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综述:快速PCR的热循环方法
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年09月18日 来源:Critical Reviews in Biotechnology 7.7
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本综述系统总结了实现快速PCR的多种热循环技术,涵盖接触式加热(如电阻/Peltier泵)、非接触加热(如红外辐射/等离子体激元)及空间域方法(如连续流/对流PCR)。文章深入分析了各技术的升温速率、灵敏度及商业化潜力,为开发高效、便携、低成本的快速核酸检测(POCT)系统提供了重要参考。
聚合酶链式反应(PCR)是核酸检测与定量中的关键技术。该反应需将反应混合物在两个或多个温度阶段之间进行约30次热循环,以实现目标DNA的指数级扩增。传统PCR热循环耗时约一小时,成为其应用的一大局限。本文综述了多种缩短热循环时间、实现快速PCR的方法,将其归为两类策略:一是提高局部加热/冷却功率,包括接触式加热(如加热电阻、帕尔贴泵)和非接触加热(如吹气、辐射加热与等离子体激元加热);二是快速移动反应混合物至不同温区,涵盖反应容器移位、微流控芯片连续流PCR、长管或振荡流PCR以及对流PCR。文章分析了各方法的优势、挑战及评价技术的关键参数,回顾了技术进展与商业化现状,并讨论了构建高效、商业化快速PCR系统的当前挑战与未来方向,重点包括灵敏度、便携性与成本。
核酸的快速精准传感对生物物质检测与定量至关重要。尽管存在多种核酸扩增与检测方法(如等温扩增与CRISPR技术),但PCR因其高准确性、高灵敏度及操作便捷性成为最主流方法。PCR反应需在精确控制的温度阶段间循环,耗时较长,尤其在即时检测(POCT)等场景中成为瓶颈。通过优化DNA聚合酶与缩短各阶段停留时间,温度变化速率成为PCR速度的主要限制因素。传统商用PCR系统升温速率约3–10°C/s,总反应时间约一小时。因此,提升热循环速度对缩短核酸检测时间至关重要。
将固体加热单元紧贴反应容器是最直接且常用的加热方式。该系统温度控制精准、易于构建,被多数传统PCR仪采用。为实现最大热传导速率,快速PCR设计通常采用小反应体积与增大热接触面积,并辅以材料优化与工程设计。
加热电阻因易于加工与集成至微系统而被广泛使用。反应多采用空气冷却,水冷却方案亦有报道。尤其对于100 nl PCR混合物覆盖1.1 μl矿物油的体系,电阻加热速率可达175°C/s(加热)与125°C/s(冷却),40次PCR循环仅需6分钟。商用qPCR系统(如BJS Technologies xxpress)可在10分钟内完成40次循环。
帕尔贴泵由N型与P型热电模块串联构成,通过电流方向与大小控制加热/冷却状态与速率。其体积小、效率高,可用于主动冷却,实现更高冷却速率。例如,采用聚碳酸酯(PC)蛇形容器与双侧帕尔贴泵,可在30分钟内完成30次循环,扩增221 bp大肠杆菌基因片段,灵敏度达10个细胞基因组。
反应容器设计对接触加热至关重要。传统PCR管多用聚丙烯(PP)等塑料,导热较慢。硅与玻璃材料导热性更优(见表1),硅基芯片可批量生产并集成传感器,玻璃则具透光性与低荧光特性。硅-玻璃芯片常用于快速PCR,液滴上样可实现数字检测,15分钟内完成PCR,检测限达10个核酸拷贝/测试。
为最大化加热速度,需将热能限域于反应区。绝缘沟槽设计可提升温度均匀性,实现细胞裂解与PCR的快速基因分型(如人CYP2C9基因SNP检测)。UF-qPCR系统采用类似设计,在5分钟内完成qPCR并实现4通道荧光检测,反应体积5 μl,检测限达单分子。该系统在低模板浓度下可进行单分子定位扩增,提升定量准确性。硅基芯片与绝缘沟槽设计已被miDiagnostics与Si-Gene Biotech等公司商业化。
