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SIRT7通过去琥珀酰化NAMPT抑制小胶质细胞M1极化缓解脑缺血损伤的机制研究
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年09月17日 来源:Brain Research 2.6
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本研究针对脑缺血损伤后神经炎症调控难题,探讨了去琥珀酰酶SIRT7通过调控NAMPT琥珀酰化修饰影响小胶质细胞极化的新机制。研究人员通过MCAO小鼠模型和OGD细胞模型,发现SIRT7下调会促进NAMPT琥珀酰化并增强其稳定性,进而驱动M1型极化加重脑损伤;而过表达SIRT7可通过去琥珀酰化作用促进NAMPT降解,诱导M2型极化并显著改善神经功能。该研究揭示了蛋白质翻译后修饰在脑缺血中的关键作用,为靶向SIRT7-NAMPT轴治疗缺血性脑病提供了新策略。
脑缺血性损伤是全球范围内导致死亡和残疾的主要原因之一,尽管现有治疗手段如溶栓和血管介入能够恢复血流,但再灌注损伤和神经功能缺损仍是临床面临的重大挑战。小胶质细胞作为中枢神经系统的免疫哨兵,在脑缺血后会发生M1/M2表型极化失衡——M1型释放促炎因子加剧神经损伤,而M2型则促进组织修复。近年来,蛋白质翻译后修饰在疾病中的作用日益受到关注,其中琥珀酰化(succinylation)作为一种新型修饰方式,通过改变蛋白质电荷和构象影响其功能,而去琥珀酰酶SIRT7是否通过调控这一过程参与脑缺血损伤,尚未明确。
为了深入探究SIRT7在脑缺血中的功能机制,研究人员综合运用体内外模型展开研究。首先通过临床样本发现脑梗死患者血清SIRT7水平显著下调,且ROC曲线显示其诊断价值突出(AUC=0.8897)。随后利用MCAO小鼠模型证实,缺血后SIRT7在脑组织中表达持续降低,并于24小时达到最低点。通过免疫荧光染色进一步锁定SIRT7的下调主要发生于小胶质细胞。功能实验表明,过表达SIRT7能够缩小脑梗死体积、减轻脑水肿、改善神经行为学评分(包括mNSS、旋转棒试验、悬挂丝测试等),并抑制神经元凋亡和促炎因子(IL-1β、IL-6、TNF-α)释放。在体外OGD模型中,SIRT7过表达同样抑制了M1标志物(TNF-α、iNOS、CD86)而促进M2标志物(IL-10、Arg-1、CD206)表达。
机制层面,研究通过STRING数据库预测并实验验证了SIRT7与NAMPT(nicotinamide phosphoribosyltransferase)的直接相互作用。NAMPT是NAD+合成途径的关键酶,同时参与炎症调控。研究人员发现SIRT7过表达可降低NAMPT的mRNA和蛋白水平,并通过位点突变实验锁定K255为关键琥珀酰化位点——该位点突变后NAMPT表达和琥珀酰化水平显著升高。CHX追踪实验表明SIRT7通过促进NAMPT蛋白降解降低其稳定性。最后,回复实验证明NAMPT过表达可逆转SIRT7对M1/M2极化的调控作用,确认了SIRT7-NAMPT轴的核心地位。
本研究主要采用以下关键技术方法:
临床样本队列分析(27例脑梗死患者 vs 22例健康对照);
MCAO小鼠模型构建及神经行为学评估(mNSS、旋转棒、悬挂丝等);
氧糖剥夺(OGD)细胞模型模拟缺血条件;
分子生物学技术(qPCR、Western blot、Co-IP、免疫荧光);
琥珀酰化位点预测(GPSuc数据库)及点突变质粒构建;
蛋白稳定性检测(CHX追踪实验);
细胞转染与功能回复实验。
3.1. SIRT7在脑缺血损伤中下调
通过临床样本和动物模型证实,脑缺血后SIRT7在血清及脑组织中表达显著降低,且其诊断价值较高(AUC=0.8897),免疫荧光显示下调主要发生于小胶质细胞。
3.2. SIRT7过表达改善脑缺血损伤
体内实验表明,SIRT7过表达可减少梗死体积、缓解脑水肿、改善神经功能,并抑制细胞凋亡和炎症因子释放。
3.3. SIRT7抑制M1极化并促进M2极化
在OGD模型中,SIRT7过表达下调M1标志物(TNF-α、iNOS、CD86),上调M2标志物(IL-10、Arg-1、CD206),免疫荧光结果一致。
3.4. SIRT7以琥珀酰化方式下调NAMPT表达
SIRT7与NAMPT直接结合,并通过去琥珀酰化(desuccinylation)促进其蛋白酶体降解,其中K255位点是关键修饰位点。
3.5. NAMPT过表达逆转SIRT7对极化的调控
回复实验证实NAMPT过表达可抵消SIRT7对M1/M2表型的调控作用,验证了SIRT7-NAMPT轴的生物学功能。
研究结论与讨论部分强调,SIRT7通过去琥珀酰化作用靶向NAMPT并促进其降解,进而抑制小胶质细胞M1极化、促进M2极化,最终缓解脑缺血损伤。这一发现不仅揭示了蛋白质琥珀酰化修饰在神经炎症中的新机制,也为开发靶向SIRT7-NAMP轴的治疗策略提供了理论依据。值得注意的是,NAMPT在炎症中具有双重角色——既可促进急性炎症,又能支持组织修复,而SIRT7介导的降解可能正是平衡这一功能的关键。研究的局限性包括模型与人类疾病的差异、K255修饰的具体E3连接酶未明、以及SIRT7的细胞特异性作用需进一步验证。未来研究可聚焦于SIRT7激动剂的开发及其在高级模型中的验证,以推动临床转化。
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