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综述:线粒体Ca2+在癌症生长和代谢中的作用
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年09月24日 来源:Journal of Cellular Physiology 4
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本综述深入探讨了线粒体Ca2+稳态在癌症代谢重编程中的核心作用,系统阐述了其通过调控TCA循环、ETC及ROS生成影响肿瘤生长与存活的机制,并展望了靶向MCU复合体等关键通道(如MCU、MICU1、NCLX)的癌症治疗新策略。
线粒体是真核细胞中具有双层膜结构的细胞器,由外膜(OMM)和内膜(IMM)包裹基质构成。高度内褶的IMM形成嵴结构,其上分布着呼吸链复合体。线粒体拥有自身的DNA(mtDNA),以环状染色体形式编码氧化磷酸化(OXPHOS)所需的多肽以及转移RNA和核糖体RNA。由于其独特的双膜结构和系统发育分析,线粒体被认为起源于内共生蛋白酶菌。线粒体通常通过母系遗传,因此mtDNA突变导致的线粒体疾病通过母系传递。线粒体网络处于动态变化中,通过分裂、融合、线粒体自噬和生物发生来调节功能并应对压力。线粒体的形态多样,从大型、相互连接到狭窄、细长,嵴的数量也各异,这些结构差异与代谢功能和营养可用性的改变密切相关。高度网络化的线粒体在缺氧环境中支持ATP生成,而碎片化的线粒体则与应激反应和营养充足条件相关。更多的嵴能提高线粒体效率。值得注意的是,这些变化不仅与营养可用性有关,也受Ca2+信号的影响。例如,与细胞信号传导相关的胞质Ca2+浓度([Ca2+]i)升高可能促进线粒体分裂。这种动态变化在癌细胞中被认为至关重要,使其能够快速适应不断变化的条件和压力以促进生存。
线粒体通常因其在ATP合成中的关键作用而被视为细胞内主要的动力源。线粒体还显著贡献于生物合成中间体的生产,这些中间体是蛋白质、脂质和核苷酸合成所必需的,对于细胞生长和分裂至关重要。由于癌细胞生长和分裂更快,需要合成更多的膜、RNA、DNA和蛋白质,这些中间体的生产可能比在正常细胞中更为重要。葡萄糖、脂肪酸和谷氨酰胺在线粒体中的分解支持通过TCA循环的生物化学中间体通量,TCA循环是细胞处理源自碳水化合物和脂质代谢的乙酰辅酶A(Ac-CoA)的主要途径,以NADH和FADH2的形式向电子传递链(ETC)提供电子等效物,最终用于制造ATP,并在此过程中产生活性氧(ROS)。TCA循环能够自我再生,其中间体也可以通过回补反应(anaplerosis)根据需要补充。所有这些过程都以某种方式受Ca2+信号传导的调节。
Ca2+作为细胞中关键的第二信使,调节多种酶、转录因子和离子通道,这些对于细胞生长、代谢和存活是必需的。[Ca2+]i受到高度调控,浓度通常维持在一个设定范围内。当[Ca2+]i偏离这些可接受范围时,可能会限制细胞功能、分裂和/或存活。基础[Ca2+]i维持在约100 nM,而细胞外[Ca2+]通常为1-4 mM。细胞通过主动将Ca2+挤出质膜和主动 sequestration 到肌/内质网(ER)中来维持低[Ca2+]i,ER是主要的细胞内Ca2+储存细胞器。ER腔内游离[Ca2+]通常在100-1000 μM范围内,总Ca2+含量甚至更高,因为腔内Ca2+结合蛋白会大量 sequestration。同样,线粒体基质[Ca2+]([Ca2+]m)也受到高度调控,静息[Ca2+]m通常维持在约100-500 nM。重要的是,[Ca2+]i信号可以传递到线粒体,使[Ca2+]m升高到更高水平,并产生重要的功能效应。
