STIM1与STIM2的差异互作决定中枢突触效能

《Cell Reports》:Divergent interplay between STIM1 and STIM2 sets the efficacy of central synapses

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年10月17日 来源:Cell Reports 7.7

编辑推荐:

  基质相互作用分子(stromal interaction molecules, STIMs)是内质网(endoplasmic reticulum, ER)驻留的钙(Ca2+)传感器,调节Ca2+稳态。哺乳动物表达两种

  
基质相互作用分子(stromal interaction molecules, STIMs)是内质网(endoplasmic reticulum, ER)驻留的钙(Ca2+)传感器,调节Ca2+稳态。哺乳动物表达两种异构体,STIM1和STIM2,但它们在神经传递中发挥冗余还是不同作用仍知之甚少。研究人员利用Ca2+成像和电生理学,在缺乏STIM1、STIM2或两者均缺乏的海马神经元中,检测了STIMs在兴奋性和抑制性突触的突触前和突触后功能。两种异构体冗余激活钙库操纵性Ca2+内流(store-operated Ca2+ entry, SOCE),并放大突触前Ca2+内流,通过扩大突触囊泡的易释放池(readily releasable pool of synaptic vesicles)和加速囊泡再补充来维持神经递质释放。这些突触前作用具有突触特异性:STIM1主要支持兴奋性突触,而STIM2对抑制性突触至关重要。在突触后,STIM1和STIM2对谷氨酸和GABA受体水平产生相反作用,因此同时缺失两种异构体可挽救突触后功能。总之,这些发现表明,STIM1和STIM2根据突触类型和亚细胞区室差异性地调节突触效能。
研究背景与问题:钙(Ca2+)是调节神经元发育、功能及退化相关过程的中心信使。电压门控Ca2+通道(voltage-gated Ca2+ channels, VGCCs)将动作电位(action potentials, APs)到达与神经递质释放偶联,是突触传递起始所必需。但VGCC不足以完全支持突触前神经递质释放,包括谷氨酸、γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid, GABA)等递质分泌可由内质网(endoplasmic reticulum, ER)Ca2+释放放大和维持。突触后,神经递质激活受体并触发突触可塑性信号级联,也高度依赖ER Ca2+释放。ER Ca2+耗竭触发钙库操纵性Ca2+内流(store-operated Ca2+ entry, SOCE)。SOCE由ER Ca2+传感蛋白基质相互作用分子1和2(stromal interaction molecules 1 and 2, STIM1和STIM2)启动,它们在ER-质膜连接处激活Orai(或Ca2+释放激活通道,CRAC),随后由肌/内质网Ca2+ ATP酶(sarcoplasmic/endoplasmic reticulum Ca2+ ATPase, SERCA)恢复ER Ca2+。STIM1和STIM2各自被提出调节不同神经元生理过程,但很少在同一研究中比较,且几乎从未一起消除,因此其在中枢突触中是必需、冗余还是不同仍不清楚。研究人员通过敲低每种异构体或两者,研究成熟海马兴奋性和抑制性突触的突触前、突触后功能。结果表明,STIM1和STIM2在触发突触前SOCE以维持谷氨酸和GABA释放中互补,而在突触后生理中功能分歧,证明STIMs在维持AP驱动突触传递效能中的基础作用。

关键技术方法:研究使用来自产后第1–2天SAS Sprague-Dawley大鼠(Charles River, SAS SD Strain Code 400)的原代解离海马培养物。主要方法包括:针对STIM1、STIM2或两者的短发夹RNA(short hairpin RNA, shRNA)敲低(knock-down, KD)及双敲低(double knock-down, DKD);活细胞Ca2+成像,使用Syb2-GCaMP6f、PSD95-GCaMP6f、ER-GCaMP150、iGluSnFR4f和iGABASnFR2等探针;全细胞膜片钳电生理记录微小兴奋性突触后电流(miniature excitatory postsynaptic current, mEPSC)、兴奋性突触后电流(excitatory postsynaptic current, EPSC)、微小抑制性突触后电流(miniature inhibitory postsynaptic current, mIPSC)、抑制性突触后电流(inhibitory postsynaptic current, IPSC)及高渗蔗糖反应;免疫印迹、免疫荧光共定位和电子显微镜;药理学阻断Orai、RyR和IP3R;定制MATLAB脚本分析。

研究结果:消除所有STIM异构体不影响兴奋性突触数目。研究人员用shRNA KD使STIM1降低87%±13%、STIM2降低83%±16%、双敲>90%,无异构体代偿上调,Orai1水平无显著变化。PSD95与VGluT1共定位定量显示各组兴奋性突触密度无差异,提示STIM缺失不影响成熟海马解离神经元兴奋性突触稳定或维持,至少至DIV 22。

STIM1和STIM2在设定突触后强度中作用不同。PSD95-GCaMP6f检测显示,STIM2 KD增加单AP突触后Ca2+幅度,STIM1 KD减慢衰减,双敲叠加。mEPSC中,STIM2 KD增加幅度,STIM1 KD降低幅度,频率无变化;双敲使幅度恢复对照。表面AMPAR亚基检测显示,STIM2 KD和DKD增加GluR1表面水平,STIM1 KD降低;GluR2表面和总蛋白无变化。因此STIM1和STIM2分别是突触后强度的正、负调控者;双敲增加GluR1但不增加突触后活动,提示突触前释放和/或受体组织改变。

