式维甲酸(ATRA)生物合成效率低下的问题,通过构建β-胡萝卜素高产酵母底盘、优化ATRA模块基因组合、调控内质网(ER)尺寸、平衡NADPH/NAD+比例等系统代谢工程策略,最终在5-L生物反应器中实现1.84 g/L ATRA产量,创下微生物合成新纪录,为维生素A衍生物的工业化生产奠定基础。
全反式维甲酸(ATRA)作为维生素A的活性衍生物,在细胞分化、免疫调节和皮肤疾病治疗中具有重要作用。然而传统化学合成法存在工艺复杂、环境污染等问题,而微生物合成又面临产量低、转化效率不高等瓶颈。目前报道的最高ATRA产量仅为545.28 mg/L,远不能满足市场需求。更关键的是,现有研究对ATRA合成途径的亚细胞定位、辅因子平衡等关键科学问题缺乏系统认识,制约着工业化进程的推进。
中国科学院天津工业生物技术研究所的研究团队在《Microbial Cell Factories》发表研究,通过多重代谢工程策略改造酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae),实现了ATRA的高效生物合成。研究首先构建高产β-胡萝卜素的酵母底盘,随后系统优化ATRA合成模块,并创新性地通过调控细胞器功能、辅因子供应等策略提升合成效率,最终在5-L生物反应器中获得1.84 g/L的ATRA产量,较此前最高水平提高3.4倍。
研究采用CRISPR-Cas9基因编辑、荧光共定位、转录因子调控等关键技术。通过比较不同来源的β-胡萝卜素合成酶基因组合,筛选出Xanthophyllomyces dendrorhous来源的XdCrtYB/XdCrtI最优组合;利用GFP/RFP标记确定关键酶blh的内质网定位;过表达INO2转录因子扩大内质网体积;引入大肠杆菌(Escherichia coli)的sthA基因平衡NADPH/NAD+比例;通过Vitreoscilla血红蛋白(VHb)提升氧供应;采用m6A甲基转移酶IME4增强乙酰辅酶A供应。
研究团队首先比较了不同来源的β-胡萝卜素合成酶组合,发现X. dendrorhous来源的XdCrtYB/XdCrtI在酿酒酵母中表现最优,与先前在Yarrowia lipolytica中的研究结论相反。通过更换BY-HMG*3底盘平台并增加基因拷贝数,最终构建的Car09菌株β-胡萝卜素产量达129.4 mg/L,较初始菌株提高5倍。
在ATRA合成模块筛选中,发现来自海洋细菌MED66A03的blh与小鼠RALDH2组合效果最佳。引入该模块的RA05菌株在双相培养系统中可产生98.1 mg/L ATRA,同时积累154.9 mg/L β-胡萝卜素,表明代谢流分配仍需优化。
荧光共定位证实blh定位于内质网(ER),而RALDH2位于细胞质。通过过表达调控ER大小的转录因子INO2,使RA06菌株的ATRA产量提升34%,总类维生素A产量增加67%,证实ER扩容可显著促进膜结合酶的功能。
引入大肠杆菌的转氢酶sthA后,RA07菌株的β-胡萝卜素产量翻倍,但ATRA产量略有下降。这表明sthA介导的NADPH再生更有利于上游代谢流,提示需要更精确的辅因子调控策略。
由于blh催化的β-胡萝卜素裂解需要氧气参与,表达VHb使RA08菌株的ATRA产量提高49.2%,证实氧供应是限制ATRA合成的关键因素之一。
通过m6A甲基化修饰调控乙酰辅酶A代谢,RA09菌株的总维生素A产量提升17.8%,显示表观遗传调控在代谢工程中的应用潜力。
在5-L生物反应器中,经过营养缺陷标记回复的RA12菌株采用两阶段发酵策略,最终ATRA产量达1.84 g/L,创下微生物合成新纪录。但发酵液中仍残留3.40 g/L β-胡萝卜素,表明ATRA合成模块仍有优化空间。
该研究通过系统代谢工程策略,首次在酿酒酵母中实现克级ATRA生产。创新点包括:揭示blh的ER定位特征并建立ER扩容策略;发现ATRA对blh的反馈抑制现象;开发多模块协同优化方案。这些发现不仅为ATRA工业化生产奠定基础,也为其他疏水性天然产物的微生物合成提供新思路。值得注意的是,研究过程中发现的代谢流分配不均、辅因子需求冲突等问题,为后续研究指明了方向,如开发动态调控系统、工程化细胞器互作等。该成果标志着我国在维生素衍生物合成生物学领域取得重要突破。
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