
-
生物通官微
陪你抓住生命科技
跳动的脉搏
RUNX1C-BTG2异构体特异性调控轴:揭示AML化疗耐药与细胞静息的新机制
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年09月11日 来源:Blood Cancer Discovery 11.5
编辑推荐:
本研究发现急性髓系白血病(AML)复发患者中RUNX1长异构体(RUNX1C)通过其独特N端结构域激活转录程序,直接上调BTG2表达,诱导核糖体RNA(rRNA)去腺苷化并降低蛋白合成,促使白血病细胞进入静息状态(quiescence)从而介导化疗耐药。靶向RUNX1C的RNA干预策略可逆转静息状态并增强化疗敏感性,为克服AML复发提供了新治疗策略。
通过对19对AML患者化疗前与复发后骨髓样本的RNA测序数据分析,研究发现复发样本中存在5,859个显著上调的转录本和1,748个下调转录本。选择性剪接分析揭示了670个显著差异剪接事件,其中盒式外显子(cassette exon)占比最高(48.9%)。值得注意的是,转录因子RUNX1的长异构体RUNX1C在复发样本中特异性上调,而其短异构体RUNX1A和RUNX1B未显示明显变化。RUNX1C特有的第1、2外显子在11例复发患者中呈现显著包含趋势(Δpercent spliced in = 0.17),提示该异构体在AML复发中具有特殊功能。
RUNX1基因通过远端P1启动子和近端P2启动子分别调控RUNX1C和RUNX1A/B的表达。DNA甲基化分析显示,复发样本中P2启动子区域呈现高甲基化状态。通过dCas9-Dnmt3a系统对P2启动子进行特异性甲基化验证发现,P2甲基化可抑制RUNX1A/B表达,同时反式激活RUNX1C表达(上调约4倍)。相反,dCas9-Tet1介导的去甲基化则增加RUNX1A/B表达。这表明RUNX1异构体表达受DNA甲基化动态调控,且P2启动子高甲基化是复发AML中RUNX1C上调的关键机制。
在7种AML细胞系中,RUNX1B/C高表达细胞系(KG-1a、THP-1、NOMO-1)对阿糖胞苷(cytarabine)和伊达比星(idarubicin)的IC50值显著高于低表达细胞系(MOLM-13、MOLM-14、U937)。长期阿糖胞苷暴露诱导的耐药细胞系中RUNX1B/C蛋白表达显著上调。通过CRISPRa特异性上调内源性RUNX1C表达可使AML细胞对阿糖胞苷的IC50值增加4倍,并促使细胞进入G0静息状态(Ki-67neg/DAPIneg细胞比例增加)。结构功能研究表明,RUNX1C特有的32个氨基酸N端区域是其介导化疗耐药和静息表型的关键结构域,缺失该区域(ΔN-term)可完全逆转耐药表型。
通过CUT&RUN技术绘制RUNX1异构体的全基因组结合谱,发现RUNX1C具有2,944个特异性结合位点,远多于RUNX1B(971个)和RUNX1A(168个)。Motif分析证实RUNX1C优先结合经典Runx1靶 motif(TGTGGT)。RNA-seq显示RUNX1C过表达显著上调干扰素反应基因(IFITM1/2/3、IRF8)、S100警报素(S100A4/A6/A8/A9)和基质金属蛋白酶(MMP9/14)表达。特别值得注意的是,RUNX1C通过其N端区域特异性结合并调控BTG2基因的表达,该结合在N端缺失突变体中显著减弱。
BTG2作为RUNX1C的直接转录靶标,在复发AML中发挥重要作用。功能实验表明,BTG2过表达可使AML细胞停滞在G0期,并赋予其对多种化疗药物(阿糖胞苷、依托泊苷)的广谱耐药性。机制研究发现,BTG2通过促进rRNA(RPL19、RPL13A、RPS11等)的去腺苷化,使其poly(A)尾长度从77nt缩短至74nt,加速rRNA降解并降低核糖体蛋白(RPL5、RPL17)的翻译效率。使用p27K-mCherry细胞周期报告系统证实,静息细胞(mCherryhigh)中BTG2表达显著升高,且核糖体亚基的CRISPR敲除可诱导细胞进入静息状态。OP-Puro掺入实验进一步证实BTG2过表达导致全球蛋白合成速率下降。
利用可诱导型Cas13d系统特异性降解RUNX1C mRNA,可使AML细胞对阿糖胞苷的敏感性提高4倍,并促进静息细胞重新进入细胞周期。在TP53突变型AML细胞系(THP-1)中,RUNX1C靶向同样显著增强化疗敏感性。体内实验表明,Cas13介导的RUNX1C敲除联合阿糖胞苷治疗可显著延缓小鼠白血病进展并延长生存期。此外,采用2′-O-甲氧乙基磷酸硫代ASO靶向RUNX1C,在PDX模型(FLT3ITD/NPM1mut)中可诱导约4倍的mRNA敲低,并显著增强阿糖胞苷的细胞凋亡效应(annexin V阳性细胞增加)。
本研究首次揭示了RUNX1C-BTG2轴在AML化疗耐药中的核心作用,阐明了通过rRNA去腺苷化调控蛋白合成速率和细胞静息状态的新机制。研究证明RNA靶向策略(Cas13和ASO)可特异性抑制RUNX1C功能,为克服AML复发提供了潜在治疗手段。值得注意的是,RUNX1在成年造血系统中呈 dispensable状态,而RUNX1C特异性敲除不影响正常造血,这为其作为治疗靶点提供了安全性依据。该发现不仅对AML治疗具有重要临床意义,也为其他癌症的耐药机制研究提供了新视角。
生物通微信公众号
知名企业招聘