冻融胁迫下三蕊柳动态转录组解析揭示StWRKY31作为耐寒性正向调控因子

《Plant Physiology and Biochemistry》:Dynamic transcriptomic profiling of Salix triandra under freezing stress identifies StWRKY31 as a positive regulator of cold tolerance

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年10月16日 来源:Plant Physiology and Biochemistry 6.2

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  低温胁迫,特别是冻融温度,严重限制了植物的生长、发育和地理分布。植物通过膜受体感知低温信号,触发一系列级联事件,包括钙离子(Ca2+)内流、活性氧(ROS)信号传导及蛋白激酶激活,最终引发广泛的代谢重编程,实现膜脂组成调整、渗透保护物质(如脯氨酸)积累及抗氧化

低温胁迫,特别是冻融温度,严重限制了植物的生长、发育和地理分布。植物通过膜受体感知低温信号,触发一系列级联事件,包括钙离子(Ca2+)内流、活性氧(ROS)信号传导及蛋白激酶激活,最终引发广泛的代谢重编程,实现膜脂组成调整、渗透保护物质(如脯氨酸)积累及抗氧化能力增强等生理适应。在分子层面,ICE-CBF-COR(CBF表达诱导因子–C重复结合因子–冷响应)级联通路在冷驯化中发挥核心作用,同时多种其他转录因子(TF)也通过复杂的共表达网络参与耐寒性调控。 三蕊柳(Salix triandra)是一种快速生长的多年生木本植物,天然适应亚零度冬季温度,表现出卓越的冻融耐受性。研究人员对三蕊柳在持续冻融条件下进行了时间序列转录组分析,通过差异表达和共表达网络分析,鉴定出一个冷诱导候选基因——WRKY转录因子StWRKY31,该基因在晚期响应共表达簇中呈现同步表达。研究人员进一步验证了StWRKY31的亚细胞定位,并构建了过表达StWRKY31的拟南芥(Arabidopsis thaliana)株系,以评估其对冻融耐受性、ROS积累、抗氧化酶活性及膜完整性的影响。研究结果为理解三蕊柳天然耐寒性的调控机制提供了见解,并为培育抗逆工业作物提供了潜在的遗传靶点。

论文解读

一、研究背景与科学问题

低温胁迫,尤其是冻融温度,是限制植物生长、发育和地理分布的重要环境因素。植物在感知低温信号后,通过膜受体触发钙离子内流、活性氧信号传导和蛋白激酶激活等一系列级联事件,最终导致广泛的代谢重编程,包括膜脂组成调整、渗透保护物质积累和抗氧化能力增强等生理适应。在分子层面,ICE-CBF-COR级联通路已被证实在冷驯化中发挥核心作用,同时MYB、bZIP等多种转录因子也通过物种特异性的共表达网络参与耐寒性调控。
三蕊柳是一种快速生长的多年生木本植物,原产于温带和寒冷地区,主要用于生物质生产、生物能源和植物修复。在中国,三蕊柳主要分布于东北各省。由于其天然适应亚零度冬季温度,三蕊柳表现出卓越的冻融耐受性,能够在极端低温胁迫下维持细胞活力。因此,三蕊柳不仅是重要的工业作物,也是鉴定冷响应基因、为改良其他经济重要物种冻融耐受性提供遗传资源的理想模式植物。然而,三蕊柳耐寒性的分子机制尚不清楚,亟需系统研究。

二、研究内容与主要结论

为探究三蕊柳冻融耐受性的分子基础,研究人员对其在持续冻融条件下进行了时间序列转录组分析,并通过差异表达和共表达网络分析鉴定出WRKY转录因子StWRKY31作为冷诱导候选基因。通过亚细胞定位分析和在拟南芥中过表达StWRKY31的功能验证,研究人员揭示了StWRKY31通过促进酶促和非酶促抗氧化防御增强冻融耐受性的调控机制。该研究为理解三蕊柳天然耐寒性的调控机制提供了新见解,并为培育抗逆工业作物提供了潜在的遗传靶点。

