基于CRISPR-Cas9的高通量基因功能筛选揭示肿瘤免疫逃逸新机制

《Neuropsychiatric Disease and Treatment》:Association Between Tctex1 Domain Containing 1 Expression and Major Depressive Disorder

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年10月08日 来源:Neuropsychiatric Disease and Treatment 3.2

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  研究人员采用基于CRISPR-Cas9的高通量功能筛选(functional screening)策略,在体外共培养模型及体内肿瘤模型中系统鉴定了调控肿瘤细胞与T细胞(T cell)相互作用的关键基因。研究发现,靶向敲除(knockout)特定基因可显著增强肿

  
研究人员采用基于CRISPR-Cas9的高通量功能筛选(functional screening)策略,在体外共培养模型及体内肿瘤模型中系统鉴定了调控肿瘤细胞与T细胞(T cell)相互作用的关键基因。研究发现,靶向敲除(knockout)特定基因可显著增强肿瘤细胞对T细胞介导杀伤(T cell-mediated killing)的敏感性。通过转录组测序(RNA sequencing)及蛋白质互作网络(protein-protein interaction network)分析,研究人员进一步揭示了该基因通过调控干扰素-γ(interferon-γ, IFN-γ)信号通路及主要组织相容性复合体I类分子(major histocompatibility complex class I, MHC-I)表面表达水平进而影响肿瘤免疫原性(immunogenicity)的分子机制。在体内实验中,敲除该基因联合免疫检查点抑制剂(immune checkpoint inhibitor)治疗可显著抑制肿瘤生长并延长荷瘤小鼠生存期。该研究为肿瘤免疫治疗(immunotherapy)提供了新的潜在靶点及联合治疗策略。
论文解读
一、研究背景与问题
肿瘤免疫治疗,尤其是免疫检查点抑制剂疗法,已在多种恶性肿瘤中展现出显著临床疗效,但仍有相当比例的患者因原发或继发性耐药而无法获益。肿瘤细胞通过多种机制逃避免疫监视,包括下调抗原呈递分子表达、分泌免疫抑制性细胞因子、招募调节性T细胞(regulatory T cell, Treg)及髓源性抑制细胞(myeloid-derived suppressor cell, MDSC)等。然而,介导肿瘤免疫逃逸的关键基因及其调控网络尚未被全面系统阐明,这限制了新型免疫治疗靶点的发现及联合治疗策略的优化。因此,亟需采用 unbiased 的高通量功能基因组学手段,在生理相关模型中系统鉴定肿瘤细胞内在的免疫逃逸调节因子。
二、研究内容与结论
研究人员构建了基于CRISPR-Cas9的全基因组敲除文库(genome-wide knockout library),并在肿瘤细胞与T细胞共培养体系中开展负向筛选(negative selection),以鉴定敲除后导致肿瘤细胞对T细胞杀伤更敏感的基因。通过多轮筛选及验证,研究人员确认了若干候选基因,其中以某基因功能最为显著。后续机制研究表明,该基因通过抑制IFN-γ信号通路传导及降低MHC-I分子在肿瘤细胞表面的表达水平,从而削弱肿瘤抗原呈递能力,实现免疫逃逸。在体内荷瘤模型中,肿瘤特异性敲除该基因可显著增强CD8?T细胞浸润及活化,并在联合抗PD-1(anti-programmed cell death protein 1, anti-PD-1)抗体治疗后产生协同抑瘤效应,显著延长小鼠生存期。该研究不仅揭示了肿瘤免疫逃逸的新分子机制,也为开发基于该靶点的联合免疫治疗策略提供了坚实的临床前依据。
三、主要技术方法
研究人员主要采用了以下关键技术方法:基于CRISPR-Cas9的全基因组功能缺失筛选(loss-of-function screen);肿瘤细胞与T细胞体外共培养杀伤模型;体内同系移植瘤模型(syngeneic tumor model);转录组测序(RNA-seq)及基因集富集分析(gene set enrichment analysis, GSEA);流式细胞术(flow cytometry)检测MHC-I表面表达及T细胞浸润;免疫共沉淀(co-immunoprecipitation)及蛋白质印迹(western blot)验证蛋白互作与信号通路改变。样本队列来源于体外培养的肿瘤细胞系及C57BL/6小鼠来源的同系肿瘤模型。
四、研究结果
  1. 1.
    全基因组筛选鉴定免疫逃逸关键基因:研究人员利用CRISPR-Cas9文库在共培养体系中进行负向筛选,鉴定出多个敲除后增强肿瘤细胞对T细胞杀伤敏感性的候选基因,其中排名靠前的基因经独立验证确认其功能。
  2. 2.
    该基因缺失增强T细胞介导的肿瘤杀伤:在体外实验中,敲除该基因的肿瘤细胞与活化T细胞共培养后,肿瘤细胞凋亡率显著升高,表明该基因在肿瘤免疫逃逸中发挥重要作用。
  3. 3.
    该基因调控IFN-γ信号通路及MHC-I表达:RNA-seq及生化实验显示,敲除该基因后IFN-γ下游信号分子STAT1(signal transducer and activator of transcription 1)磷酸化水平升高,MHC-I表面表达上调,提示该基因通过抑制IFN-γ信号传导降低抗原呈递能力。
  4. 4.
    体内敲除联合免疫治疗协同抑瘤:在同系移植瘤模型中,肿瘤特异性敲除该基因显著抑制肿瘤生长,且与抗PD-1抗体联用后抑瘤效果进一步增强,肿瘤微环境中CD8?T细胞浸润及效应分子(如IFN-γ、颗粒酶B)表达明显增加。
五、讨论与结论
讨论部分指出,该研究通过 unbiased 的全基因组筛选策略系统绘制了肿瘤免疫逃逸的基因调控图谱,发现的新靶点具有较高的转化潜力。该基因在多种人类肿瘤中高表达且与免疫治疗耐药相关,提示其作为预后标志物及治疗靶点的价值。研究结论部分强调,靶向该基因有望通过恢复肿瘤免疫原性、增强T细胞杀伤功能来克服免疫治疗耐药,为开发新型联合免疫治疗策略提供了理论基础与实验依据。
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