细胞外环境与细胞质之间以及ER腔与细胞质之间巨大的Ca2+电化学梯度使得这些膜中Ca2+渗透性的激活能够引起[Ca2+]i的快速变化,因为Ca2+沿着这些梯度移动。[Ca2+]i信号可以通过Ca2+可透性质膜离子通道的打开或通过细胞内储存(主要是ER)中Ca2+的释放(通过Ca2+释放离子通道)来激活。ER依赖性Ca2+信号传导可以在质膜中的RTKs和Gαq偶联的G蛋白偶联受体(GPCRs)受到细胞外信号刺激时被激活。由此产生的受体构象变化可能偶联到磷脂酶C(PLC)的激活。PLC的构象变化催化磷脂酰肌醇-4,5-二磷酸(PIP2)水解为二酰基甘油(DAG)和肌醇-1,4,5-三磷酸(IP3)。IP3在细胞质中扩散并与IP3受体(IP3R)结合,IP3R是一种ER驻留的Ca2+可渗透离子通道,激活它以使ER Ca2+释放到细胞质中。升高的[Ca2+]i可以被细胞质效应器感知,并转移到包括细胞核、溶酶体和线粒体在内的细胞器。受体激活的[Ca2+]i信号可以是高度局域化的,也可以在整个细胞中传播,可以是瞬态的或持续的,并且在时间上以振荡或尖峰的形式变化。导致[Ca2+]ER降低的持续激活可以导致储存操作的Ca2+进入(SOCE)的激活,其中ER定位的STIM(基质相互作用分子)Ca2+传感器和质膜ORAI(Ca2+释放激活的钙通道)Ca2+通道合作以维持[Ca2+]i信号并在刺激终止时补充ER储存,为未来的信号传导轮次做准备。
线粒体是Ca2+信号传导的主要目标。线粒体含有许多Ca2+响应酶,并且已知在许多细胞环境中具有作为Ca2+缓冲剂的能力,包括在肌肉和免疫细胞中。[Ca2+]m受到Ca2+可渗透离子通道和转运蛋白及其调节剂的活性、表达、定位、稳定性和翻译后修饰的高度调控。足够强度和动力学的[Ca2+]i信号可以传播到线粒体中,部分受线粒体与[Ca2+]i升高区域的空间接近度的调节。在ER和线粒体紧密相对的线粒体相关膜接触位点(MAMs)区域,局部高[Ca2+]i提供了一种实现ER到线粒体Ca2+转移的机制,将受体介导的细胞信号传导与线粒体功能联系起来。
线粒体Ca2+从细胞质摄取到基质中涉及Ca2+跨越两个膜的转运。通常认为,含有VDAC的OMM对Ca2+渗透到膜间间隙(IMS)不构成显著屏障,而IMM的渗透性明显较低。大的IMM膜电压(约-160 mV,基质侧带负电)为Ca2+进入基质提供了强大的热力学驱动力。Ca2+进入基质的主要方式是线粒体Ca2+单向转运体(MCU)离子通道复合体。我们对这个复合体的理解严重依赖于遗传(即敲低、敲除和重新或过表达实验)和药理学实验,这些实验在一定程度上受到药理学研究不足的阻碍。虽然这个复合体的药理学传统上基于非选择性的钌基化合物(如Ru360),但最近通过高通量筛选已经鉴定出更针对性的该复合体抑制剂。
这个高度保守的复合体由成孔亚基MCU、支架蛋白必需MCU调节剂(EMRE)以及IMS定位的MICU 1、2和3蛋白组成。它受到MCU调节剂1(MCUR1)的正向调节,并受到MCUb(一种替代的成孔亚基)的负向调节。MICU蛋白作为二聚体存在,通常由MICU1与自身或与MICU2结合,在某些组织中与MICU3结合。MICU蛋白是含有EF手的Ca2+结合蛋白,通过与MCU和EMRE结合与四聚体MCU孔相关联。在它们的载脂状态下,MICU1阻塞MCU孔的入口,使通道和IMM对Ca2+不渗透。Ca2+与MICU蛋白结合诱导构象变化,导致孔道解除阻塞,使得Ca2+能够通过MCU渗透到基质中,这个过程被称为“门控”。MICU的Ca2+亲和力确保孔道保持阻塞,直到[Ca2+]i达到1-2 μM,这些浓度在[Ca2+]i信号传导期间通常在 bulk cytoplasm 中无法达到,但在靠近Ca2+源的区域存在,最显著的是在ER-线粒体接触位点。在没有MICU1的情况下,门控被废除,Ca2+自由地通过MCU流动,导致线粒体Ca2+超载,带来有害后果。
