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综述:三维基因组工程的当前进展及人类疾病治疗机遇
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年09月02日 来源:Research 10.7
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这篇综述系统阐述了CRISPR/Cas系统在哺乳动物三维基因组(3D genome)工程中的突破性应用,聚焦染色质动态构象(A/B区室、TAD、染色质环)与基因表达的调控关系,探讨了通过靶向CTCF/cohesin复合物、表观遗传编辑(如DNMT3A-TET1)等策略干预疾病(如癌症、神经退行性疾病)的潜在治疗路径。
动态染色质三维构象是调控发育和疾病中基因表达的核心机制。通过整合染色质构象捕获技术(如Hi-C)、基因组编辑工具(如CRISPR/Cas)和成像技术(如CRISPRainbow),研究者揭示了基因组在细胞核内的层级结构:染色体疆域(CT)、A/B区室(活跃/沉默染色质)、拓扑关联域(TAD)和染色质环。CRISPR系统通过靶向编辑CTCF结合位点(CBS)或诱导人工染色质环(如CLOuD9),为解析3D基因组与转录的因果关系提供了革命性工具。
真核基因组在微米级核空间内折叠为复杂的三维结构,其层级包括:染色体疆域(非重叠空间)、A区室(开放染色质,富含活性基因)和B区室(封闭染色质,位于核 periphery)。TAD作为功能单元,其边界富集CTCF和cohesin,内部染色质环通过cohesin介导的挤出形成。近期提出的环挤出模型和液-液相分离(LLPS)理论为3D基因组动态提供了机制解释。
染色质可视化与动态追踪
CRISPR成像技术(如dCas9-EGFP、CRISPR-Sirius)实现了活细胞基因组位点的多色标记。CARGO系统通过12个sgRNA质粒追踪增强子-启动子(E-P)互作,而CRISPRdelight利用dCas12a阵列标记非重复序列。杂交技术如CRISPR-LiveFISH整合Cas9/Cas13,同步可视化DNA与RNA。
TAD工程
CTCF的绝缘强度取决于CBS的朝向和数量。删除Pcdh基因TAD边界的外向CBS会导致异常染色质互作,而插入多个CBS可增强绝缘(如Sox2位点)。值得注意的是,急性CTCF耗竭虽破坏TAD结构,但仅少数基因表达显著改变,提示TAD与转录存在解耦现象。
染色质环工程
人工环工具(如CRISPR-ZIPPER)通过dCas9-亮氨酸拉链诱导E-P环化,使报告基因表达提升3倍。化学诱导系统CLOuD9利用ABA受体,可逆调控β-珠蛋白基因座与控制区的接触频率。光控工具LADL通过CIBN-CRY2异源二聚化,在4小时内实现长程环重构。
A/B区室转换
前列腺癌细胞中,AR基因从B区室转至A区室导致激活。CRISPR-ECHO通过ABA诱导HP1α聚集,模拟异染色质致密化,为癌症表观遗传失调提供模型。
TAD异常矫正
T-ALL中MYC基因的TAD融合使其与远端超级增强子接触,驱动致癌表达。通过dCas9-CTCF靶向修复CTCF缺失边界,可部分恢复正常拓扑结构。
DNA甲基化干预
IDH突变胶质瘤中CBS超甲基化导致CTCF结合丧失,去甲基化药物可逆转PDGFRA异常激活。靶向表观编辑工具(如dCas9-DNMT3A)在FXS iPSC中成功去甲基化FMR1基因。
未来需开发多向互作操控工具,结合单细胞多组学(scHi-C)和AI模型(如DeepLoop),揭示3D基因组动态调控的普适规律。精准编辑TAD边界或染色质环,将为癌症、遗传病提供新型疗法。
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