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TGF-β1/IFN-γ双重许可的人骨髓间充质基质细胞外囊泡的免疫调节作用:从分子机制到治疗潜力
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年07月10日 来源:Stem Cell Research & Therapy 7.1
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本研究针对炎症性疾病治疗中细胞疗法的局限性,探索了TGF-β1/IFN-γ双重许可的人骨髓间充质基质细胞(MSCs)来源的小细胞外囊泡(EVs)的免疫调节功能。通过体外THP-1巨噬细胞极化模型和PBMC共培养实验,发现许可EVs能显著抑制促炎因子TNF-α/IL-1β分泌、促进抗炎表型转化,并通过上调PD-L1和CD73增强Treg细胞诱导能力。t-SNE分析揭示了独特的免疫调节特征,转录组数据鉴定出GPR68/LIMK2等7个关键差异基因,为开发无细胞免疫疗法提供了新策略。
在免疫相关疾病治疗领域,间充质基质细胞(MSCs)因其强大的免疫调节能力被视为革命性疗法。然而,细胞治疗存在存活率低、致瘤风险等瓶颈问题。更棘手的是,未经处理的MSCs在炎症微环境中可能表现出疗效不稳定。这促使科学家将目光转向MSCs分泌的细胞外囊泡(EVs)——这些纳米级“分子邮包”携带母细胞的功能性物质,却规避了细胞移植的缺陷。但普通EVs的免疫调节效力是否足以满足临床需求?如何进一步提升其治疗效果?
爱尔兰高威大学(University of Galway)再生医学研究所的研究团队在《Stem Cell Research & Therapy》发表的研究给出了创新解决方案。他们采用转化生长因子-β1(TGF-β1)和干扰素-γ(IFN-γ)双重细胞因子预刺激(licensing)人骨髓MSCs,通过尺寸排阻色谱法分离小EVs,综合运用纳米颗粒追踪分析(NTA)、流式细胞术和透射电镜(TEM)进行表征。在THP-1巨噬细胞极化模型和PBMC共培养体系中,结合t-SNE降维分析和公共转录组数据挖掘,系统评估了许可EVs的免疫调节特性并探索其分子机制。
关键实验方法
研究使用健康供者骨髓来源的MSCs,经TGF-β1(50 ng/mL)和IFN-γ(50 ng/mL)双重刺激72小时后收集条件培养基。通过差速离心结合qEV 35 nm色谱柱分离EVs,采用NTA检测粒径分布(78.8-86.3 nm),流式验证CD9/CD63/CD81阳性率(54-81%)。功能实验包括:①THP-1巨噬细胞极化实验(检测CD163/CD206、IL-1β/TNF-α/IL-10和NO水平);②PBMC增殖抑制实验(CellTrace染色);③Treg诱导分析(CD4+CD25+FOXP3+);④t-SNE/DBSCAN聚类算法处理多参数流式数据;⑤整合GSE122091/GSE46019数据集筛选差异基因。
研究结果
EVs表征

巨噬细胞极化调控

T细胞免疫调节

Treg诱导特征

分子机制探索
转录组分析发现GPR68(酸敏感受体)、LIMK2(细胞骨架调节因子)和LIPG(脂代谢酶)在两种许可条件下均上调,而EFNA5(轴突导向分子)等4个基因下调。这些基因可能通过调控EVs的货物分选(如LIMK2影响多泡体-膜融合)或免疫微环境感知(如GPR68)增强EVs功能。
结论与意义
该研究首次证实TGF-β1/IFN-γ双重许可策略可显著提升MSC-EVs的免疫调节效能,其作用特点包括:①剂量依赖性抑制先天/适应性免疫;②通过非增殖途径诱导功能性Treg;③形成独特的PD-L1high/CD73+免疫调节特征。发现的7个核心差异基因为质量标志物筛选提供了新靶点。相较于传统MSC疗法,这种无细胞策略具有稳定性高、易标准化生产等优势,在自身免疫病(如类风湿关节炎)和移植排斥防治中展现广阔前景。未来需在动物模型中验证其体内效果,并探索关键分子(如LIPG修饰的脂质体)的工程化应用可能。
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