非接触加热通过辐射等方式诱导热能,避免固体热传导,冷却多采用吹气。其避免了加热单元热质量大的问题,能效更高,且加热单元无需紧邻反应室,有助于减小设备尺寸与成本。
最早的非接触加热采用气流法,以不同温度空气加热聚丙烯管或毛细管。例如,玻璃毛细管中人DNA片段536 bp扩增可在15分钟内完成。辐射加热能更好聚焦能量于反应混合物,尤适于大体积样品。中红外与微波加热能提升PCR效率。
红外辐射(IR)将能量聚焦于水分子,钨灯与卤素灯是廉价IR源。采用钨灯辐射,每循环可缩短至17秒。激光加热低体积液滴可实现32°C/s升温速率(1 W,1480 nm激光)。特定液滴(20–100 nl)的IR激光加热可在370秒内完成40次循环。液滴打印于培养皿后,70 mW激光下40次循环需6分钟。红外激光加热液滴还可整合细胞裂解与定量PCR,15分钟内完成,适用于单细胞基因分型与数字PCR。AlphaHelix的αAmp PCR采用IR加热,20分钟内完成40次三步PCR,每轮处理24样本。
微波(300 MHz–300 GHz)易被水分子吸收,玻璃与塑料则不吸收。首例微波加热PCR于2003年开发,后续采用8–18 GHz行波管放大器实现65°C/s升温速率。1 W功率下可达40°C/s。感应加热则更均匀、精准,简单设计(如10 mm铜丝线圈)可实现6.5°C/s升温。Adelab Scientific的BMS-Mic PCR系统采用磁感应加热,25分钟内完成35次qPCR。
纳米材料(如金纳米结构)通过等离子体激元效应提升加热效率。纳米颗粒分散于溶液可实现均匀体积加热,并提升反应特异性。金纳米棒与808 nm激光联用,液滴加热与冷却时间分别缩短至200 ms与800 ms。高浓度纳米颗粒与蓝光LED配合,5 μl反应体积30次循环仅需150秒。激光加热下,10–25 μl反应30次循环可在1分钟内完成,升温速率>72°C/s。磁性核心纳米颗粒可快速移除以避免荧光干扰,30次循环<4.2分钟,并已用于SARS-CoV-2便携检测(40次循环/6分钟)。金属颗粒还可用于细菌裂解与产物检测。石墨烯氧化物光热加热微颗粒方案实现22.0±3.0°C/s与23.5±2.6°C/s升降温速率。GNA Biosolutions(现HP Health Solutions Germany GmbH)商业化金纳米颗粒辅助快速PCR,脉冲激光加热锚定于引物的金颗粒,局部加热大幅提升速度,实时定量PCR<10分钟。
等离子体材料(如金膜)作为反应容器部分可实现精准加热。LED加热120 nm金膜反应室底部,实现55°C/s升温与43.9°C/s冷却,30次循环/5分钟,各室可独立控温。双面金膜设计加热更快速均匀。多孔膜(如玻璃纤维沉积金)形成网状结构加热溶液,25次循环/6分钟。纳米多孔结构还可用于细菌富集,实现快速裂解与40次PCR/10分钟。纳米等离子体柱阵列(玻璃纳米柱上金岛结构)具宽带可见光吸收,结合微流控设计,升降温速率达11.95°C/s与7.31°C/s。掌上PCR系统可在400秒内完成40次循环。低成本碳黑材料近红外加热POCT设备,40次循环约9分钟。TiN环状光吸收器设计实现30次循环<200秒。Kryptos Biotechnologies开发薄膜光热效应PCR,样本至结果时间≤25分钟。
直接移动整个反应容器至不同温区,通常采用电机驱动。相比直接接触加热,此法无需加热单元快速变温,但需机械运动。限制步骤常为预加热源(如水浴)至反应混合物的热传导,故采用小体积与高导热材料(如金属/玻璃)。
