紫苏(Perilla frutescens)R2R3-MYB家族全基因组鉴定及PfMYB33-PfbHLH11复合物调控花青素生物合成的模型

《Plant Physiology and Biochemistry》:Genome-Wide Analysis of the R2R3-MYB Family in Perilla frutescens and the Regulatory Model of the PfMYB33-PfbHLH11 Complex in Anthocyanin Biosynthesis

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年10月17日 来源:Plant Physiology and Biochemistry 6.2

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  矢车菊素型花青素(cyanidin-type anthocyanins)驱动紫苏(Perilla frutescens)叶色变异。全基因组调查在紫苏中鉴定出164个R2R3-MYB基因。PfMYB33作为第6亚组的R2R3-MYB,是重要的紫色叶调控因子。Pf

  
矢车菊素型花青素(cyanidin-type anthocyanins)驱动紫苏(Perilla frutescens)叶色变异。全基因组调查在紫苏中鉴定出164个R2R3-MYB基因。PfMYB33作为第6亚组的R2R3-MYB,是重要的紫色叶调控因子。PfMYB33与PfbHLH11互作,并表现出双重激活/抑制功能。PfMYB33-PfbHLH11复合物激活DFR2并解除5GT2的抑制。
花青素(anthocyanin)是一类广泛存在于植物中的水溶性天然色素,属于类黄酮家族的重要次生代谢物,具有从橙红到紫蓝的丰富色彩,并参与植物逆境响应与抗氧化防御。紫苏(Perilla frutescens (L.) Britt.)为唇形科一年生草本植物,兼具药用与食用价值,其种质资源丰富,叶片呈现绿色(G)、双面紫色(P)及上绿下紫(GP)等多种稳定表型,是研究植物着色与次生代谢调控的理想材料。已有研究表明,紫苏叶色差异主要取决于花青素的积累水平与组成,主要色素为矢车菊素型花青素,如紫苏素(shisonin)及其丙二酰化衍生物。然而,其生物合成的分子调控机制,特别是关键转录因子在组织特异性色素积累中的功能,至今尚未充分阐明。为此,研究人员开展了本研究,旨在解析不同色泽紫苏品种间花青素变异的转录调控网络。

研究人员整合非靶向代谢组学、花青素靶向代谢组学与转录组学分析,对G、GP、P三种叶色紫苏的叶片进行系统比较,鉴定与花青素积累显著相关的候选基因。在全基因组水平完成紫苏R2R3-MYB基因家族的系统鉴定,共获得164个成员。研究发现,差异表达转录因子PfMYB33与PfbHLH11在紫叶中共表达并发生蛋白互作,二者形成的复合物能够协同激活DFR2(二氢黄酮醇4-还原酶基因),并解除PfMYB33对5GT2(花青素糖基转移酶基因)的转录抑制,从而促进花青素积累。该研究首次揭示了紫苏中MYB-bHLH复合物对花青素合成途径不同节点的双向调控模式,为阐明紫苏叶色多样性的分子机制奠定了理论基础,并为紫苏优质种质分子育种提供了重要依据。

供试三种叶色紫苏种子采购自河北省安国市商业供应商,经南京农业大学朱再标教授鉴定,于标准化温室条件下培养,三个月龄取样,每种表型设三个生物学重复。代谢组学采用非靶向液相色谱-质谱联用(LC-MS)与花青素靶向LC-MS/MS;转录组学利用RNA-seq测序并以DESeq2鉴定差异表达基因。R2R3-MYB家族采用HMMER搜索MYB结构域(PF00249)并经CDD复核,系统发育用MEGA 12最大似然法构建。蛋白互作与调控功能验证使用亚细胞定位、酵母双杂交(Y2H)、酵母单杂交(Y1H)、双荧光素酶(LUC)报告系统及紫苏子叶瞬时表达。

3.1 非靶向代谢组分析结果
通过比色法定量总花青素和总黄酮含量,发现紫叶含量最高,绿紫叶次之,绿叶最低,其中紫叶花青素含量为3.59 mg/g DW,分别为绿叶和绿紫叶的5.67倍和1.29倍。非靶向LC-MS共鉴定675种次级代谢物,差异代谢物显著富集于“类黄酮生物合成”“黄酮和黄酮醇生物合成”等通路,表明叶色差异与类黄酮代谢密切相关。

3.2 花青素靶向代谢组结果
花青素靶向LC-MS/MS共检出42种黄酮类化合物,其中矢车菊素型花青素占26%,为最丰富类群。紫叶中含量最高的花青素为矢车菊素-3-O-5-O-(6-O-香豆酰基)-二葡萄糖苷(cyanidin-3-O-5-O-(6-O-coumaroyl)-diglucoside),达221.28 μg/g DW。P vs G比较共鉴定27个差异花青素代谢物,其中26个在紫叶中显著上调,证明矢车菊素型花青素的差异积累是叶色差异的主要代谢基础。

