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冰晶生长与细胞存活:成核温度与羟乙基淀粉对极端温度波动下细胞活性的影响机制研究
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年08月30日 来源:Journal of Thermal Biology 2.9
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本研究针对冷冻细胞产品在运输/处理过程中因温度波动导致的冰晶重结晶损伤问题,通过低温显微镜技术模拟-30°C至-10°C的瞬时升温事件(TWEs),揭示5%二甲基亚砜(DMSO)与6%羟乙基淀粉(HES)组合方案及降低成核温度(-15°C)可协同提升Jurkat细胞存活率(p<0.05),为优化冷冻治疗方案提供新策略。
在生物医药领域,冷冻细胞产品的运输和储存如同在刀尖上跳舞。温度计上几度的波动,就可能让价值连城的干细胞治疗产品变成一堆无用的冰晶废墟。这种被称为"瞬时升温事件"(Transient Warming Events, TWEs)的现象,已成为困扰全球生物银行的隐形杀手。传统观点认为,冰晶重结晶是损伤细胞的罪魁祸首,但加拿大阿尔伯塔大学的研究团队通过精密实验发现,真相远比想象复杂。
研究团队从临床痛点切入:脐带血单位在运输过程中经历的-30°C至-10°C温度波动,会导致干细胞活性和功能显著下降。现有冷冻方案中,二甲基亚砜(DMSO)浓度从2.2%到20%不等,羟乙基淀粉(HES)的使用更是千差万别。更棘手的是,常规控速冷冻仪产生的成核温度差异可达10°C,这些变量如何影响细胞抵御温度波动的能力?为解答这些问题,Nishaka William团队设计了一套精密的实验体系。
关键技术方法包括:采用Linkam FDCS196低温显微镜平台模拟真实运输温度曲线,在-5°C或-15°C诱导成核后,以2°C/min降至-50°C;通过Jurkat细胞模型(ATCC TIB-152)评估5% DMSO与5% DMSO+6% HES(670/0.75)两种冷冻保护剂方案;利用Celleca MX细胞计数器进行膜完整性定量分析(AO/PI染色);结合线性回归模型分析五次TWEs中冰晶面积变化趋势。
冰晶生长动力学研究
在-10°C峰值温度下,冰晶面积增长最为显著(p<0.01)。令人意外的是,添加HES虽然加速重结晶(p=3.66E-09),却提升细胞存活率(p=1.13E-05)。-15°C成核产生的冰晶初始面积更小(p=0.002),且低成核温度在-20°C TWE中显示出保护效应(p=0.007)。这些发现颠覆了"冰晶大小决定损伤程度"的传统认知。
细胞存活率分析
单次TWE实验显示,-10°C组存活率显著低于-20°C/-30°C组(p<0.005)。HES的加入使存活率提升40%-60%,尤其在-15°C成核条件下效果更佳。值得注意的是,-20°C与-30°C组的冰晶生长无差异,但存活率差异显著,暗示除重结晶外,温度依赖性膜应激是关键损伤机制。
作用机制探讨
通过Fox方程计算发现,6% HES将玻璃化转变温度(Tg′)提升80-90°C,限制渗透压应激的作用窗口。低温成核则通过奥斯特瓦尔德熟化理论(Ostwald ripening)产生尺寸均一的冰晶,减缓重结晶速率。研究还提出"双Tg匹配"概念:当细胞内外玻璃化温度同步提升时(如添加脯氨酸),可进一步抵抗深度低温(-120°C)下的损伤。
这项发表于《Journal of Thermal Biology》的研究,为优化细胞治疗产品冷冻方案提供了三重启示:精确控制成核温度(建议-15°C)、合理配伍高分子量CPAs(如HES 670/0.75)、同步调控细胞内外Tg值。这些发现不仅解释临床观察到的方案差异性,更为制定抗温度波动的标准化冷冻协议奠定理论基础。未来研究需在干细胞产品中长期冻存模型中验证这些发现,并探索Tg调节剂在复杂生物制剂中的应用潜力。
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