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IgA介导的ADCP驱动HIV-1抗原交叉呈递并诱导单核细胞获得训练免疫:连接体液与细胞免疫的新机制
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年09月21日 来源:Mucosal Immunology 7.6
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本刊推荐:为解决HIV-1感染中体液免疫与细胞免疫协同机制不明的问题,研究人员开展IgA介导的抗体依赖性细胞吞噬作用(ADCP)研究,发现IgA(而非IgG)介导的ADCP能促进病毒抗原交叉呈递至CD8+ T细胞,诱导单核细胞分化为具有混合表型的抗原呈递巨噬细胞(AP-Macrophage),并建立训练免疫记忆。该研究为HIV预防策略提供了新靶点。
在人类与艾滋病病毒(HIV-1)的漫长斗争中,黏膜免疫一直是防控病毒传播的关键战场。HIV-1主要通过黏膜表面侵入人体,而黏膜表面的免疫球蛋白A(IgA)作为第一道防线,其功能远不止简单的中和病毒。以往研究广泛关注IgG抗体的中和作用,但对IgA在连接体液免疫与细胞免疫中的作用机制知之甚少。HIV-1暴露血清阴性者(HESN)和精英控制者(EC)等特殊人群的研究显示,黏膜HIV特异性IgA的存在与病毒控制相关,但其具体机制尚未明确。此外,IgA能否通过抗体依赖性细胞吞噬作用(ADCP)介导病毒抗原的交叉呈递,并激活CD8+ T细胞应答,仍是未解之谜。
为了回答这些问题,由Andrea Cottignies-Calamarte、Annouk Dauvilliers、Lucie Adoux、Benjamin Saint-Pierre、Franck Letourneur、Sylvain Cardinaud、Daniela Tudor和Morgane Bomsel组成的研究团队开展了一项深入研究,其成果发表在《Mucosal Immunology》上。研究团队发现,IgA介导的ADCP不仅能高效清除HIV-1感染细胞,还能驱动单核细胞分化为具有混合炎症表型的抗原呈递巨噬细胞(AP-Macrophage),促进病毒抗原交叉呈递至CD8+ T细胞,并诱导训练免疫(trained immunity)的形成。这一发现为理解IgA在抗HIV免疫中的多功能作用提供了新视角,并为基于IgA的HIV预防策略开辟了新途径。
研究团队运用了多项关键技术方法,包括:使用HIV-1特异性IgA(2F5-IgA)和IgG(2F5-IgG)抗体进行ADCP实验;利用HLA-A2限制性Nef特异性CD8+ T细胞克隆(来自HIV感染患者队列)评估抗原交叉呈递;通过RNA测序(RNA-seq)分析单核细胞转录组变化;采用多参数流式细胞术和UMAP分析鉴定巨噬细胞表型;通过酶联免疫吸附试验(ELISA)和细胞因子多重检测评估训练免疫和炎症因子分泌。
研究团队首先从一名HIV阳性且未接受联合抗逆转录病毒治疗(cART)的患者中分离并鉴定了一株HLA-A2限制性Nef肽(AFL9)特异性CD8+ T细胞克隆(Nef-CTL)。该克隆在PMA/离子霉素刺激下高表达IFNγ和MIP-1β,而在AFL9肽脉冲或HIV-1感染单核细胞刺激下,主要产生MIP-1β,表明其特异性针对AFL9抗原,且激活模式以MIP-1β分泌为特征。
通过建立ADCP与交叉呈递实验体系,研究团队发现,2F5-IgA介导的ADCP能显著提高Nef-CTL中MIP-1β+细胞频率(较无抗体对照增加3.3倍),而2F5-IgG介导的ADCP效果不显著。MHC-I阻断实验证实该过程依赖MHC-I分子。此外,2F5-IgA介导的ADCP还增强了单核细胞内活性氧(ROS)产生和HLA-I表面表达,这些变化与抗原加工和呈递过程密切相关。
RNA-seq分析显示,2F5-IgA介导的ADCP后,单核细胞转录组发生显著变化,涉及406个差异表达基因。通路富集分析表明,这些基因参与炎症反应、巨噬细胞分化、趋化因子分泌和囊泡运输等过程。值得注意的是,IgA介导的ADCP上调了促炎(如S100A8/9、CCL5、CXCL5)和抗炎(如IL-10、FOXO3)基因表达,同时下调MHC-II相关基因,提示单核细胞向混合表型巨噬细胞分化。
通过多参数流式细胞术和UMAP分析,研究团队发现ADCP后CD68+巨噬细胞出现表型分化。2F5-IgA介导的ADCP显著增加表达IL-1R1(促炎)和CD163、CD206、IL-4R(抗炎)的细胞群体(Pop5和Pop6),这些细胞同时高表达CD86(抗原呈递相关分子),被定义为抗原呈递巨噬细胞(AP-Macrophage)。该表型在IgG介导的ADCP中不明显,表明IgA特异性驱动AP-Macrophage分化。
训练免疫评估显示,2F5-IgA介导的ADCP后,单核细胞乳酸分泌增加,且经LPS再刺激后TNFα和IL-6分泌显著升高,表明其获得训练免疫状态。HIV阳性患者来源的IgA也能诱导类似效果。表型分析进一步证实,训练免疫状态与AP-Macrophage表型(Pop5和Pop6)增加相关,提示IgA介导的ADCP可通过表型重编程建立长效免疫记忆。
趋化因子检测发现,2F5-IgA介导的ADCP后,单核细胞分泌CCL3、CCL4、CCL5、CCL17、CCL20、CXCL1、CXCL5和CXCL8等促炎趋化因子显著增加,而CXCL10分泌减少。STRING分析预测这些趋化因子能招募中性粒细胞、单核细胞和淋巴细胞。功能实验证实,ADCP条件培养基可激活中性粒细胞(ROS产生和CD11b/CD62L表达增加)和CD8+ T细胞(CD11b/CD62L表达增加),但不影响CD4+ T细胞,提示IgA介导的ADCP能定向招募效应细胞至感染部位。
本研究系统阐明了IgA在抗HIV免疫中的多功能作用机制。首先,IgA通过FcαRI/CD89信号高效介导ADCP,促进病毒抗原交叉呈递至CD8+ T细胞,从而连接体液免疫与细胞免疫。其次,IgA驱动单核细胞分化为具有混合炎症表型的AP-Macrophage,这些细胞兼具促炎和抗炎特性,并分泌多种趋化因子以招募免疫细胞。最后,IgA介导的ADCP诱导训练免疫,使单核细胞对后续刺激产生增强反应。
该研究的发现具有重要科学和临床意义:
机制上,揭示了IgA beyond neutralization(超越中和)的新功能,即通过ADCP和交叉呈递激活细胞免疫应答。
为HESN和EC等群体的病毒控制机制提供了新解释,黏膜IgA可能通过上述途径建立长效保护。
提出AP-Macrophage作为新型免疫细胞表型,可能成为HIV治疗和预防的新靶点。
支持基于IgA的疫苗设计策略,通过诱导训练免疫和细胞应答,实现更广泛的保护效果。
总之,本研究不仅深化了对IgA免疫功能的认知,也为开发针对HIV和其他黏膜病原体的新型免疫策略奠定了理论基础。未来研究可进一步探索IgA介导的训练免疫在体内的持久性和应用潜力。
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