肾脏疾病再生医学近期进展:干细胞、细胞外囊泡、肾脏类器官、基因治疗、CRISPR-Cas9与组织工程策略及转化挑战

《Developmental Dynamics》:A review on recent advances in regenerative medicine for renal diseases: Approaches and challenges

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年10月14日 来源:Developmental Dynamics 1.5

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  肾脏疾病,如急性与慢性肾脏病,可导致肾单位(nephron)和肾功能丧失,并常进展为肾衰竭。当前治疗如透析和移植仅能控制症状并将生存期延长数年。再生医学通过靶向潜在疾病机制,为修复和再生肾组织提供了有前景的策略。为完成本叙述性综述,研究人员从PubMed、Go

肾脏疾病,如急性与慢性肾脏病,可导致肾单位(nephron)和肾功能丧失,并常进展为肾衰竭。当前治疗如透析和移植仅能控制症状并将生存期延长数年。再生医学通过靶向潜在疾病机制,为修复和再生肾组织提供了有前景的策略。为完成本叙述性综述,研究人员从PubMed、Google Scholar和ScienceDirect等在线数据库检索相关原创研究论文和综述文章,检索关键词包括“renal regeneration”“kidney organoids”“stem cell therapy”“gene therapy”“extracellular vesicles”和“tissue engineering”等。文献检索主要聚焦于2020年至2026年发表的论文,以讨论肾脏疾病再生方法的近期进展。再生医学的近期进展已识别出干细胞、基因治疗、CRISPR-Cas9、细胞外囊泡(EVs)和肾脏类器官等疗法,这些疗法可促进肾单位再生、改善血管化、调节炎症并恢复肾功能。本综述重点阐述肾损伤的细胞和分子机制、再生医学的最新进展,以及安全有效应用再生医学治疗肾脏疾病的关键挑战和未来方向。
1 INTRODUCTION
肾脏疾病已成为全球重大健康负担,急性肾损伤(AKI)和慢性肾脏病(CKD)最常见且临床意义重大。AKI可在短期内致肾功能快速下降,反复发作可进展为CKD;CKD不可逆并最终可致终末期肾病(ESRD),需透析或肾移植。现有治疗仅延缓进展和缓解症状,透析存在费用高、生活质量下降和并发症,移植受供体短缺、排斥和终身免疫抑制限制。再生医学为修复、替换或再生受损肾组织提供新策略,包括干细胞治疗、组织工程、生物材料、基因治疗和生物工程类器官,旨在增强内源修复并恢复功能。本综述聚焦2020—2026年进展,整合干细胞工程、细胞外囊泡(EVs)治疗、肾脏类器官、CRISPR介导基因组编辑、生物材料和转化再生医学,讨论治疗策略、转化进展及科学与临床挑战。

2 STRUCTURAL OVERVIEW AND REGENERATIVE CAPACITY OF THE KIDNEY
肾脏执行滤过、电解质和液体稳态、代谢废物排泄及内分泌功能。结构上由皮质和髓质组成,肾单位为基本形态功能单位,包括肾小球、近端和远端小管、髓袢和集合管系统。肾小球滤过依赖特化毛细血管网、足细胞以及nephrin和podocin等裂孔隔膜蛋白。人类肾发生主要在出生前完成,肾单位数目固定,成人肾再生主要依靠修复既有肾单位而非形成新肾单位。AKI后肾小管细胞再生能力最明显,近端小管S1、S2、S3段代谢和损伤敏感性不同,S1和S2易受缺血和毒性损伤,是再生干预重要靶点。损伤修复涉及存活小管上皮细胞去分化、增殖和再分化,受Wnt/β-catenin、Notch和TGF-β等信号调控。除成熟小管细胞外,肾乳头、Bowman囊CD24+CD133+祖细胞及壁层上皮细胞(PECs)等祖细胞样群可能参与修复,但其确切作用尚未完全明确。成功再生依赖修复诱导、功能细胞重建和微环境调控协同,失调可致病理重塑。

3 REGENERATIVE THERAPEUTIC APPROACHES FOR RENAL DISEASES
肾脏具有高度整合的三维结构、密集血管化以及上皮—内皮复杂互作,再生难度高。当前策略已从细胞替代扩展到免疫调节、抗纤维化和促修复微环境重建。三维培养的肾脏类器官可复现天然肾细胞类型、结构和功能,促进对肾发育、疾病和再生的理解。除类器官外,干细胞治疗、组织工程、生物材料和基因治疗等均在研究中。