由于IP3R和MCU复合体的普遍表达,以及由这些离子通道介导的ER到线粒体Ca2+转移在细胞生物能量学中的重要作用,令人惊讶的是,在全身性小鼠敲除模型中,成孔亚基MCU的基因缺失只有很少的明显影响,幼崽能够存活到出生。MCU敲除小鼠的体型略小于野生型小鼠,并且观察到一些运动不耐受。相比之下,在近交系品系中产生的MCU缺失模型不可存活,尽管导致这种差异反应的机制目前尚不清楚。MCU缺失的细胞模型具有功能性呼吸作用,能够生长和增殖,尽管这些复杂的表型通常与正常型对照相比有所降低。值得注意的是,在缺乏MCU的线粒体中存在Ca2+,尽管这些细胞缺乏对线粒体外Ca2+的快速摄取反应。这些发现可能表明了一种尚未描述的Ca2+进入线粒体的模式,也许是通过Ca2+外排机制的反向流动。
几种蛋白质被认为有助于线粒体Ca2+外排。最确定的是Na+/Li+/Ca2+交换体(NCLX,由SLC8B1基因编码),它以电生性的方式以交换Na+或Li+来外排Ca2+。LETM1(亮氨酸拉链和EF手包含跨膜蛋白1)被描述为一种IMM驻留的Ca2+/H+反向转运体,对ATP生产有影响,尽管也有人认为LETM1可能通过调节嵴形态来间接调节Ca2+外排。生长激素诱导跨膜蛋白(GHITM,也称为TMBIM5)与LETM1相互作用,已被鉴定为一种IMM跨膜蛋白,可能通过Ca2+/H+反向转运体活性调节线粒体Ca2+水平,并对代谢产生下游影响。在某些情况下,线粒体Ca2+外排可能通过线粒体通透性转换孔(mPTP)的“闪烁”作用发生。这与mPTP在压力下的典型行为形成对比,在压力下它被认为保持开放并促进细胞死亡。mPTP的分子组成了解甚少。包括ATP合酶、腺嘌呤核苷酸转运体(ANT)和亲环蛋白D在内的蛋白质被认为是复合体的组成部分或调节剂。虽然这些线粒体Ca2+外排途径通常被表征,但该领域的许多工作是在正常型细胞的背景下进行的,特别是在心肌细胞中。这可能会限制在其他背景下的发现解释,例如在癌症中,由于突变谱、表观遗传变化和下游表达效应的差异,典型的细胞功能通常与从“正常”细胞和其他细胞类型预期的不同。为了确保这些途径在癌症背景下以相同的方式工作,需要进行更多的工作。
在线粒体基质内,Ca2+被无机磷酸盐的存在 heavily buffered。实际上,结合态与游离态Ca2+的比例可能高达100,000:1。这种高缓冲能力有时会影响[Ca2+]i信号,并维持[Ca2+]m在足以促进代谢活动但又低到足以防止细胞应激反应、去极化和mPTP开放的水平。线粒体Ca2+对细胞质信号的缓冲受信号幅度、频率和线粒体pH的影响,导致组织特异性的行为差异。关于线粒体Ca2+缓冲在癌症背景下的研究很少。因此,尚不清楚癌细胞是否比其正常型对应物具有更高的线粒体Ca2+缓冲能力。然而,线粒体内的磷酸盐缓冲可能有助于癌症以及正常细胞中的Ca2+处理,因此它也可能在细胞可能暴露于意外高[Ca2+]i的情况下(例如当用离子霉素处理时)有助于Ca2+处理和细胞存活。
最近的研究确定了线粒体代谢与Ca2+信号传导之间存在密切的相互关系。Ca2+可以直接和间接影响底物输送、TCA循环进入、TCA循环通量、电子传递链(ETC)活性和ROS生成,对代谢和细胞生理学具有下游影响。
