眼内追踪脂肪间充质干细胞：整合IVIS成像与Alu PCR技术提升人源细胞检测效能

为解决细胞移植后动态监测难题，研究人员通过慢病毒转染构建CAG-ffLuc-cp156标记的人脂肪间充质干细胞（adMSCs），结合IVIS活体成像系统和Alu-PCR技术，建立了一套亚结膜注射后细胞迁移追踪体系。研究表明adMSCs在受体中7天内完全清除，未检测到人源DNA残留，为干细胞治疗安全性评估提供了重要方法学支持。

　　

在再生医学领域，干细胞治疗犹如一把双刃剑——既能修复组织损伤，又潜藏着肿瘤形成和免疫排斥的风险。传统Z-stack成像等技术只能捕捉静态瞬间，就像试图用单张照片还原整部电影情节。当科学家们将人类脂肪间充质干细胞（adMSCs）注入眼部时，这些细胞究竟去了哪里？能存活多久？是否会失控增殖？这些问题直接关系到临床治疗的安全窗。

研究人员设计了一项精妙的追踪实验：首先通过慢病毒载体将CAG启动子驱动的萤火虫荧光素酶基因（CAG-ffLuc-cp156）导入adMSCs，这些改造后的细胞在注射后能持续"发光"。IVIS活体成像系统就像生物体内的GPS，实时记录发光信号强弱和分布位置。当光学信号消失后，Alu-PCR技术则化身DNA侦探，通过检测人类特有的Alu序列来确认细胞是否真正"销声匿迹"。

关键技术包括：1）慢病毒介导的荧光素酶基因转染；2）IVIS Spectrum生物发光成像系统连续7天监测；3）基于人类特异性Alu序列的定量PCR检测。

【Abstract】

研究确立了亚结膜注射adMSCs的标准操作流程，证实IVIS与Alu-PCR联用可突破传统成像技术的时空局限。

【Introduction】

通过对比传统成像技术的缺陷，指出实时动态监测对评估干细胞治疗安全性的必要性，特别强调肿瘤形成风险是临床转化的主要障碍。

【Method】

转染效率达90%的adMSCs保持正常形态和增殖能力，注射后每日进行全身扫描，第7天处死动物后取主要器官进行基因组分析。

【Result】

IVIS数据显示发光信号在第3天达峰后迅速衰减，第7天完全消失；Alu-PCR在所有检测组织中均未发现人类DNA，证实adMSCs被完全清除。

【Conclusion】

该研究建立的"光学-分子"双模态追踪体系，为干细胞治疗提供了一套标准化安全性评估方案。特别值得注意的是，adMSCs表现出的短期存留特性，显著降低了致瘤风险，这对糖尿病视网膜病变等眼部疾病的细胞治疗具有重要指导价值。研究结果发表在《Regenerative Therapy》上，为后续临床研究提供了关键的方法学参考和安全数据支持。