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嗜热链球菌CRISPR适应性免疫新机制:噬菌体环境DNA(eDNA)的关键作用与免疫记忆形成悖论破解
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年09月23日 来源:mSphere 3.1
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本综述深入探讨了CRISPR-Cas系统在嗜热链球菌(Streptococcus thermophilus)中对噬菌体免疫的适应性机制,揭示了环境DNA(eDNA)在免疫形成中的关键作用。研究发现,eDNA并非作为间隔序列(spacer)的来源,而是通过特异性识别早期基因区域调节免疫应答,且该过程依赖细菌天然感受态(competence)。研究为理解CRISPR系统在烈性噬菌体感染下的“时机悖论”提供了新视角,对细菌免疫进化及噬菌体治疗策略具有重要启示。
CRISPR-Cas系统作为细菌的适应性免疫机制,通过整合外源核酸片段(称为间隔序列,spacer)到CRISPR阵列中,实现对特定噬菌体或质粒的序列特异性切割。然而,该系统面临一个根本性悖论:在烈性噬菌体感染下,细菌在极短时间内被裂解,难以完成从间隔获取到DNA切割的全过程。本研究以嗜热链球菌DGCC7710及其噬菌体2972和858为模型,探索了环境DNA(eDNA)在CRISPR免疫形成中的作用机制。
噬菌体裂解液中含有大量细菌及噬菌体eDNA
通过定量PCR(qPCR)分析,发现噬菌体2972和858的裂解液中均存在显著浓度的细菌eDNA(平均0.14 ng·μL?1)和噬菌体eDNA(平均0.5 ng·μL?1)。每个感染性噬菌体颗粒(PFU)对应约100个游离噬菌体基因组,表明eDNA是裂解液中的重要组分。DNase处理可有效降解eDNA,为后续功能实验奠定基础。
DNase处理降低抗噬菌体突变体(BIM)生成
比较未经处理与DNase处理的噬菌体裂解液在感染嗜热链球菌后的BIM生成率,发现DNase处理使2972噬菌体的BIM减少40%,858噬菌体的BIM减少32%。这一效应在MOI(感染复数)0.2–0.4时最为显著,且在纯化噬菌体颗粒(去除eDNA及其他裂解液成分)条件下BIM生成进一步降低。值得注意的是,限制性内切酶处理未能模拟DNase效果,且DNase处理不影响噬菌体滴度,表明eDNA的减少是BIM下降的直接原因。
eDNA效应依赖MOI及细菌感受态
在低MOI(0.01–0.4)条件下,eDNA对BIM生成的促进作用最为明显,而在高MOI(>1)时所有条件BIM数量趋于一致。这表明在感染初期,未感染细胞可利用由裂解释放的eDNA启动CRISPR免疫。通过构建ΔcomEC突变株(缺失天然感受态关键通道蛋白),发现其BIM生成减少64%,且DNase处理不再影响BIM数量,证明eDNA需通过感受态系统被摄取才能发挥免疫调节作用。
噬菌体特异性eDNA可增强BIM生成
向裂解液中补充不同来源DNA时,仅添加同源噬菌体(如2972)的基因组DNA可使BIM增加33%,而添加密切相关的858噬菌体DNA或细菌DNA则无此效果。进一步通过PCR扩增特定基因组片段发现,仅补充位于2972噬菌体早期表达基因区的“片段A”(约600 bp)可显著提升BIM生成达70%。该区域与858噬菌体的对应区域序列差异显著(同源性低),且功能域注释相似但序列特异性高,提示eDNA的作用依赖于特定序列而非表观遗传修饰。
eDNA并非间隔序列的直接来源
为验证eDNA是否作为间隔序列的供体,对补充片段A后获得的BIM进行间隔序列测序。在12个携带新间隔的BIM中,无一序列匹配片段A内的原型间隔(protospacer)。统计学分析显示,若eDNA直接供体假说成立,观察到零匹配的概率极低(<0.001),强烈否定该假设。另一实验通过向2972感染中补充858特异性间隔靶点,同样未检测到这些非保护性间隔的获取,进一步支持eDNA不提供遗传信息用于CRISPR适应。
培养基成分影响eDNA效应
研究过程中发现,eDNA对CRISPR免疫的调节作用高度依赖培养基品牌(Oxoid LM17)。切换至Difco或Tekniscience品牌的LM17后,DNase处理及DNA补充均不再影响BIM生成,尽管eDNA稳定性及DNase活性在不同培养基中无差异。这表明细菌感受态的诱导或eDNA摄取机制可能受培养基中未知成分调节。
讨论与机制推测
本研究首次将噬菌体eDNA与CRISPR适应性免疫直接关联,揭示其通过序列特异性方式(而非遗传信息供体)增强免疫应答。eDNA的效应依赖于细菌感受态系统,且定位至噬菌体早期基因区。推测机制可能涉及eDNA摄入后干扰噬菌体DNA复制或基因表达,延缓裂解进程并为CRISPR系统提供时间窗口。该发现不仅深化了对CRISPR“时机悖论”的理解,也为探索细菌-噬菌体互作提供了新方向,如通过调控eDNA水平优化CRISPR免疫效率。
材料与方法概要
实验使用嗜热链球菌DGCC7710在LM17培养基中培养,噬菌体裂解液通过PEG沉淀及CsCl梯度纯化。BIM assays采用软琼脂覆盖法,eDNA定量通过qPCR与特异性引物实现。基因编辑通过CRISPR辅助同源重组完成ΔcomEC构建,统计分析采用Welch’s ANOVA及Games-Howell检验处理异方差数据。
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