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NT2来源的星形胶质细胞-神经元共培养模型揭示生理相关性并提升研究有效性
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年07月26日 来源:Cellular & Molecular Biology Letters 9.2
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本研究通过先进的蛋白质组学方法,首次全面表征了NT2细胞系分化的神经元和星形胶质细胞共培养体系。研究人员系统比较了不同成熟阶段的纯星形胶质细胞培养(eA和mA)与神经元富集共培养(Neu)的蛋白表达谱,发现共培养条件下的星形胶质细胞蛋白特征更接近生理状态。电生理实验证实高比例星形胶质细胞对神经元功能成熟至关重要,为神经科学研究提供了更接近体内环境的体外模型。
在神经科学研究领域,获取功能成熟的人源神经元和星形胶质细胞一直是个重大挑战。传统体外模型往往难以准确模拟这两种细胞在体内的复杂相互作用,而直接从人脑获取原代细胞又面临伦理和技术限制。更棘手的是,现有模型常使用啮齿类动物细胞,但越来越多的证据表明人类星形胶质细胞在形态和功能上都与小鼠存在显著差异——比如人类星形胶质细胞对氧化应激更敏感,线粒体功能和解毒机制也不同。这些差异使得建立可靠的人源神经细胞模型成为推动神经科学研究的关键。
雅盖隆大学(Jagiellonian University)生物物理与生物技术学院的研究团队在《Cellular》杂志发表了一项突破性研究。他们利用NT2(Ntera-2)人多能性胚胎癌细胞系,通过全反式维甲酸(RA)诱导分化,建立了包含神经元和星形胶质细胞的共培养体系。研究人员采用无标记质谱技术定量分析了9000多种蛋白质,结合免疫细胞化学和电生理记录,系统评估了不同培养条件下细胞的分子特征和功能特性。研究发现神经元富集的共培养体系(60%神经元和40%星形胶质细胞)最能反映神经组织的生理状态,其中星形胶质细胞表现出更成熟的蛋白表达谱。特别值得注意的是,电生理实验证实适当比例的星形胶质细胞对神经元功能成熟至关重要。
研究采用了几个关键技术方法:1)通过RA分阶段诱导NT2细胞产生神经元和星形胶质细胞;2)无标记定量蛋白质组学分析不同培养条件下的蛋白表达谱;3)免疫荧光染色验证特定标记蛋白的表达和定位;4)全细胞膜片钳记录评估神经元电生理特性;5)钙成像检测星形胶质细胞功能活性。
分化效率与纯度
研究首先优化了NT2细胞向神经元和星形胶质细胞的分化方案。经过4周RA处理可获得约30%的神经元前体细胞,再经过3周成熟培养获得神经元富集培养物(Neu,含60%神经元和40%星形胶质细胞)。早期星形胶质细胞(eA)培养3周后纯度>98%,成熟星形胶质细胞(mA)培养6周后纯度达95%。免疫染色显示Neu培养中所有神经元样细胞均表达典型神经元标记物MAP2、SYN1和NeuN。
蛋白质组特征
质谱分析鉴定出9113种非冗余蛋白质。神经元富集培养中发现了45种已知神经元标记物,包括突触蛋白(NCAM1、SYN1、SNAP25)、细胞骨架蛋白(MAP1A、MAP1B、MAP2)和RNA结合蛋白(ELAVL2/3/4)。星形胶质细胞标记物GFAP在mA培养中表达最高,而早期星形胶质细胞(eA)仅少量表达。Western blot显示GFAP水平随星形胶质细胞成熟逐渐增加。

转录因子调控网络
研究发现mA细胞特异性表达MSX1和RFX4等转录因子。NFIA、NFIB、NFIC和NFIX等核因子I家族成员在星形胶质细胞分化中起关键作用。SOX9在eA细胞中上调,而SOX3仅在未分化NT2细胞中检测到,这与SOX3抑制星形胶质细胞分化的报道一致。
功能验证
电生理记录显示,在含45%神经元的培养物中,神经元表现出最接近生理状态的兴奋性,动作电位数量和形状都更成熟。钙成像证实mA细胞能响应ATP刺激产生钙波传播。这些功能实验验证了共培养体系中细胞的生理活性。
通路分析
IPA分析显示Neu和mA细胞中mTOR通路和线粒体代谢显著上调。胰岛素分泌信号、神经营养因子(BDNF、NGF、VEGF)通路在分化细胞中激活。特别值得注意的是,雌激素受体信号通路在神经元富集培养中最为活跃,提示其在神经元-星形胶质细胞互作中的潜在作用。
这项研究有几个重要启示:首先,NT2来源的星形胶质细胞-神经元共培养体系比单一培养更能模拟神经组织的生理状态;其次,神经元和星形胶质细胞的互作是双向的——神经元促进星形胶质细胞成熟(如通过PAX6上调GLT-1),而星形胶质细胞又为神经元功能成熟提供必要支持;最后,培养时间不是决定星形胶质细胞成熟的唯一因素,细胞间接触同样关键。
研究建立的共培养模型为神经科学研究提供了重要工具,特别适用于研究神经元-胶质细胞互作、神经发育障碍和神经退行性疾病的机制。该模型的人源特性使其在转化医学研究中具有独特优势,可为药物筛选和毒性测试提供更接近人体的实验平台。此外,研究揭示的转录调控网络和信号通路为理解神经细胞分化机制提供了新视角。
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