阿联酋骆驼与屠宰场工人布鲁氏菌感染：基于“一体健康”的血清流行病学与分子洞察

本文通过血清学与分子检测方法，系统调查了阿联酋阿布扎比地区骆驼及屠宰场工人中布鲁氏菌的感染情况。研究发现骆驼群体（cELISA）和人群均存在一定感染率，并检出多种布鲁氏菌种（B. abortus、B. melitensis、B. ovis），提示存在人兽共患传播风险。研究强调应采用“一体健康（One Health）”策略，整合兽医与公共卫生措施，加强布鲁氏菌病的监测与控制。

　　

1. 引言

双峰驼（Camelus dromedarius）在中东、北非及亚洲部分干旱与半干旱地区具有重要的文化、经济及生态价值。在阿联酋，骆驼不仅用于运输、肉奶生产、竞赛和旅游，更是国家食品安全战略的重要组成部分。尽管骆驼适应恶劣环境，但仍易感染包括布鲁氏菌病（Brucellosis）在内的人兽共患病。该病由布鲁氏菌属（Brucella）细菌引起，导致繁殖障碍（如流产、不孕、死胎），造成严重经济损失。骆驼中常见的是牛种布鲁氏菌（Brucella abortus）和羊种布鲁氏菌（Brucella melitensis），两者对人类也具有高致病性。感染骆驼常呈无症状，增加了防控难度。

传播途径包括直接接触感染动物或食用未消毒乳品和未熟肉制品。阿联酋传统及半集约化管理系统中，骆驼常与山羊、绵羊混养，增加了种间传播风险。屠宰工人、牧民和兽医等高危人群的职业暴露尤为突出。人类感染后表现为波浪热、肌肉骨骼疼痛、心内膜炎及神经症状，慢性感染可致长期病患和生产力下降。

近年来，传统上认为仅感染公羊且无人兽共患风险的绵羊种布鲁氏菌（Brucella ovis）也在骆驼中被检出，提示其传播动态和潜在风险需重新评估。尽管该病意义重大，骆驼布鲁氏菌病的流行病学数据仍较为缺乏，尤其在 Gulf 地区。多数现有研究依赖血清学方法，无法区分菌种、检测活动感染或混合感染。分子诊断工具如定量PCR（qPCR）可提高检测敏感性和特异性，为菌种鉴定和表征提供支持。

2. 材料与方法

2.1. 研究区域描述

研究在阿联酋阿布扎比进行，覆盖三个行政区：阿布扎比（中部）、艾因（东部）和阿尔扎夫拉（西部）。这些区域是主要骆驼产区，属干旱气候，年降雨量低于100毫米，多为放牧或半集约化养殖系统。

2.2. 研究设计与采样策略

2022年5月至2023年3月开展横断面研究，采用多阶段抽样方法。首先从阿布扎比农业与食品安全局（ADAFSA）登记中按地区分层随机选择骆驼群，然后从每群中随机抽取个体。骆驼样本量基于以往研究预期感染率（5%–10%）、95%置信区间（CI）和3%精度确定，共纳入356头场养骆驼。屠宰场工人采用便利抽样，共86人参与。此外，从阿尔巴瓦迪屠宰场（位于艾因市）采集368头屠宰骆驼样本。

2.3. 样本采集

从每头骆驼颈静脉和工人肘前静脉无菌采集10毫升血液，离心分离血清后-20°C保存直至检测。

2.4. 血清学检测

使用竞争性酶联免疫吸附测定（cELISA）试剂盒（ID Screen Brucellosis cELISA, IDvet, France）检测血清抗体。该 assay 针对平滑脂多糖抗原，抑制百分比（PI）≥40%判为阳性。试剂盒在骆驼中验证的敏感性和特异性分别为98%和99%。阿联酋骆驼未接种布鲁氏菌疫苗，避免了免疫交叉反应。

2.5. 布鲁氏菌DNA的分子检测

仅对血清阳性样本进行分子检测以提升特异性。采用NucleoSpin Tissue kit提取DNA，使用物种特异性qPCR检测牛种布鲁氏菌（B. abortus）、羊种布鲁氏菌（B. melitensis）和绵羊种布鲁氏菌（B. ovis），以GAPDH为内参。引物序列基于既往研究，每个反应使用Maxima SYBR Green qPCR Master Mix，在CFX96实时系统（Bio-Rad, USA）上运行。循环阈值（Cq）≤40视为阳性。

2.6. 数据管理与统计分析

使用IBM SPSS Statistics v29进行数据分析。计算血清阳性率描述性统计，采用卡方检验（χ²）、Fisher精确检验或Wald检验分析分类变量关联。单变量分析中p<0.20的变量纳入多变量Logistic回归模型，计算比值比（OR）和95% CI，显著性水平设为p<0.05。