三、关键技术方法

本研究主要采用了以下关键技术方法:以三蕊柳种质为材料,其采集自中国黑龙江省帽儿山国家森林公园,保存于南京林业大学白马教学科研基地,选取约20厘米高的均一幼苗在–4°C下分别处理0、4、12、24和48小时进行冻融胁迫;利用DNBSEQ-T7平台进行转录组测序,通过HISAT2比对、DESeq2差异表达分析、GO和KEGG富集分析解析转录组动态变化;采用Pearson相关系数进行基因中心共表达网络分析,以r>0.95且P<0.05为阈值构建高置信度共表达网络;通过农杆菌介导的花序浸蘸法将StWRKY31过表达载体转入野生型拟南芥Col-0,获得纯合T3代转基因株系;利用qRT-PCR验证转录组数据并检测转基因株系中基因表达水平;通过GFP融合蛋白的瞬时表达和激光共聚焦显微镜观察进行亚细胞定位分析;通过DAB和NBT组织化学染色以及商业试剂盒测定SOD、POD活性及MDA、脯氨酸含量进行生理学分析。

四、研究结果

3.1 冻融胁迫下三蕊柳的生理响应与全局转录组重编程
三蕊柳幼苗在–4°C处理0至48小时期间,幼叶未出现可见冻害症状,保持膨压和绿色。脯氨酸含量及SOD和POD活性均显著升高,确认了活跃的生理响应。转录组测序共获得141.61 GB的清洁数据。主成分分析显示基因表达谱沿PC1轴呈现清晰的时间进程,生物学重复紧密聚类。差异表达分析鉴定出大量转录重编程:差异表达基因(DEGs)数量从4小时的841个急剧增加至48小时的9,163个。基于表达谱聚类分析鉴定出6个共表达簇,其中簇1、2、4主要呈下调模式,反映代谢调整和生长停滞;簇6呈快速瞬时诱导模式,于4小时达峰,包含早期响应胁迫传感器、信号转导组分和初级转录因子;簇5和簇3呈延迟但持续诱导模式,分别于24小时和48小时达峰,可能编码冷冻保护剂、渗透调节物质和ROS清除剂。
3.2 共表达簇的功能特征分析
GO和KEGG富集分析揭示了各共表达簇的功能特征。下调的簇1富集于光合作用相关组分,KEGG分析确认了“光合作用”“碳代谢”和“乙醛酸和二羧酸代谢”的抑制;簇2富集于“生长素受体活性”,KEGG揭示“油菜素甾醇生物合成”和“脂肪酸延长”受抑制;簇4富集于“多糖结合”及“缬氨酸、亮氨酸和异亮氨酸降解”和“萜类骨架生物合成”通路。早期诱导的簇6与乙烯信号、硫化合物转运和线粒体转运相关,KEGG分析富集于“MAPK信号通路”。晚期诱导的簇3与核糖体生物发生和RNA加工相关;簇5富集于多种胁迫响应和调控过程,包括花青素生物合成、昼夜节律和激素响应,是唯一显著富集“冷响应”的簇,KEGG分析显示富集于“硫代谢”和“核黄素代谢”两个冻融耐受相关通路。
3.3 冷响应转录因子的鉴定与RNA-seq数据验证
利用PlantTFDB数据库共鉴定出875个差异表达转录因子,属于52个家族。其中六个家族各占差异表达转录因子的5%以上:ERF(85个)、bHLH(70个)、MYB(62个)、NAC(62个)、bZIP(53个)和WRKY(46个)。层次聚类显示不同家族呈现不同的时间表达模式。选取8个代表性冷响应DEGs进行qRT-PCR验证,Spearman秩相关分析显示两组数据间呈强正相关(ρ=0.950,P<0.001),确认了转录组数据的可靠性。
3.4 潜在参与冻融耐受性的StWRKY31的鉴定
通过同源BLASTP搜索,以8个已知抗冻蛋白(AFP)为查询序列,在三蕊柳蛋白质组中鉴定出80个同源序列,与11,287个DEGs取交集后获得29个差异表达的冷响应基因。层次聚类将其分为4个簇,其中27个基因属于WRKY家族。EVM0008367(命名为StWRKY31)在簇C中表达最为突出,于24小时达到峰值(15.75倍)。亚细胞定位分析表明StWRKY31-GFP融合蛋白特异定位于细胞核,与DAPI染色共定位,符合其作为转录因子的预期功能。
3.5 StWRKY31增强拟南芥冻融耐受性
获得9个独立的卡那霉素抗性转基因株系,选取表达量最高的OE3、OE6和OE10三个纯合T3代株系进行冻融耐受性分析。正常生长条件下,野生型(WT)与过表达株系无显著表型差异。在冷驯化冻融试验中,StWRKY31-OE株系存活率为75.0%–88.3%,显著高于WT的34.5%;在非驯化条件下,OE株系存活率(63.9%–77.8%)也显著高于WT(16.7%)。冻融处理后,OE株系中SOD和POD活性及脯氨酸含量显著高于WT,而MDA积累显著低于WT,表明StWRKY31通过增强抗氧化能力和渗透调节减少膜损伤。
3.6 StWRKY31改变转基因拟南芥中冷响应标记基因的表达
基因中心共表达分析鉴定出80个与StWRKY31高度正相关(r>0.95,P<0.05)的基因,其中包含两个谷胱甘肽S-转移酶(GST)基因。基于此,研究人员检测了拟南芥中AtGSTF8、AtHY5和AtZAT10三个冷响应标记基因的表达。在冷暴露前(0小时),三个基因在StWRKY31-OE株系中的基础表达均显著高于WT,其中AtZAT10上调约10倍,AtGSTF8和AtHY5约3倍。冷暴露后1小时和3小时,这些基因在OE株系中仍保持显著较高表达。至6小时,AtHY5在OE株系中维持显著较高表达,而AtGSTF8和AtZAT10降至低于WT水平。结果表明StWRKY31不仅增强特定冷响应基因的基础表达,还调节其在冷胁迫期间的动态表达模式。

