贝加尔湖及欧亚大陆其他主要水体淡水羽纹硅藻Ulnaria acus(硅藻门)的可变单亲线粒体遗传

《Journal of Great Lakes Research》:Variable uniparental mitochondrial inheritance in the freshwater pennate diatom Ulnaria acus (Bacillariophyta) from Lake Baikal and other major water bodies of Eurasia

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年10月10日 来源:Journal of Great Lakes Research 2.5

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   摘要在大多数真核生物中,线粒体以单亲方式遗传,通常为母系遗传。迄今为止,仅有两项研究检验了硅藻的线粒体遗传,两项研究均证实了单亲传递模式。本研究旨在阐明羽纹硅藻Ulnariaacus的线粒体基因组遗传模式,以检验线粒体遗传的单亲模型是否普遍适用,即在硅藻的不同系统发育谱系中是

  

摘要

在大多数真核生物中,线粒体以单亲方式遗传,通常为母系遗传。迄今为止,仅有两项研究检验了硅藻的线粒体遗传,两项研究均证实了单亲传递模式。本研究旨在阐明羽纹硅藻Ulnariaacus的线粒体基因组遗传模式,以检验线粒体遗传的单亲模型是否普遍适用,即在硅藻的不同系统发育谱系中是否一致。对来自地理隔离群体的亲本克隆及其后代中线粒体基因cox1和atp6片段的分析表明,第一代杂交子代(F1)仅从一个亲本遗传线粒体。然而,与此前关于羽纹硅藻的研究结果不同,传递方向(母系或父系)具有变异性,且不取决于后代的性别。从贝加尔湖和欧亚大陆其他主要水体分离的菌株成功完成杂交,证实了这一广布种不存在生殖隔离。我们的研究结果表明,硅藻中可能存在一种进化机制,能够缓解线粒体遗传的严格障碍,可能通过重组作用减轻穆勒棘轮效应。因此,首次在U. acus中发现的可变单亲线粒体遗传模式,为研究微进化过程以及理解大型湖泊生态系统中硅藻基因型分布和生物地理学的约束条件开辟了新的视角。

引言

硅藻是无处不在的单细胞真核生物,在水生生态系统中发挥着至关重要的作用。硅藻的一个定义性特征是其硅质细胞壁,称为frustule(硅藻壳)。硅藻在春季水华期间经常在水华浮游植物群落中占主导地位,并作为环境条件的敏感生物指示物。在营养生长阶段,硅藻通过有丝分裂进行繁殖;然而,由于硅藻壳形成的特殊机制,这一过程伴随着细胞体积的减小。一旦细胞达到其最小尺寸,进一步的有丝分裂将无法进行,最终导致细胞死亡(Lewis Jr., 1984)。在大多数硅藻中,有性生殖是生命周期中必经的阶段,在此期间细胞恢复到原始大小(Round等, 1990)。还有研究表明,有性生殖有助于通过增加群体内基因型的数量来维持物种的遗传多样性,这对于更有效地适应环境变化至关重要(Godhe和Rynearson, 2017)。
真核基因组分布于不同的遗传区室中,这些区室具有不同的遗传方式(Birky Jr, 2001)。在遗传多样性和分子进化研究中,突变率是一个关键参数,它在核基因组和细胞器基因组之间存在差异。根据羽纹硅藻Phaeodactylum tricornutum Bohlin的数据,突变率存在差异:线粒体基因组的突变率为每代每位点1.1 × 10?9,比叶绿体基因组的突变率高约10倍(根据上界估计为1.0 × 10?10),比核基因组的突变率高约2倍,后者为每代每位点4.77 × 10?10(Krasovec等, 2019)。其他光合生物的数据表明,起源于次级内共生的真核生物以线粒体基因组中的替换频率高于核基因组和叶绿体基因组中的突变频率为特征(Gray等, 1999; Smith和Keeling, 2012)。线粒体基因组的较高进化速率使其成为研究种内变异的宝贵标记。在真核生物中,核基因组为双亲遗传并遵循孟德尔规律,与大多数细胞器基因组的遗传方式不同。细胞器基因组的主要遗传方式为单亲母系传递(Barr等, 2005; Greiner等, 2015);然而,有证据表明该模型是一种过度简化,尤其是在单细胞真核生物中(Breton和Stewart, 2015; Xu, 2005)。此前,已利用遗传标记在多个硅藻物种中确定了细胞器遗传的方式。因此,基于rbcL标记基因的分析,已确立Pseudo-nitzschia delicatissima(Cleve)Heiden中的亲本叶绿体遗传是随机发生的(Ghiron等, 2008)。同时,已证明在Epithemia gibba var. ventricosa(Kützing)Grunow中,叶绿体从双亲菌株中遗传(Kamakura等, 2021)。
关于线粒体基因组遗传,迄今为止仅有两项研究涉及这一主题。使用cox1遗传标记,已在两种羽纹硅藻中证实了线粒体的单亲传递:Haslea ostrearia(Gaillon)Simonsen(Gastineau等, 2013)和Nitzschia palea(Kützing)W. Smith(Bagmet等, 2020)。然而,这些实验无法确定遗传的亲本谱系。因此,关于细胞器基因组——尤其是线粒体基因组——遗传的实验研究仍然稀少,需要在更广泛的硅藻物种中进行进一步调查。了解细胞器DNA的遗传模式有助于进行系统地理学研究并重建有性生殖硅藻的分布历史(Gastineau等, 2013),同时也有助于深入了解物种进化和适应过程。线粒体基因组的较高进化速率使其成为研究种内变异的宝贵标记。
本研究聚焦于淡水羽纹无纹硅藻Ulnariaacus(Kützing)M. Aboal,这是一个广布种,广泛分布于欧亚大陆(Kahlert等, 2019)、北美(Bergey等, 2017)、南美(Crossetti和Bicudo, 2008)以及全球其他地区(Khairy等, 2017)的淡水栖息地,包括贝加尔湖(Popovskaya, 2000; Usoltseva等, 2023)。贝加尔湖是世界上最深、最大的贫营养湖泊。该湖的浮游植物在水域范围内具有不均匀的空间分布,长期连续研究表明其丰度和生物量存在显著的年际和季节性波动(Popovskaya等, 2015; Usoltseva等, 2023)。该物种在贝加尔湖春季浮游植物水华中起着至关重要的作用,是该湖生态系统的重要组成部分(Pomazkina等, 2010; Popovskaya等, 2015; Usoltseva等, 2023)。Ulnariaacus在遗传上为雌雄异体:有性生殖需要携带相容且相反交配型的菌株配对(Davidovich和Davidovich, 2022; Podunay等, 2018)。此前对线粒体cox1基因片段的分析揭示了U. acus群体内的遗传异质性(Marchenkov等, 2022)。然而,该物种的线粒体基因组遗传模式仍有待探索,尤其是在具有高度遗传分化的地理远隔群体之间的杂交中。本研究旨在通过使用分子标记cox1和atp6来调查U. acus的线粒体遗传方式,以填补这一空白。我们假设U. acus的线粒体基因组遗传为单亲遗传,并且地理远隔群体间的高度遗传分化将使能够通过标记基因进行基因型追踪来明确鉴定传递的亲本谱系。