3. 结果

3.1. 群体水平血清阳性率及相关风险因素

骆驼群水平血清阳性率为10.8%（95% CI: 5.5%–18.5%），与群体规模显著相关（p<0.05），提示大规模群因动物流动、接触或管理因素具有更高传播风险。

3.2. 个体水平血清阳性率及风险因素

骆驼个体血清阳性率为5.9%（95% CI: 3.7%–8.9%）。多变量分析显示，阿布扎比和东部地区骆驼血清阳性 odds 分别为阿尔扎夫拉地区的22.9倍（95% CI: 2.07–254.05）和12.38倍（95% CI: 1.43–107.27）。农场和常规 izba 管理的骆驼血清阳性 odds 分别为随机 izba 的8.55倍（95% CI: 1.23–107.10）和11.52倍（95% CI: 2.82–47.14），表明饲养实践影响暴露与传播风险。

3.3. 地区诊所水平的血清阳性分布

血清阳性骆驼分布呈现地区差异：阿布扎比地区仅在Samha兽医诊所周边发现，东部地区Malaqet和Wagan诊所周边较多，阿尔扎夫拉地区仅Husaan和Madinat Zayed诊所周边有零星病例。

3.4. 屠宰骆驼的血清阳性率

阿尔巴瓦迪屠宰场骆驼血清阳性率为3.0%（95% CI: 1.51%–5.30%）。单变量分析显示与年龄相关（p=0.04），但多变量分析未支持其作为独立预测因子。

3.5. 屠宰场工人的血清阳性率

工人血清阳性率为8.1%（95% CI: 3.31%–16.0%），未发现与年龄、工种、工作年限、国籍、布鲁氏菌病认知或既往感染史显著相关。

3.6. 血清阳性样本中布鲁氏菌DNA的检测

3.6.1. 骆驼中布鲁氏菌种的检测

30份血清阳性骆驼样本中，64.5%（20/31）检出布鲁氏菌DNA。绵羊种布鲁氏菌（B. ovis）最常见，单独感染10例，混合感染2例；牛种布鲁氏菌（B. abortus）单独感染6例，混合感染3例；羊种布鲁氏菌（B. melitensis）单独感染3例，混合感染3例。表明多种布鲁氏菌在骆驼中共同循环与混合感染。

3.6.2. 工人中布鲁氏菌种的检测

7份血清阳性工人样本中，qPCR检出牛种布鲁氏菌（B. abortus）3例，绵羊种布鲁氏菌（B. ovis）2例，1例同时感染两种菌。未检出羊种布鲁氏菌（B. melitensis）。

4. 讨论

本研究证实阿联酋骆驼及屠宰工人中存在布鲁氏菌感染，血清阳性率与既往地区研究一致。分子检测显示绵羊种布鲁氏菌（B. ovis）流行率高，可能源于骆驼与绵羊混养导致的溢出感染。尽管该菌对人类致病性较低，但其存在提示 livestock 生产力和诊断复杂性风险。

cELISA 用于抗体检测表现稳健，但无法区分感染与接种（DIVA限制）。好在阿联酋骆驼无疫苗接种，避免了干扰。群体规模与血清阳性率相关，与埃塞俄比亚等地研究一致。

骆驼个体血清阳性率5.9%属低至中度，与阿联酋近期报道吻合。地区差异显示阿布扎比和东部风险较高，可能与动物密度、管理方式及接触机会有关。

分子检测在67%血清阳性骆驼中检出布鲁氏菌DNA，突出分子工具在血清学阴性或低抗体样本中的补充价值。绵羊种布鲁氏菌（B. ovis）的频繁检出与突尼斯单一报道一致，强调需关注非典型宿主中的菌种分布。

屠宰工人感染与职业暴露一致，尤其接触感染动物组织时。人类布鲁氏菌病在阿联酋持续发生，2010–2015年报告480例确诊，近年仍有儿童因饮用生驼奶感染案例，神经布鲁氏菌病也有报道。

5. 结论

本研究揭示了阿联酋骆驼和屠宰场工人中布鲁氏菌病的流行和多种菌株循环，强调其作为人兽共患病的双重威胁。结果支持采用“一体健康（One Health）”策略，整合兽医、公共卫生和食品安全干预，加强监测、生物安全及针对性控制措施，以减少畜牧业损失保障人兽界面健康。遵循FAO、WHO和WOAH建议，推动部门协作，对 endemic 地区布鲁氏菌病的管理和消除至关重要。