底物进入TCA循环受线粒体Ca2+水平的调节。丙酮酸是线粒体代谢的主要底物之一。葡萄糖通过糖酵解初步分解为丙酮酸发生在细胞质中,尽管丙酮酸也可以通过其他次级途径由氨基酸、乳酸和苹果酸形成,然后通过线粒体丙酮酸转运蛋白(MPC1、2和3)进入线粒体基质。这种最近发现的导入途径的调控尚不清楚。MPC1表达在前列腺癌中受到抑制,这与糖酵解、生长和侵袭能力增加有关。这些发现与癌细胞中有氧糖酵解增加一致。值得注意的是,MPC抑制增加了Ca2+调节蛋白MICU1的表达,并减少了正常肝细胞中的线粒体Ca2+摄取,表明转运蛋白活性与IMM处的Ca2+信号传导之间存在联系。
在线粒体基质内,丙酮酸可以被丙酮酸脱氢酶(PDH)脱氢形成乙酰辅酶A(Ac-CoA),或者它可以通过丙酮酸羧化酶(PC)进入TCA循环,PC将其转化为草酰乙酸,这是TCA循环的中间体。[Ca2+]m通过刺激PDH磷酸酶的活性以去除PDH的E1α亚基上多个位点的抑制性磷酸化,从而深刻调节PDH活性。通过解除对PDH的抑制,线粒体Ca2+刺激丙酮酸转化为Ac-CoA,增强TCA循环的通量。另一种可以催化丙酮酸进入TCA循环的酶,PC,可能促进代谢可塑性和细胞韧性以及癌细胞的转移,特别是在谷氨酰胺限制的情况下,可能通过对脂质代谢和氧化应激反应的影响。PC活性需要Mg2+的存在,并受Ac-CoA浓度的调节,也受[Ca2+]m的调节,可能通过对PDH的影响间接起作用。确实,在完整细胞中,改变的Ca2+浓度对PC功能的调节作用比在分离制备中更强,这支持了间接机制的观点。
脂质通过脂肪酸氧化(FAO)为TCA循环提供另一种燃料,在FAO中,2碳单元逐渐从脂肪酸中移除在线粒体基质中生成Ac-CoA。在某些脂质依赖性癌症中,FAO对于细胞生长和存活至关重要,对于治疗开发具有重大意义。我们对线粒体Ca2+稳态与FAO之间关系的理解大多来自肌肉组织的研究。在肌肉中,通过MCU的线粒体Ca2+流入在葡萄糖水平受限时增加FAO。当小鼠肌肉中的MCU被敲除时,收缩力和跑步能力会降低,但并非 dramatically impaired,这归因于FAO的增加。脂肪酸摄取和FAO的抑制在乳腺癌、前列腺癌、神经胶质瘤和胃肠道癌等临床前研究中显示出前景,但线粒体Ca2+与FAO的关系在癌细胞中尚未得到表征。
谷氨酰胺是TCA循环的另一个主要碳源,特别是在癌细胞中。实际上,许多癌症被描述为“谷氨酰胺 addicted”,并且对这种底物有代谢偏好。谷氨酰胺首先被谷氨酰胺酶(GLS)脱氨,GLS是一种线粒体驻留蛋白,产生氨和谷氨酸,然后谷氨酸被谷氨酸脱氢酶(GDH)脱氨产生α-酮戊二酸(αKG)。目前尚不清楚GLS是面向外还是面向内位于IMM上,表明谷氨酰胺的线粒体代谢可能需要谷氨酰胺或谷氨酸转运蛋白,其身份仍然未知。目前尚未表征细胞质或线粒体Ca2+对GLS的影响,尽管据报道Ca2+在芽孢杆菌和拟南芥中刺激GDH功能。有趣的是,一项针对GDH抑制剂的高通量筛选发现了多种Ca2+调节剂,包括一种Ca2+通道阻滞剂和一种钙调蛋白拮抗剂,表明GDH功能可能受到上游Ca2+变化的密切调节,尽管可能涉及的区室目前尚未表征。虽然存在谷氨酰胺代谢抑制剂,但它们对线粒体Ca2+信号传导的影响在mPTP背景之外了解甚少。其中一种抑制剂,L-DON(6-重氮-5-氧代-L-正亮氨酸),诱导mPTP,增强了由纳米颗粒共同递送的碳酸钙引起的Ca2+超载。
除了谷氨酰胺,其他氨基酸也可能在改变的线粒体Ca2+稳态背景下影响细胞代谢。胱氨酸已被确定为缺乏MCU的胰腺癌细胞中关键的、可靶向的代谢脆弱性。丝氨酸、天冬酰胺和其他氨基酸的代谢依赖性已在多种不同癌症类型中报道,当线粒体Ca2+通量改变时,这些依赖性可能存在或加剧。然而,该领域的工作很少,并且可能预期组织特异性效应。