各章节摘要

研究菌株

在本研究中,我们使用了俄罗斯科学院淡水湖研究所活体硅藻培养物收藏中的一种单克隆菌株,该菌株根据Zakharova等(2022)先前发表的方案从贝加尔湖水中分离,以及来自T. I. Vyazemsky卡拉达格科学站(俄罗斯费奥多西亚)世界海洋硅藻收藏(WODC)的五种菌株,分别从里察湖、马塔诺湖和厄尔德雷河的样本中分离(表1,电子版

亲本克隆的特征描述

扫描电镜(SEM)分析证实,亲本菌株的形态特征符合U. acus的种诊断标准(Lange-Bertalot和Ulrich, 2014)(电子补充材料图S2)。来自地理分散的欧亚水体的亲本单克隆菌株中测定了六个18S rRNA基因片段(表1),以及来自F1杂交子代的18个片段(表2)。所有序列在系统发育重建中均聚集在一个获得充分支持的单系U. acus分支内(图1)。所有

讨论

细胞器遗传方式是性过程的基本特征,它决定了分子进化的路径和群体的遗传结构。U. acus的线粒体基因组已被完整测序,揭示了cox1和atp6基因之间相隔16,508 bp(Ravin等, 2010)。这种基因组特征描述使它们能够被用作追踪线粒体遗传的分子标记。我们证明F1后代遗传线粒体

结论

以Ulnariaacus为例获得的数据表明,在羽纹硅藻中,传递方向(母系或父系)是可变的,且不取决于后代的性别,尽管线粒体基因组的遗传具有独特性质。这种变异性可能反映了一种放松线粒体DNA传递严格障碍的进化机制,考虑到线粒体基因组的突变率相较于……这一点尤为相关

CRediT作者贡献声明

Maria A. Nalimova:撰写 – 审阅与编辑,撰写 – 初稿,可视化,方法学,调查研究,形式化分析。Artyom M. Marchenkov:撰写 – 审阅与编辑,验证,资源,方法学,形式化分析。Yulia R. Zakharova:撰写 – 审阅与编辑,资源。Alexander A. Bondar:资源,形式化分析。Yulia A. Podunay:撰写 – 审阅与编辑,资源,方法学。Olga I. Davidovich:撰写 – 审阅与编辑,资源,方法学。Nikolai A.

资助

本研究由俄罗斯联邦科学与高等教育部项目资助:编号 1023032700153-7-1.6.17(FWSR-2026-0001)(俄罗斯科学院西伯利亚分院淡水湖研究所)及项目编号 124030100100-0(俄罗斯科学院A.O.科瓦列夫斯基南方海洋生物研究所附属机构——T.I.维亚泽姆斯基卡拉达格科学站 – 自然保护区)。

利益冲突声明

作者声明,他们没有已知的可能影响本文所述工作的竞争性经济利益或个人关系。

致谢

本研究在俄罗斯科学院西伯利亚分院淡水湖研究所物理化学超微分析共享中心("超微分析")进行。使用了卡拉达格科学站"世界海洋硅藻收藏"共享资源中心的相关设施。我们感谢Marina M. Maslennikova在扫描电镜操作方面提供的协助。我们感谢Evgeniy S. Gusev提供的马塔诺湖样本。
Maria A. Nalimova|Artyom M. Marchenkov|Yulia R. Zakharova|Alexander A. Bondar|Yulia A. Podunay|Olga I. Davidovich|Nikolai A. Davidovich|Darya P. Petrova
俄罗斯科学院西伯利亚分院淡水湖研究所,俄罗斯伊尔库茨克市乌兰巴托尔卡亚街3号,664033
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