3.3 转录组分析结果
RNA-seq共获得61.40 Gb高质量数据,平均比对率为91.38%。差异表达基因(DEG)分析显示,GP vs G、P vs G、P vs GP三组分别有6215、6360、6808个DEGs。GO与KEGG富集分析一致显示这些DEGs显著富集在类黄酮与花青素生物合成以及逆境响应相关通路,与代谢组结果和表型差异高度吻合。

3.4 花青素生物合成途径基因鉴定结果
在转录组水平共鉴定61个编码花青素生物合成关键酶的DEGs,包括PAL、C4H、CHS、DFR、ANS等。表达模式分析显示,上游基因(PAL、4CL)在G和GP叶中高表达,而下游基因(F3'H、DFR、UGT、AT)在紫叶中显著高表达,说明下游基因表达上调驱动代谢流向花青素合成方向流动。

3.5 R2R3-MYB家族全基因组鉴定及分析结果
利用HMMER搜索与CDD结构域验证,研究人员共鉴定164个PfR2R3-MYB蛋白,按氨基酸长度顺序命名为PfMYB01至PfMYB164。系统发育分析将其与拟南芥R2R3-MYB蛋白划分为32个亚群(C1-C32)。保守基序、基因结构与染色体定位分析表明,同一亚群成员具有相似的序列特征;164个基因不均匀分布于20条染色体上,且存在串联重复事件。顺式作用元件预测显示,光响应元件和茉莉酸甲酯(MeJA)响应元件最为丰富。

3.6 PfMYB基因表达模式分析结果
转录组表达分析显示,164个PfMYB基因中有141个在至少一种组织中表达,87个在三种叶色中均表达。三组比较共鉴定出140个DEGs,表达聚类将其分为8个簇。其中簇1包含45个基因,在紫叶中近乎特异高表达,提示这些基因可能是花青素合成的正调控候选因子。

3.7 调控花青素合成的PfMYB基因鉴定结果
系统发育分析表明,PfMYB33和PfMYB56与拟南芥第6亚群花青素激活因子(AtMYB75、AtMYB90、AtMYB113、AtMYB114)聚在一起,而PfMYB82和PfMYB81与拟南芥S5亚群AtMYB123(调控原花青素)聚类。结合表达模式,PfMYB33属于紫叶特异高表达的簇1,且氨基酸序列具有花青素调控型MYB的典型特征基序,因此被确定为紫苏花青素合成的候选关键调控因子。

3.8 PfMYB33与PfbHLH11互作及功能验证结果
亚细胞定位实验显示PfMYB33和PfbHLH11均定位于细胞核。Y2H实验证实二者存在直接蛋白互作。相关性分析表明,两个转录因子的表达水平与13个花青素代谢物和22个花青素合成结构基因呈显著正相关。Y1H实验显示,PfbHLH11结合DFR2与5GT2启动子,而PfMYB33除这两个启动子外还结合C4H2、CHS4、DFR1和ANS5启动子。双LUC实验表明,PfMYB33单独显著激活DFR2启动子活性,与PfbHLH11共表达时激活效应协同增强;PfMYB33单独显著抑制5GT2启动子活性,但与PfbHLH11共表达时抑制被部分解除。紫苏子叶瞬时表达实验进一步证实,共表达PfMYB33与PfbHLH11时花青素积累量最高,单独表达PfMYB33次之。

讨论部分指出,紫苏叶色多样性主要取决于矢车菊素型花青素的差异积累,代谢组与转录组联合分析确认下游结构基因(F3'H、DFR、UGT等)的表达上调是紫叶花青素大量积累的直接原因。PfMYB33在序列上具有花青素调控型R2R3-MYB的典型特征,属于拟南芥S6亚群,其在紫叶中的特异高表达支持其作为关键上游调控因子的角色。更为重要的是,Y2H、Y1H与双LUC结果共同揭示了PfMYB33-PfbHLH11复合物对花青素途径的精细调控机制:一方面协同激活DFR2,另一方面缓解PfMYB33对5GT2的抑制,形成对代谢途径不同节点的双向调节。这种相反效应可能允许同一复合物在不同代谢分支间协调碳通量,是紫苏叶色多样化的一种精细分子策略。

本研究通过整合代谢组学与转录组学分析,系统研究了G、GP、P三种紫苏叶色变异的代谢和分子基础。结果表明,矢车菊素型花青素的差异积累是驱动叶色梯度形成的首要生化原因。全基因组鉴定共获得164个PfMYB基因,其中与拟南芥第6亚群成员聚类的PfMYB33在紫叶中特异高表达,被确定为紫苏花青素生物合成的关键调控因子。PfMYB33与AtTT8的推定同源物PfbHLH11发生物理互作且共表达,二者共同结合DFR2启动子并协同激活其转录;PfMYB33单独抑制5GT2,而PfbHLH11可部分缓解该抑制。在紫苏子叶中瞬时共表达PfMYB33与PfbHLH11导致最高的花青素积累,证实了该复合物的协同促花青素功能。这一双向调控模式揭示了单个MYB转录因子对花青素途径不同节点施加相反效应的复杂调控逻辑,其bHLH互作伙伴作为共调因子微调靶基因表达,为紫苏花青素生物合成与叶色变异的分子机制提供了新见解。
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