五、讨论与结论

讨论部分指出,与草本植物中CBF快速响应(2–6小时达峰)不同,多年生木本植物在长期冻融胁迫中表现出更复杂和持续的调控模式。三蕊柳的多相转录响应包括早期胁迫感知(簇6,4小时达峰)、随后的代谢调整和持续细胞保护(簇5和簇3,分别于24小时和48小时达峰),反映了“生长-防御权衡”下的能量重新分配。StWRKY31在–4°C冻融胁迫下于24小时达峰的表达模式,区别于许多草本物种中观察到的快速转录爆发,提示其可能调节长期细胞稳态而非即时冷感知。StWRKY31通过促进酶促(SOD/POD)和非酶促(GSH相关)抗氧化防御增强冻融耐受性,其相关共表达簇显著富集于硫代谢通路,该通路对谷胱甘肽生物合成至关重要。StWRKY31还调节AtGSTF8、AtZAT10和AtHY5等冷响应标记基因的表达,这些基因在冷暴露前即呈现升高的基础表达,提示可能存在防御预启动状态。研究也承认了异源拟南芥系统的局限性,指出三蕊柳稳定遗传转化体系尚未建立,未来建立高效转化系统对于最终验证StWRKY31的体内功能至关重要。
结论部分总结:本研究通过对三蕊柳在冻融胁迫下的时间序列转录组分析,鉴定出StWRKY31作为属于中晚期适应模块的冷诱导转录因子。在拟南芥中过表达StWRKY31显著增强了冻融耐受性,表现为存活率提高、ROS积累减少、抗氧化酶活性和脯氨酸含量增加以及MDA积累减少。此外,StWRKY31以时间依赖性方式调节冷响应标记基因(AtGSTF8、AtZAT10和AtHY5)的表达。综合这些发现表明,StWRKY31作为冻融耐受性的正向调控因子,至少部分通过增强酶促和非酶促抗氧化防御发挥作用。

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