移动薄塑料管 between 水浴可实现~35°C/s升温,温度平衡约3秒,40次循环可在5分钟内完成,灵敏度达单模板分辨率。简易设计移动反应混合物 between 真空绝缘食品罐热水浴,实现17秒/循环。玻璃毛细管步进电机旋转 between 水浴,优化反应混合物后35次循环<20秒,为最快PCR。
大体积反应仍可快速进行。25 μl微流控室机械移动 between 三个温区,45次循环/9分钟。25 μl反应体系用于虾病原体检测,PCR管移动 between 水浴,样本至结果判断15分钟。50 μl锥形PCR管移动 between 105°C与10°C加热块,液体升降温速率达10.2°C/s与16.5°C/s。MBS NEXTGEN PCR移动整个PCR板至不同温区,超薄板可在2–10分钟内完成反应。
CFPCR通过外力驱动PCR混合物流经不同温区的流体通道,流动通常连续,也可采用水相-油相两相流。液体由泵或毛细力驱动,通道可为微流控芯片或长毛细管。反应时间由流速控制,常仅需数分钟,但流速过高可能降低效率与产量。延伸温度停留时间对效率至关重要。
常见设计为蛇形微流控通道 on 芯片,不同材料各具特色。玻璃芯片首见于1998年,三温区由铜块维持,20次循环需90秒至18.7分钟。硅的高热导性提升温度均匀性,集成电阻与传感器的全集成芯片25次循环/~5分钟,功耗12 W·h。印刷电路板(PCB)技术制作铜电阻芯片,30次循环<2分钟,功耗2.7 W。PDMS设备40次循环/160秒,并可实现多重扩增与通道并行化。3D系统优化流体阻力或温控。气泡问题可通过添加油相解决。其他材料如聚碳酸酯、PMMA、聚丙烯、聚酰亚胺亦有使用。低热导材料有时用于最大化热阻。
芯片CFPCR需精心设计以减少热串扰。柔性印刷电路(FPC)技术芯片实现高温度均匀性与低串扰,90 bp DNA模板30次循环/5分钟。加热单元形状影响均匀性,双层PCB技术制作蛇形加热器与热扩散器,两侧变性区提升均匀性,小系统37次循环/15分钟。流体通道优化可缩窄温区间通道宽度,2.1 cm长通道设计40次循环/9分钟。PDMS低热导性用于创建基于距离的温区,3D流体结构35次循环/15分钟。
螺旋设计引导反应经长管跨越不同温区,温区位于中心圆柱不同扇区或不同热浴。聚四氟乙烯(PTFE)管与薄膜加热器联用,33次循环/15分钟。毛细管可采用多螺旋结构提升加热均匀性。除PTFE外,Teflon与二氧化硅亦可用作管材。该设计易多重化,因多管可共享加热区。
CFPCR通道大表面积可能导致试剂吸附,需通过修饰壁面化学和/或添加添加剂减少吸附。静态钝化包括PDMS通道流动Tween 20、BSA或PVP,20% Tween 20效果最优。MPC基聚合物与硅烷偶联剂形成层减少气体渗透。其他材料静态钝化包括PTFE管流动BSA、二氧化硅硅烷化、PDMS使用Tween 20或BSA、环烯烃与聚烯烃聚合物用PCR混合物自身钝化。动态钝化添加PVP(2.5%)增加PDMS表面疏水性,30次循环/8–30分钟。BSA亦用于反应混合物钝化通道表面。Teflon螺旋通道设计与BSA钝化,25次循环/15分钟。常联合静态与动态钝化。
振荡流PCR采用更简单通道但更复杂流体控制系统,反应混合物置于跨越不同温区的容器(如毛细管),通过泵送、铁磁流体或设备旋转来回移动。铁磁流体驱动下,35次循环/200秒。可多重化并行反应,35次多重检测约13分钟。还能进行巢式PCR、多重PCR与熔解曲线测量。
总体CFPCR系统简单便携,但需精确控制液体流动,多重化反应较难,故更适用于医学检测与食品测试。Visby Medical商业化CFPCR用于传染病诊断,便携设备样本至答案约30分钟。
