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小分子BRD1732的细胞内特异性泛素化:一种新型蛋白质翻译后修饰机制
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年08月22日 来源:Nature Chemical Biology 13.7
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这篇突破性研究首次报道了合成小分子BRD1732在细胞内被E3泛素连接酶(RNF19A/B)直接泛素化的现象。通过CRISPR筛选和蛋白质组学分析,作者发现该小分子的氮杂环丁胺次级胺与泛素C端形成共价连接,产生非典型K27连接的二泛素链,导致泛素-蛋白酶体系统(UPS)功能紊乱。这一发现拓展了蛋白质翻译后修饰(PTM)的认知边界,为开发基于小分子的泛素化调控策略提供了全新思路。
BRD1732是依赖RNF19A/B的立体特异性细胞毒素
从立体多样性合成(DOS)文库中筛选出的氮杂环丁胺类化合物BRD1732展现出独特的立体特异性细胞毒性,其(2S,3R,4R)立体异构体的半数抑制浓度(IC50)为1-3 μM,而差向异构体活性降低10-40倍。全基因组CRISPR筛选揭示该效应高度依赖RBR型E3泛素连接酶RNF19A/B及其共享E2结合酶UBE2L3。PRISM平台在580种癌细胞系中的分析证实,RNF19A表达水平与BRD1732敏感性显著相关。
小分子直接泛素化的确证
免疫印迹显示BRD1732处理导致单泛素和双泛素物种异常积累,伴随单泛素分子量微小偏移。液相色谱-质谱(LC-MS)检测到内源性泛素分子量增加387 Da,精确匹配泛素-BRD1732共价加合物的理论值。胰蛋白酶消化实验进一步捕获到Gly-Gly-BRD1732特征片段(m/z=519),质谱碎裂谱图证实该加合物通过泛素C端与氮杂环丁胺环的次级胺形成酰胺键。甲基化修饰实验表明,氮原子甲基化(BRD-NMe)完全阻断泛素化,而羟基甲基化(BRD-OMe)无影响。
泛素化机制的分子基础
在RNF19A/B双敲除(DKO)细胞中,BRD1732诱导的泛素化现象几乎完全消失。外源表达野生型RNF19A或RNF19B可恢复泛素化活性,但缺失RING2结构域催化半胱氨酸(C316)的突变体则无效。值得注意的是,BRD1732处理显著提高RNF19蛋白稳定性,暗示其可能通过变构效应调控E3连接酶活性。UBE2L3敲除同样大幅削弱泛素化效应,证实经典泛素级联反应的参与。
对泛素-蛋白酶体系统的多层面干扰
定量蛋白质组学揭示BRD1732产生双向调控效应:225种蛋白显著积累(包括p21、p27等典型蛋白酶体底物),94种蛋白减少,其中63种与蛋白酶体抑制剂MG132的稳定蛋白重叠。深度覆盖机制分析(DeepCoverMOA)显示其蛋白组学特征与MLN4924(NEDD8活化酶抑制剂)相关性最高(r=0.48)。特别引人注目的是K27连接的二泛素-BRD1732加合物异常积累,该罕见连接类型通常参与核蛋白的p97依赖性加工。点击化学实验证实炔烃修饰的BRD1732(BRD-alkyne)可捕获K27连接的二泛素物种。
特异性抑制泛素依赖性降解
在IKZF3-GFP报告系统中,BRD1732预处理(非共处理)有效阻断来那度胺诱导的CRBN依赖性降解。TNF刺激实验显示,BRD1732通过维持IκBα磷酸化和泛素化但阻断其降解,表明作用位点在蛋白酶体识别阶段。不同于典型蛋白酶体抑制剂,BRD1732不影响鸟氨酸脱羧酶(ODC)等泛素非依赖性底物的降解,但诱导ZFAND5/6等锌指蛋白的RNF19依赖性降解,暗示存在独特的底物选择性。
理论突破与转化价值
该研究首次证实小分子可作为生理性泛素化受体,突破了对翻译后修饰的传统认知。BRD1732的氮杂环丁胺骨架模拟了蛋白质赖氨酸的ε-氨基,但以次级胺形式实现泛素化,这为设计双功能分子引导靶蛋白泛素化提供了模板。K27连接的二泛素加合物表现出特殊的代谢稳定性,可能成为研究该稀有链类型的工具分子。从转化医学角度看,这一发现为开发新型蛋白酶体调控剂和分子胶降解剂开辟了道路,特别是在RNF19高表达的肿瘤治疗中具有潜在应用价值。
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