3.1 Stem cell-based therapies
干细胞策略用于AKI、CKD、糖尿病肾病和肾纤维化。间充质干细胞(MSCs)早期研究显示安全性和再生潜力,近期研究集中于优化细胞来源、旁分泌、归巢及无细胞策略。人脐带来源MSCs(hUC-MSCs)在链脲佐菌素诱导糖尿病肾病模型中降低尿白蛋白/肌酐比,改善系膜扩张、足细胞损伤和间质纤维化,降低IL-6、TNF-α和TGF-β1并恢复自噬。UC-MSCs治疗X连锁Alport综合征可改善Col4a5敲除小鼠肾功能、减少白蛋白尿、延长寿命并抑制炎症和纤维化;其EVs通过富含miR-146a-5p诱导巨噬细胞抗炎极化并抑制NF-κB。CX3CR1工程化脂肪来源MSC(AD-MSC)片增强细胞滞留,减轻大鼠肾缺血—再灌注损伤,促M2巨噬细胞极化、抑制炎症和纤维化并促血管化。AD-MSCs还可抑制Toll样受体4(TLR4)信号、降低炎症介质并缓解内质网应激。骨髓来源MSCs(BM-MSCs)通过修复管周毛细血管(PTCs)、增强周细胞存活、抑制周细胞转分化和TGF-β/Smad2/3通路,减少胶原I、胶原III和纤维连接蛋白沉积。人诱导多能干细胞(hiPSCs)和肾祖细胞(RPCs)在5/6肾切除模型中减少小管间质损伤、肾小球硬化和α-SMA表达,改善肌酐清除并减少巨噬细胞浸润。

3.2 Extracellular vesicles-mediated therapies
EVs作为无细胞治疗策略受关注。MSC来源EVs在AKI和CKD模型中显示再生潜力。牙髓干细胞来源外泌体(DPSC-Exos)通过激活Nrf2/Keap1/GPX4通路抑制铁死亡,增加Nrf2、GPX4和HO-1,降低Keap1并减少TNF-α、IL-1β和IL-6。骨髓间充质干细胞外泌体(BMSC-Exos)在1型糖尿病小鼠中减轻高血糖、体重下降和肾损伤。hUC-MSC外泌体携带14-3-3ζ蛋白,通过增强自噬保护HK-2细胞免受顺铂损伤;14-3-3ζ还可改善线粒体功能并经β-catenin核转位平衡增殖与凋亡。MSC外泌体中的let-7b-5p通过下调p53保护小管上皮细胞。BMSC-Exos通过激活前列腺素E2受体2(EP2)减轻单侧输尿管梗阻(UUO)模型肾纤维化,减少M1/M2巨噬细胞极化及α-SMA和纤维连接蛋白,降低IL-6并增加IL-10。hUC-MSC来源微囊泡转移miR-21抑制PDCD4;BM-MSC来源EVs转移miR-181d靶向KLF6,抑制NF-κB及纤维化相关基因。

3.3 Peptide-based therapies
肽类治疗因高特异性、低毒性和调控信号通路而受关注。线粒体来源肽Humanin及其类似物Humanin-G在缺血诱导急性肾病中改善肾功能,降低血清肌酐和血尿素氮(BUN),减少线粒体氧化应激和小管上皮凋亡,机制涉及增强线粒体自噬(LC3和PI3K-III升高、mTOR抑制)。S14G-Humanin(HNG)在脓毒症相关AKI(S-AKI)中改善肾功能、减少小管损伤、抑制炎症和氧化应激。MOTS-c在慢性血液透析和腹膜透析患者中与死亡和心血管事件风险相关,并可能作为预后生物标志物;其水平变化还与肌少症风险相关。Apelin通过维持线粒体功能保护顺铂诱导AKI,增加融合蛋白OPA1、降低分裂蛋白MFF,并经PGC-1α和ERRα上调Sirtuin-3。Beclin-1来源肽促进小管细胞增殖、减少损伤和纤维化。SS-31降低线粒体ROS、抑制NLRP3炎症小体,降低Caspase-1和IL-1β。

