核黄素和烟酰胺协同调控费氏丙酸杆菌维生素B12生物合成的代谢机制研究及其在食品强化中的应用

【字体: 时间:2025年09月25日 来源:International Journal of Food Microbiology 5.2

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  本研究针对食品级维生素B12生物强化需求,通过优化麦芽提取物培养基并联合补充核黄素(RF)和烟酰胺(NAM),显著提升了费氏丙酸杆菌DSM 20271的B12产量。结合转录组学分析,发现B12合成增强主要源于前体代谢水平调控而非基因转录激活,为天然B12强化食品开发提供了理论依据和实践策略。

  

维生素B12(B12)是人体必需的水溶性维生素,在DNA合成、神经功能和红细胞形成中发挥关键作用。随着植物基饮食的普及,B12缺乏问题日益凸显,开发天然B12强化食品成为研究热点。费氏丙酸杆菌(Propionibacterium freudenreichii)作为公认安全的(GRAS)菌株,不仅用于奶酪生产,还是微生物合成B12的重要平台。然而,工业生产中常需外源添加B12的含氮碱基配体5,6-二甲基苯并咪唑(DMBI),这与食品级清洁标签要求相悖。核黄素(RF,维生素B2)是DMBI生物合成的前体,烟酰胺(NAM,维生素B3的一种形式)可促进DMBI的活化,但两者对B12合成的调控机制尚不明确,尤其在食品兼容体系中缺乏系统研究。

为解决上述问题,Bhawani Chamlagain等研究人员在《International Journal of Food Microbiology》发表了题为"The effectiveness of slurry ice for reducing Campylobacter on free-range poultry carcasses"的研究论文(注:根据用户提供文档,实际研究内容为RF和NAM对B12合成的调控,标题与内容可能存在偏差,此处以文档内容为准)。他们通过优化低内源RF和NAM的麦芽提取物培养基,结合生长特性分析、代谢物检测和RNA测序技术,揭示了RF和NAM通过代谢水平而非转录调控增强B12合成的机制,为食品级B12生物强化提供了新策略。

研究采用的主要技术方法包括:1)菌株活化与培养基优化:以费氏丙酸杆菌DSM 20272为模型,在麦芽提取物基础培养基(ME)中评估乳酸和胰蛋白胨添加对生长和B12产量的影响;2)维生素补充发酵:在优化培养基(ME+L+T)中添加不同浓度RF(1-40 μM)和NAM(0.1-27 mM),以DMBI补充为对照,监测B12产量和前体消耗;3)代谢物分析:通过UHPLC-UV和HPLC分别定量B12、RF、NAM/NA及有机酸/糖;4)转录组学:对补充组(3 μM RF+27 mM NAM)和对照组进行RNA测序,结合GO和KEGG富集分析差异表达基因(DEGs),并通过微滴数字PCR(ddPCR)验证关键基因表达。

3.1. 培养基优化促进B12生产

在含10%浓缩大麦麦芽提取物的磷酸缓冲培养基中,补充乳酸和胰蛋白胨(ME+L+T)显著提升了菌体生长(OD600提高32%)和B12产量(0.552 μg/mL,较基础ME提高3.5倍)。该培养基内源RF和NAM含量较低(分别为0.17 μg/mL和0.5 μg/mL),为研究外源补充效应提供了理想平台。

3.2. 核黄素补充增强B12合成

在固定NAM浓度(27 mM)下,RF补充呈剂量依赖性促进B12生产:3 μM RF使产量提高41%,40 μM RF进一步提高79%。相反,直接添加DMBI(100 μM)未显著提升产量,表明菌株依赖内源RF合成DMBI。生长参数和有机酸谱未受显著影响,证实B12增加源于代谢前体可用性改善而非生物量增长。

3.3. 烟酰胺仅在高效浓度下有效

固定RF为3 μM时,仅27 mM NAM能显著提升B12产量(62%),低浓度(0.1-0.6 mM)无效。NAM被完全转化为烟酸(NA),提示其通过形成烟酸单核苷酸激活DMBI整合酶(BluB/CobT2)。但27 mM NAM(约330 mg/100 mL)远超食品安全限值(NA上限10 mg/天),限制了直接应用。

3.4. 核黄素代谢与消耗

未补充时培养基RF浓度增加(0.17→0.27 μg/mL),表明存在内源合成。补充RF(≤3 μM)时几乎被完全消耗,而40 μM RF仅部分利用(消耗2.3 μg/mL),反映反馈抑制效应。NAM浓度变化不影响RF摄取,证实NAM主要作用于DMBI活化而非RF代谢。

3.5. 转录组揭示代谢级调控机制

RNA-seq鉴定出509个差异表达基因(245上调/264下调)。关键发现包括:1)RF生物合成操纵子(ribB、ribC、ribD)下调2-3倍,证实外源RF通过FMN核糖开关抑制内源合成;2)B12合成基因转录稳定,仅共享卟啉合成路径的hemL2下调4.9倍;3)氮代谢相关基因(glnK、amtB、glnA等)显著下调,反映营养充足状态下氮同需求降低;4)铁获取基因(feoA、feoB等)上调,可能支持B12合成中钴离子整合。

研究结论表明,RF和NAM通过提供代谢前体和辅助因子激活酶促反应,而非转录调控,增强B12合成。3 μM RF与27 mM NAM组合可显著提升产量,但NAM的安全性问题要求后续研究探索低浓度NAM与RF联用或菌株适配策略。该工作首次在食品兼容体系中解析了维生素前体对B12合成的代谢调控网络,为开发天然B12强化发酵食品提供了理论基础和实践指导。

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