外周血显带核型分析是骨髓增生异常肿瘤及慢性粒单核细胞白血病诊断工作流程中的有用方法

《Genes, Chromosomes and Cancer》:Banding Karyotyping From Peripheral Blood Is a Useful Method for the Diagnostic Workup of Myelodysplastic Neoplasia and CMML

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年10月10日 来源:Genes, Chromosomes and Cancer 2.8

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  这项回顾性研究涉及来自杜塞尔多夫骨髓增生异常综合征登记处(Düsseldorf MDS Registry)的155例患者,研究人员比较了骨髓增生异常综合征(myelodysplastic syndromes,MDS)和慢性粒单核细胞白血病(chronic my

  
这项回顾性研究涉及来自杜塞尔多夫骨髓增生异常综合征登记处(Düsseldorf MDS Registry)的155例患者,研究人员比较了骨髓增生异常综合征(myelodysplastic syndromes,MDS)和慢性粒单核细胞白血病(chronic myelomonocytic leukemia,CMML)患者外周血(peripheral blood,PB)与骨髓(bone marrow,BM)的细胞遗传学显带结果。其中63例患者具有间隔不超过3个月的配对PB和BM细胞遗传学分析。81%的配对样本获得一致的ISCN(International System for Human Cytogenetic Nomenclature)结果,且PB与BM之间的中期分裂相总数或异常中期分裂相数均无显著差异。此外,由PB和BM得出的IPSS-R/-M(Revised/Molecular International Prognostic Scoring System)评分相当,仅63例患者中有7例被归入不同的细胞遗传学风险类别。这表明异常克隆在PB中并未被低估,且PB细胞遗传学结果能够可靠地反映BM所得结果。
骨髓增生异常肿瘤(myelodysplastic neoplasms,MDS)是一类常见的骨髓(bone marrow,BM)疾病,年发病率约4/100 000,70岁以上人群升至30/100 000。由于造血细胞发育异常和无效生成,患者常出现血细胞减少,并面临向急性髓系白血病(acute myeloid leukemia,AML)进展的风险。疾病过程中,遗传不稳定性导致细胞遗传学异质性,进而引起核型演变和亚克隆出现。尽管新型遗传学诊断技术不断涌现,常规染色体显带(conventional chromosome banding,CCB)仍是MDS分类和特征描述的核心手段。染色体异常对预后及治疗决策具有重大影响,并需用于监测治疗反应。约50%的原发性MDS和约80%的细胞毒性治疗后相关MDS患者可检出克隆性染色体畸变。2012年制定的修订版国际预后评分系统(IPSS-R)将细胞遗传学、BM原始细胞百分比、血红蛋白、血小板和中性粒细胞绝对计数纳入风险评估;2022年推出的分子国际预后评分系统(IPSS-M)进一步结合了31个基因的体细胞突变。目前,BM穿刺抽吸是获取CCB所需中期分裂相的金标准,但该操作可引发疼痛、情绪困扰和焦虑,对老年且体弱的患者构成额外负担,并可能导致患者拒绝;此外,干抽也可能导致取材失败。

为减少对侵入性BM活检的依赖,研究人员利用杜塞尔多夫MDS登记处(Düsseldorf MDS Registry)的队列,开展了一项回顾性研究,评估未经CD34+富集的外周血(peripheral blood,PB)CCB能否可靠检测BM中已识别的克隆性畸变。该登记处截至2022年12月收录超过9300例MDS患者,其中3189例有核型信息。研究最终纳入155例具有PB细胞遗传学数据的患者,其中63例BM和PB分析间隔不超过3个月,构成配对队列。研究人员比较了配对样本的ISCN核型结果、中期分裂相数量、异常中期分裂相数量以及IPSS-R/-M细胞遗传学风险分层。

在63对配对样本中,81%(51/63)的BM和PB核型结果完全一致,12对(19%)存在差异。配对t检验显示,BM的中期分裂相平均数(19.40±7.35)略高于PB(18.25±8.68),但差异无统计学意义(p=0.349);异常中期分裂相数(BM:5.59±9.01,PB:4.65±8.02)同样无显著差异(p=0.390)。在51例核型一致的配对样本中,80.4%的异常中期分裂相数量完全匹配。以≥10个中期分裂相为阈值,PB和BM达标率分别为65.1%和66.7%;以≥20个为阈值时,分别为47.6%和55.6%。关于异常中期分裂相,≥10个的样本比例在PB为19%,BM为12.7%;≥20个的比例两者均为7.9%。IPSS-R/-M风险分层方面,基于BM和PB的评分均值分别为2.35±0.79和2.33±0.78,Wilcoxon符号秩检验显示差异不显著(Z=?0.345,p=0.73),仅7例患者的风险类别发生改变(4例PB高于BM,3例PB低于BM)。

研究讨论指出,与Cherry等早期研究相比,本研究的培养失败率低于1%,这可能得益于三种培养基(Panserin和MarrowMAX)平行使用、每例样本制备多达16张玻片、以及较长秋水仙胺暴露时间等优化措施。尽管多数患者原始细胞比例较低(BM中<10%者占68.9%,PB中<2%者占86.7%),但仍能检出克隆异常,提示在优化培养条件下,PB并不系统性低估异常克隆。从临床角度看,IPSS-R/-M风险分层在PB与BM间的一致性至关重要,因为该分层直接影响治疗决策。同时,CCB与FISH(fluorescence in situ hybridization,荧光原位杂交)结合可用于克隆演化的纵向监测,有研究显示克隆演化与更短的总体生存期相关。本研究的局限性包括纳入时间跨度大(1982-2022年)、配对样本量较小(63例)、缺乏治疗状态及合并症等临床变量,可能影响结果的稳健性。

研究结论翻译如下:本研究表明,在优化培养条件下,PB的常规染色体显带能够充分反映大部分MDS患者BM中观察到的克隆结构。PB染色体分析显示的中期分裂相数量与BM相当,既未出现系统性低估异常克隆,也未导致IPSS-R或IPSS-M风险分层的临床相关差异。尽管如此,MDS的初始诊断及特定临床场景仍必须进行BM活检,因为诊断通常需要形态学评估和发育异常的证实。然而,基于PB的CCB和FISH可作为常规随访的有效方法,大幅减少对侵入性BM检查的需求。
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