3.4 Kidney organoids
肾脏类器官是由人多能干细胞(hPSCs)或诱导多能干细胞(iPSCs)形成的三维结构,含足细胞、近端和远端小管等肾单位样结构。hiPSCs来源肾祖细胞类器官可通过聚集和胶原支架植入无胸腺小鼠肾皮质,保持高活力并成熟为含小管和肾小球样结构的组织。hiPSC来源类器官在缺氧和IL-1β条件下诱导纤维化,随后出现CD133+和CD24+祖细胞增加及小管标志物表达,提示存在小管修复能力,但肾小球结构再生有限。hPSC来源类器官移植至肾包膜下可诱导功能性血管化,形成宿主来源血管、肾小球灌注以及肾小球基底膜、有窗内皮和足细胞足突等超微结构,并提高小管极性和节段特异性分化。

3.5 Gene therapy-based approaches
基因治疗通过纠正或替换缺陷基因、调控异常表达或导入保护基因治疗肾病。腺相关病毒(AAV)介导的NPHS2(podocin)基因替换可恢复足细胞功能,AAV-LK03有效转导人足细胞,AAV2/9在遗传性肾病综合征小鼠中改善肾小球滤过、降低白蛋白尿、改善肌酐、尿素和胆固醇并延长生存。AAV2-GEC靶向肾小球内皮细胞,递送IdeS可清除肾结合抗体并治疗抗肾小球基底膜肾炎。AAV.cc47携带Slc3a1基因编码rBAT转运体,在Cystinuria模型中有效靶向近端小管S1和S2段,转导效率超过80%。纳米颗粒PPSK NPs靶向肾损伤分子-1(KIM-1)递送Klotho质粒,在AKI至CKD模型中保护肾结构、减少氧化应激和纤维化并激活PPARα。AAV.k13和AAV.k20经衣壳文库跨物种进化获得,在近端小管上皮细胞中强嗜性并增强转基因表达。

3.6 CRISPR-Cas9 mediated therapies
CRISPR-Cas9可对DNA序列进行特异性编辑,用于遗传性肾病治疗及肾祖细胞工程、类器官和基因工程肾组织构建。常染色体显性多囊肾病(ADPKD)是重要靶点,其由PKD1或PKD2突变引起。AAV9递送腺嘌呤碱基编辑器-9(ABE9)在人源化Pkd1RC/RC小鼠中单次碱基编辑可纠正Pkd1致病突变,延缓囊肿进展、保存肾功能并改善生存。CRISPR-Cas9筛选hPSC来源类器官可揭示肾发生和肾谱系分化决定因素。纠正hiPSCs中SLC12A3突变可挽救Gitelman病表型,成熟肾单位形成增加3.3倍,恢复钠氯共转运体(NCCT)mRNA和蛋白表达及正常定位。CRISPR还用于工程化人兼容猪肾,以推动异种移植。

3.7 Tissue engineering-based strategies
组织工程旨在重建肾脏结构功能微环境,包括滤过单位、血管网络和小管结构,涉及支架、3D生物打印、水凝胶和器官芯片。

3.7.1 Scaffold-based tissue engineering
支架模拟ECM,脱细胞器官支架可保留肾小球、血管和小管结构。PMEZ支架由PLGA、生物活性成分、中间中胚层(IM)细胞和分化细胞外囊泡(dEVs)组成,dEVs可诱导IM细胞向肾祖细胞分化;在3/4肾切除小鼠中改善小管和足细胞再生、诱导新生血管化并减少炎症和纤维化。PME/PDRN/TI-EV支架在部分肾切除模型中增强肾小球再生、血管生成和组织修复。PLGA涂胎儿ECM并含Mg(OH)2纳米颗粒的支架增强ECM保留、细胞黏附和小管上皮活力,促进肾小球再生,增加Pax2、vWF、Wt1和Emx2,降低血清肌酐和BUN。

3.7.2 3D bioprinting
3D生物打印可逐层打印细胞和生物材料。同轴3D细胞打印已制造由肾小管细胞和内皮细胞构成的可灌注空心小管,皮下植入免疫缺陷小鼠后维持形态。挤出式生物打印可自动化形成hPSC来源类器官,提高细胞数量、大小和活力一致性,增强肾单位形成和近端小管节段,并用于氨基糖苷毒性研究。微流控3D生物打印构建肾小管间质模型,保持高细胞活力和代谢活性,形成极化上皮衬里的中空小管。基于猪肾dECM的光交联生物墨水KdECMMA可打印肾结构,表达AQP1和NPHS2,维持肾特异性表型。