对流PCR利用Rayleigh-Bénard对流移动液体至不同温区,大幅降低仪器需求。液体流动可计算模拟与颗粒示踪,有潜力提升PCR速度与准确性。但因液体非以相同精确定速循环,循环数较不明确,常基于实测流速计算,定量应用如qPCR较难。
直管中对流PCR简单有效。最早对流在Plexiglas立方体中进行,两端水浴保持61°C与97°C,连续循环反应混合物。流动模式取决于立方体宽度。多孔系统可实现多重检测,191 bp流感片段扩增15分钟。玻璃毛细管对流PCR荧光定量方案中Ct值与模板浓度良好相关,显示定量潜力。常规微量管亦可进行对流PCR,40 μl反应体系20分钟内检测SARS-CoV-2。Ahram Biosystems开发对流PCR便携系统PalmPCR,10.5分钟检测沙门氏菌,24分钟鉴定肉类物种,当前Palm PCR?G2-12系统30次循环/9分钟。
容器物理倾斜影响对流效率。垂直放置聚合物毛细管底部加热可实现对流PCR,但水平放置流动更慢、温度更均匀,PCR更有效。30°倾角最有效,扩增15–20分钟,而水平或垂直需30分钟。
闭合流动系统提升效率,因各温区停留时间更确定。闭合流通常由环路引导,可倾斜调节流速。全集成对流PCR系统4反应并行,30次循环<5分钟。可整合样本制备模块,如磁珠纯化与三角形PTFE毛细管对流PCR,30分钟内检测细菌。环状PCR方案芯片两侧设95°C与60°C温区,对流PCR实现多重检测,产物通过芯片微阵列检测,样本制备后30分钟完成多重SNP基因分型。还可检测基因缺失。更微型化系统采用环烯烃聚合物微流控,离心力辅助下对流PCR约15分钟。
温度变化速率并非影响核酸定量速度的唯一因素,需整合样本制备、产物检测与整体简易性。多数样本需预处理(纯化与富集)。微颗粒与纳米颗粒用于病原体富集、细胞裂解与DNA/RNA纯化。磁珠可在PCR前移除或用于等离子体加热。膜与多孔结构(如硅膜、金涂层纳米多孔膜、氧化铝膜)用于集成样本制备与PCR。样本甚至可预扩增后再PCR检测。
产物检测传统采用凝胶电泳或毛细管电泳,但较耗时。光学检测实现快速或实时产物检测。荧光信号来自染料或荧光探针检测DNA产物。多重检测可采用多荧光团或芯片微阵列。吸收与拉曼光谱检测DNA产物免标记优势。更经济的侧流层析亦用于PCR产物检测。便携性通过微型化微流控系统提升,实现自动化样本至结果,应用于病毒检测、细菌病原体鉴定与SNP基因分型。手机替代专业相机减小设备尺寸与成本。便携电源与电池进一步缩小系统。阳光甚至可作为PCR加热源,虽加热慢,但促进欠发达地区现场PCR与可持续能源使用。
相比传统PCR约一小时,快速PCR系统大幅缩短反应时间。本文总结了不同快速PCR方法的优缺点。所有主要方法均已实现<10分钟反应,最快PCR仅<20秒完成35次循环。各主要方法均有商业化产品。未来先进PCR有望在20分钟内完成40次循环。等温扩增与CRISPR检测通常需20–30分钟检测低浓度样本,快速PCR可匹配此速度同时保持高特异性与准确性。
当前市场仍由传统PCR主导,反映快速PCR的挑战。首先,反应效率与灵敏度仍欠佳。尽管已有快速单分子灵敏度PCR报道,可靠扩增超低浓度模板仍难。反应混合物常需优化以实现速度与灵敏度,阻碍应用。其次,超快系统通常需昂贵耗材且难多重化,限制商业应用。传统qPCR采用成本效益高的PCR板,机器人自动化每板运行384反应。快速PCR的专用反应容器/试剂昂贵,鲜有报道并行处理超5样本。在成本与多重化非首要关心的场景(如快速检测与POCT),快速PCR已开始应用。但大规模筛查等场景中,快速热循环仍不敌多重性。因此,广泛适用快速PCR需可靠、高灵敏度、低成本系统。构建此类系统需创新开发廉价材料具所需热或等离子体性质,并设计稳健低成本的设备制造流程。克服这些挑战是确保快速PCR系统更广泛实施的关键步骤。