靶向鳗鲡逆转录转座子UnaSINE1显著提升环境DNA(eDNA)检测灵敏度与定量准确性研究
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时间:2025年09月30日
来源:Environmental DNA 6.2
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本研究创新性地利用鳗鲡特异性逆转录转座子序列UnaSINE1开发高灵敏度环境DNA(eDNA)检测方法,突破传统线粒体标记(mtDNA)在低生物量环境中的检测瓶颈。实验证明该标记在基因组与eDNA样本中拷贝数超线粒体标记100倍以上,野外调查将阳性样本检出率从32/81提升至62/81,显著降低假阴性率并提升定量稳定性,为濒危物种监测提供重要技术支撑。
环境DNA(eDNA)分析在目标物种密度低或eDNA释放量少的季节面临灵敏度与定量准确性的挑战。本研究以鳗鲡特异性短散在核元件(SINE)家族UnaSINE1为靶标,开发新型eDNA检测方法,并与线粒体16S rRNA标记进行对比。结果显示,UnaSINE1在基因组和eDNA样本中的拷贝数均超过线粒体标记100倍以上。河流调查中,16S标记阳性样本为32/81,而UnaSINE1标记达62/81,显著降低假阴性。技术重复与生物学重复均显示更高的检测一致性和更低的定量变异,为eDNA研究提供强效工具。
生物多样性快速丧失凸显生物监测的重要性。传统监测依赖物理捕获与视觉调查,而eDNA分析通过检测环境中残留的DNA片段,具备非侵入性、大范围物种探测等优势。但该方法存在假阴性风险,尤其在种群密度极低或eDNA释放量少的条件下。既往通过增加水样体积、优化DNA纯化或使用数字PCR等策略提升灵敏度,但伴随成本与工作量增加。多拷贝标记如线粒体基因组DNA与核糖体DNA(rDNA)虽广泛应用,但其细胞拷贝数仍限制检测灵敏度。逆转录转座子作为基因组中高丰度移动遗传元件,拷贝数远超线粒体标记,如人类基因组中SINE拷贝达150万。本研究以鳗鲡属特异性UnaSINE1为靶标,开发eDNA检测新方法,旨在提升检测灵敏度与准确性。
从NCBI数据库获取UnaSINE1序列,以UnaSINE1-8(AB179628.1)为查询序列进行BLAST比对,针对鳗鲡目物种筛选长度>200 bp的序列。手动设计引物靶向保守核心区,扩增子大小80–200 bp,退火温度约60°C,引入简并碱基兼容序列变异。
通过Primer-BLAST进行in silico特异性验证,并使用鳗鲡属(A. japonica、A. marmorata)与非鳗鲡物种(如Conger myriaster)基因组DNA进行in vitro测试。实时定量PCR(qPCR)采用TaqMan探针法,模板浓度为10 pg/反应。
系列稀释A. japonica基因组DNA(10?4–101 pg/反应)比较标记丰度。以标准DNA稀释系列评估检测限(LOD)与定量限(LOQ),使用R包“ednar”计算检测概率≥95%的LOD与CV<35%的LOQ。
于2023年2月、6月、10月在日本兵库县9个淡水点采集水样(500 mL×3生物学重复),添加苯扎氯铵(BAC)防腐。过滤后提取DNA,使用QuantStudio 3.0平台进行qPCR,以合成DNA标准品定量。通过Sanger测序验证新增阳性样本。
使用R 4.4.2进行线性混合模型(LMM)分析eDNA浓度相关性,McNemar检验比较检测频率,Wilcoxon检验分析变异系数(CV)差异。
UnaSINE1 assay成功扩增所有鳗鲡物种,非鳗鲡物种无扩增。灵敏度测试显示SINE标记检测所需gDNA浓度比线粒体标记低两个数量级(0.001 pg vs 0.1 pg),拷贝数高263倍。尽管SINE assay的LOD(31.1 copies/反应)与LOQ(122 copies)高于线粒体标记(6.9 copies与9 copies),但其高拷贝数保障了检测优势。野外调查证实SINE标记平均eDNA浓度(17,458.6 copies/L)为线粒体标记(102.2 copies/L)的170倍,且浓度显著相关(R=0.931)。SINE标记在21个采样点检出eDNA,线粒体标记仅14个点,新增阳性点经测序确认为鳗鲡来源。技术重复与生物学重复的CV值均显著低于线粒体标记。
本研究首次实现水体中逆转录转座子检测,显著提升eDNA分析灵敏度。SINE标记通过高拷贝数特性有效克服低生物量环境中的假阴性问题,尤其适用于冬季等eDNA释放量低的季节。空间分析显示eDNA浓度下游高于上游,与鳗鲡栖息偏好一致,而线粒体标记未能呈现显著梯度。该方法不增加采样与实验成本,但需注意SINE标记可能限于属水平鉴定,且开发依赖基因组数据。随着基因组数据库扩展,核重复序列作为eDNA标记的应用前景广阔。
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