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益生菌Cetobacterium somerae通过精氨琥珀酸促进宿主尿循环缓解氨中毒的机制解析
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年07月13日 来源:Microbiome 13.8
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氨中毒(AI)是水产养殖中的常见胁迫因子,可导致鱼类生长抑制和死亡。宁波大学与贵州大学联合团队通过补充益生菌Cetobacterium somerae ceto(CSC),发现其通过合成精氨琥珀酸(ARA)激活肠道和肝脏的尿循环(ureagenesis),显著降低黄颡鱼(Pelteobagrus fulvidraco)的氨积累。研究首次揭示CSC的asnA-ansA/B-argG基因簇驱动ARA合成,并通过抑制fumA-fumB-argH基因簇减少ARA降解。该机制为水产益生菌开发提供了新靶点,相关成果发表于《Microbiome》。
研究背景:氨中毒——水产养殖的隐形杀手
氨(NH3)作为氨基酸代谢的副产物,是水生动物面临的主要环境毒素之一。在水质恶化条件下,氨浓度超过1.25 mg/L总氨氮(T-AN)即会抑制鱼类生长,达10 mg/L T-AN时可导致黄颡鱼大规模死亡。传统研究认为肝脏是氨解毒的核心器官,通过尿循环将毒性氨转化为尿素排出。然而,近年研究发现肠道微生物群在氨代谢中扮演关键角色——尤其是一种名为Cetobacterium somerae的厌氧益生菌,其在氨胁迫下丰度显著升高,但具体作用机制尚未明确。这促使研究者深入探索:C. somerae如何帮助宿主对抗氨中毒?其核心效应物是什么?
研究策略:多模型联动解析微生物-宿主互作
为揭示C. somerae的机制,宁波大学李明团队联合贵州大学研究人员开展系列实验:
氨中毒模型:用125 mg/L T-AN(黄颡鱼半致死浓度LC50)构建急性中毒模型,通过灌胃活菌/灭活CSC比较效果;
伪无菌模型:采用万古霉素+甲硝唑+新霉素三联抗生素清除肠道菌群,评估CSC的独立作用;
基因干预模型:通过RNA干扰(RNAi)敲低肝脏精氨琥珀酸裂解酶(ASL),结合外源ARA补充验证功能;
多组学整合:结合三代16S rRNA测序、全基因组测序(PacBio+Illumina双平台)、代谢组学(LC-MS)和qPCR绝对定量分析菌群-代谢物网络。
核心发现:ARA——微生物赋能宿主解毒的关键钥匙
通过急性氨中毒模型发现:
AI导致肠道C. somerae丰度上升3.9倍,但不足以逆转氨积累(血清氨↑82%);
口服活CSC使其定植量提升14.7倍,显著降低血清/肝脏/肠道氨水平(↓53%~67%),尿素合成↑2.1倍(图1C-H);
热灭活CSC无此效果,证明活菌的代谢活性是解毒前提(图1B)。
全基因组分析揭示CSC染色体含8个环状DNA单元(总长3.4 Mb),关键发现包括:
合成模块:asnA-ansA/B-argG基因簇驱动天冬氨酸(Asp)和天冬酰胺(Asn)转化为ARA;
保护模块:fumA-fumB-argH基因簇吸收环境富马酸/苹果酸,抑制ARA降解(图5, 6D);
代谢组验证:CSC培养上清中ARA↑14.9倍,而底物Asp↓76%(图6C)。
伪无菌模型证实:
CSC定植后肠道ARA↑8.3倍,尿素↑3.2倍(图8A);
肝脏中ARA↑5.6倍,伴随ASS(精氨琥珀酸合成酶)、ASL、ARG(精氨酸酶)表达上调(图7I-L);
关键基因ass/asl/arg表达量提升2.5-4.1倍(P<0.01),表明ARA激活肠肝双器官尿循环。
通过RNAi-ARA交叉实验证明:
ASL敲低(shASL)使肝脏ARG蛋白↓62%,完全抵消ARA的降氨作用(图9K-N);
外源ARA使中毒鱼血清氨↓58%,但联合shASL干预时氨水平反弹↑81%(图9B-C);
证实ARA需通过ASL转化为精氨酸(Arg)才能激活下游尿素合成。
结论与意义:微生物赋能解毒的新范式
本研究首次阐明:Cetobacterium somerae ceto(CSC)通过合成精氨琥珀酸(ARA)充当“微生物效应物”,激活宿主肠-肝双器官尿循环,将毒性氨转化为尿素。其核心机制依赖asnA-ansA/B-argG基因簇的ARA合成能力及fumA-fumB-argH的代谢保护作用(图8C)。该发现突破传统“肝脏中心论”,揭示肠道菌群可通过提供关键代谢中间体远程调控系统解毒通路,为水产益生菌开发提供新思路——通过定向补充ARA合成菌或代谢产物,有望缓解集约化养殖中的氨中毒危机。未来研究将聚焦ARA的肠肝转运机制及CSC规模化应用工艺,推动绿色水产养殖发展。
注:专业术语缩写首次出现时标注全称(如精氨琥珀酸裂解酶ASL),上下标严格遵循原文格式(如T-AN、LC50),统计显著性标注P<0.05/P<0.01。*
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