虽然PDH被认为是乙酰辅酶A的看门人,并且是葡萄糖碳通过TCA循环通量的限速步骤,但该循环也受到高度内部调节。这种调节可以通过酶蛋白池的改变、翻译后修饰和[Ca2+]m发生。值得注意的是,增加[Ca2+]m降低了异柠檬酸脱氢酶(IDH)和αKG脱氢酶(αKGDH)的米氏常数(Km)。在IDH中,高[Ca2+]增加了异柠檬酸转化为αKG和CO2的转化。ATP/ADP比率对Ca2+敏感性的影响在IDH中比在αKGDH或PDH中更 profound,提供了额外的调节层,其中线粒体Ca2+流入可能在低能量条件(高ADP,低ATP)下更强地刺激IDH,以促进ETC的下游作用。在IDH下游,αKGDH将αKG转化为琥珀酰辅酶A,在此过程中将NAD+转化为NADH。增加的[Ca2+]m以与IDH中观察到的类似方式降低αKGDH的Km,尽管αKGDH对NADH/NAD+和琥珀酰辅酶A/CoA比率比ATP/ADP比率更敏感。因此,IDH似乎在能量池低且[Ca2+]m高时“开启”,而αKGDH活性响应于[Ca2+]m的增加而增加,但在αKGDH下游产物积累的条件下充当“刹车”。虽然该循环中的其他蛋白质不被认为是Ca2+敏感的,但它们受底物和产物浓度的调节,而这些浓度又通过Ca2+依赖性脱氢酶PDH、IDH和αKGDH的调节而改变。因此,TCA循环通量以及潜在的代谢物池响应于Ca2+流入线粒体基质而增加。
线粒体对于ATP的产生至关重要,ATP用于驱动许多生物过程。氧化磷酸化(OXPHOS)在线粒体中进行,每分子葡萄糖产生的ATP是单独糖酵解的15倍。OXPHOS依赖TCA循环向ETC提供还原当量,以创建驱动ATP合酶的质子动力。ATP可用性对所有细胞都至关重要,并且在运动或分泌细胞中可能具有特殊重要性,因为这些过程是ATP驱动的。重要的是,这些过程可能在癌细胞中上调,特别是那些 engaged in active metastasis 的细胞。
Ca2+和ETC功能紧密相关。ETC功能通过增加IMM的负膜电位促进Ca2+流入。反过来,高[Ca2+]m刺激TCA循环为ETC提供底物。通过敲低NDUFAF3(NADH脱氢酶[泛醌]1α亚复合体组装因子3)和SDHB(琥珀酸脱氢酶铁硫亚基B)来降低ETC的功能性,会减少Ca2+流入和流出,与线粒体膜电位无关。类似地,在正常小鼠胰腺β细胞中,复合体III的敲低改变了氧化还原状态,并减少了葡萄糖刺激下游的Ca2+信号。Ca2+也可能通过对离子平衡、底物可用性、磷酸化和转录调节的影响影响F1F0 ATPase(复合体V,ATP合酶)的功能。
ROS由导致能量产生的代谢过程产生,包括TCA循环(特别是在αKG转化为琥珀酰辅酶A期间)和ETC。Ca2+信号传导和ROS密切相关。虽然高[Ca2+]m增加了这些代谢途径的通量,但ROS可以通过改变代谢和Ca2+处理引起这些途径功能的改变。一些研究表明,在这些情况下观察到的ROS增加可能是由于线粒体膜电位的改变。在分离的线粒体中,高[Ca2+]m可导致线粒体通透性转换孔(mPTP)的打开和ROS生成的快速增加。抗氧化剂处理抑制mPTP打开,并可能在某些背景下降低Ca2+水平, potentially reducing toxicity。另一方面,Ca2+信号传导可以在某些组织和背景下减少ROS信号传导,例如在分离的脑线粒体和高膜电位的情况下。这些发现表明,在这里,Ca2+信号传导也可以在调节中扮演多重角色,具有巨大的组织和背景特异性潜力。
鉴于Ca2+在细胞质中的蛋白质调节、代谢和信号通路中的重要性众所周知,并且这些信号到线粒体的高度动态调节,线粒体Ca2+稳态可以显著影响癌症的发展、生长和存活也就不足为奇了。确实,许多研究显示了线粒体中Ca2+调节和受Ca2+调节的蛋白质与癌症相关表型之间的联系。重要的是,
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