3.7.3 Hydrogel-based tissue engineering
水凝胶可模拟ECM物理生化特性。猪肾ECM来源可注射DKECM水凝胶生物相容性良好、免疫原性低,支持肾祖细胞存活、增殖及小管和足细胞分化,效果优于胶原I水凝胶。dKECM水凝胶递送AD-MSCs治疗CKD,支持细胞存活、代谢和增殖并保持表型。Biotin-DFYIGSRGD水凝胶含YIGSR和RGD肽,通过整合素α2β1/PI3K/AKT通路增加MSCs分泌HGF、VEGFa和IL-10,改善AKI中MSC存活和滞留并发挥抗凋亡、抗炎作用。

3.7.4 Organ-on-chip techniques
器官芯片微流控技术可模拟人肾生理环境。三层微流控肾芯片培养肾近端小管上皮细胞和PTC内皮细胞,药物反应优于传统培养,并可用西咪替丁干预顺铂毒性。支持血管化人肾类器官的微流控系统可促肾单位结构和内皮成熟,HUVECs迁移形成血管结构。基于成熟类器官上皮细胞的3D近端小管芯片上调OCT2和OAT1/3,增强药物摄取,并对顺铂和马兜铃酸显示准确肾毒性反应。

4 CLINICAL TRIALS
临床前研究推动多项临床试验。I期NCT05042206中,同种异体BM-MSC来源Cellgram-CKD静脉治疗CKD安全耐受,一年内无严重不良事件,但肾功能显著改善证据有限。I期NCT02933827中,AD-MSC静脉治疗12例中重度CKD安全,第24周58%患者估算肾小球滤过率(eGFR)升高,第48周50%维持;基线eGFR≥30 mL/min/1.73 m2者更可能eGFR增加>20%,蛋白尿无显著降低。I期NCT04342325中,AD-MSCs治疗难治性IgA肾病52周安全,尿蛋白和肾损伤标志物降低,但eGFR未明确改善。I/II期NCT07053462正在评估CRISPR-Cas9编辑的低免疫原性供肾移植治疗ESRD的安全性和可行性。Apelin随机双盲安慰剂交叉试验NCT03956576显示肾血流和尿钠增加、蛋白尿减少,但eGFR和CKD进展无变化。III期NCT03819153显示semaglutide降低2型糖尿病合并CKD患者主要肾脏事件和心血管死亡并减缓CKD进展。II期NCT05938712正在肾移植受者中评估dapagliflozin联合semaglutide对肾功能、代谢和心血管结局的影响。

5 CLINICAL CHALLENGES AND LIMITATIONS OF REGENERATIVE MEDICINE FOR RENAL DISEASES
再生医学转化面临生物、技术和监管障碍。肾脏内源再生能力有限,CKD肾单位进行性丢失和间质纤维化导致不可逆损伤;缺氧、氧化、慢性炎症和ECM过度沉积的病理微环境削弱疗效。移植细胞或生物工程组织可诱导免疫应答和排斥,即使MSCs具免疫调节性,也可能在炎症微环境中产生免疫原性。损伤肾脏中细胞存活和整合困难,难以与复杂肾单位、小管、肾小球和血管结构协调。组织工程和血管化仍是瓶颈,类器官和3D打印组织常血管化不足且成熟度有限。安全性问题包括致瘤性、干细胞产品遗传不稳定性和细胞处理异质性;缺乏标准化细胞处理和移植方案。胚胎干细胞应用存在伦理争议,iPSCs虽避免胚胎使用,但基因修饰和基因组稳定性仍受关注。长期疗效不明,多数研究仅显示短期获益。成本、可扩展性和可及性限制个性化治疗普及。监管框架、GMP和批次间变异也是挑战。

6 CONCLUSION AND FUTURE DIRECTIONS
再生医学旨在恢复肾脏结构和功能,而非仅控制症状。过去十年,细胞治疗、EVs、类器官、基因组编辑和组织工程在临床前和早期临床试验中显示潜力,但完全功能恢复和临床转化仍困难。未来需改善组织成熟、血管化和整合,利用生物工程支架、微流控和器官芯片。基于遗传和表观遗传标志的患者特异性精准医学可提高疗效并减少免疫问题。细胞治疗与生物活性水凝胶、药物递送系统或纳米材料的混合策略可优化修复。人工智能可能优化类器官生成和修复评估。临床级制造标准化、长期安全评估和可扩展方法至关重要。多器官系统和生物人工肾装置可能为ESRD提供替代策略。总体而言,该领域仍处早期,需多学科和个性化方法,在安全有效替代透析前仍需克服大量挑战。

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