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综述:解码疼痛:用于机制研究和药物发现的下一代体外系统
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年08月18日 来源:The FASEB Journal? 4.2
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这篇综述深入探讨了慢性疼痛研究领域的前沿进展,重点介绍了基于诱导多能干细胞(iPSCs)的体外疼痛模型在揭示人类疼痛病理生理机制和药物开发中的应用。文章系统梳理了疼痛感知的分子机制(涉及TRP、Na+/K+通道等靶点),比较了传统动物模型的局限性,并详细评述了3D培养、微流控芯片(MEA)和共培养技术如何模拟外周神经系统(PNS)与中枢神经系统(CNS)的交互作用,为开发新型镇痛药提供了更精准的研究平台。
疼痛作为进化保留的防御机制,可分为急性与慢性两种状态。全球约20%人群受慢性疼痛困扰,其与骨关节炎(OA)、癌症等疾病密切相关,每年造成约6000亿美元的经济负担。疼痛感知涉及外周组织损伤信号通过背根神经节(DRG)伤害性感受器转化为电信号,经脊髓传递至大脑的复杂过程。
临床主要依赖非甾体抗炎药(NSAIDs)和阿片类药物,但前者对中重度疼痛效果有限且易引发胃肠道副作用,后者则存在成瘾风险。穿戴式神经刺激设备虽兴起,但78亿美元的药物市场仍占主导地位,凸显对靶向外周神经的新型镇痛药的迫切需求。
伤害性感受器通过TRPV1(辣椒素受体)、TRPA1(芥末受体)等离子通道感知热、机械和化学刺激。炎症环境下,巨噬细胞、滑膜成纤维细胞释放TNF-α、IL-1β等促炎因子,通过GPCR通路降低离子通道激活阈值,导致外周敏化。中枢层面,小胶质细胞和星形胶质细胞通过BDNF等介质维持慢性疼痛状态。
啮齿类动物模型与人类疼痛基因表达差异显著(如NaV1.8/1.9通道),导致95%的临床前药物试验失败。行为学测试如甩尾实验(Tail-flick)仅能间接评估疼痛,且伦理争议日益突出。
iPSC技术通过SMAD信号通路抑制剂(SB431542/LDN-193189)分化为伤害性感受器,84%的离子通道基因与原生DRG神经元重叠。3D培养结合微电极阵列(CMOS-MEA)可实时监测单细胞电活动,而PDMS微流控芯片能构建"皮肤-神经元"共培养系统,证实角质形成细胞可增强TRPV1表达。
关节模型:滑膜成纤维细胞分泌CXCL2使神经元对辣椒素敏感性提升3倍
免疫交互:树突状细胞在神经元刺激下IL-12分泌量增加50%
中枢环路:四器官样体(感觉神经元-脊髓-丘脑-皮层)成功模拟SCN9A基因突变导致的痛觉超敏
下一代模型需整合3D生物打印器官样体与多参数生物传感,同时解决患者特异性iPSC批间差异问题。通过"芯片临床试验"策略,有望实现基于NaV1.7/KV7.3通道特性的个性化镇痛方案开发,最终突破慢性疼痛治疗瓶颈。