STIM1和STIM2对持续活动期间最佳突触前Ca2+内流和谷氨酸释放均必要。Syb2-GCaMP6f显示单AP时各组无显著差异;40 Hz高频刺激时单敲轻微降低幅度,双敲约降低50%并加速衰减,STIM1 KD出现后峰下冲。EPSC中STIM缺失降低幅度,1 Hz快速抑制,10 Hz未能易化并加速抑制,双敲部分恢复易化。累积EPSC分析显示STIM1和/或STIM2消除降低囊泡补充率,STIM1 KD降低校正易释放池(corrected readily releasable pool, RRPCORR);高渗蔗糖和电镜也显示STIM1 KD和DKD RRP减少。iGluSnFR4f显示释放概率降低,STIM2 KD活性区对接囊泡更多但功能释放位点无变化;囊泡直径减小、形态变异增加。

STIM1是异步兴奋性神经传递的主要驱动者。单AP EPSC累积电荷转移无显著差异,但DKD趋势更快。40 Hz后异步总电荷转移仅STIM1 KD减少,STIM1 KD与DKD无差异,表明仅STIM1参与异步谷氨酸释放。PSD95-GCaMP6f显示STIM缺失降低高频突触后Ca2+幅度,STIM2 KD影响较轻;刺激后衰减更快,双敲低于基线,支持兴奋性异步传递减少且Ca2+清除增强。

SOCE在动作电位发放期间由ER Ca2+耗竭激活。急性阻断Orai(BTP2/YM 58483 300 nM;zegocractin/CM-4620 1 μM)导致EPSC幅度降低趋势、加速抑制、损害短期易化并减少异步传递。阻断RyR和IP3R不影响EPSC幅度但加速抑制,表明ER Ca2+释放是维持谷氨酸释放所必需。ER-GCaMP150显示1 Hz刺激引起ER Ca2+快速减少后约2 s恢复;40 Hz先快速释放后过冲。STIM1/2 DKD减少负面积、增加过冲,Ret4增加且SERCA2在STIM1 KD轴突增加、DKD减少,提示Ca2+缓冲增加与SOCE减少共同导致突触前谷氨酸释放缺陷。

SOCE介导抑制性异步神经传递但仅STIM2调节GABA能突触强度。抑制性突触密度无差异。IPSC中仅STIM2 KD显示AP诱发幅度增加趋势;高频刺激下STIM缺失加速抑制,异步GABA释放减少,双敲最强。STIM2消除比STIM1导致更快抑制和异步减少。高渗蔗糖显示STIM2 KD增加RRP,STIM1无作用。iGABASnFR2显示STIM2 KD和DKD轻微增加GABA释放概率和峰值;mIPSC频率无差异,STIM2 KD增加幅度。结果表明STIM2是突触前GABA释放和突触后GABA受体水平的负调控者;双敲可功能挽救自发性传递,STIM1和STIM2通过不同机制相反调节不同突触强度。

讨论部分总结:研究人员旨在解剖STIM1和STIM2在突触传递中的冗余与特异性功能,比较兴奋性和抑制性突触的突触前和突触后作用。既往研究通常一次检查一种STIM异构体,很少同时消除两者,且多聚焦兴奋性谷氨酸能突触。本数据显示,突触前STIM1和STIM2在响应重复AP发放触发SOCE中作用相似,由此产生的Ca2+内流对维持神经递质释放稳健性必不可少;STIM1对SOCE介导的谷氨酸释放更重要,STIM2是GABA释放主要驱动者。突触后STIM1和STIM2相反调节神经递质受体水平,影响突触强度。消除STIM蛋白还影响ER Ca2+缓冲能力,提示其在协调细胞内钙动态中有更广泛作用。STIM1和STIM2在不同突触类型和亚细胞区室的分歧作用可能作为可塑性底物,神经元可通过调节STIM异构体相对丰度调控特定Ca2+动态和网络特性。讨论还指出STIMs影响突触囊泡形态,缺失STIM导致多形性囊泡增加,可能源于内吞和囊泡再形成缺陷;ER-PM接触和脂质交换可能也受影响。双敲对某些释放表型的“挽救”可能因释放概率降低而防止囊泡耗竭。局限性包括囊泡形态和量子大小机制未明、共聚焦分辨率不足以确认ER形态改变、H1启动子缺乏组织特异性导致所有神经元类型同时敲低、DIV约16后才达最大敲低效率,因此不能断言STIM1和STIM2在神经元和突触发育中的作用。

研究结论翻译:总之,这些发现表明,STIM1和STIM2根据突触类型和亚细胞区室差异性地调节突触效能。
相关新闻
生物通微信公众号
微信
新浪微博
  • 搜索
  • 国际
  • 国内
  • 人物
  • 产业
  • 热点
  • 科普

热点排行

    今日动态 | 人才市场 | 新技术专栏 | 中国科学人 | 云展台 | BioHot | 云讲堂直播 | 会展中心 | 特价专栏 | 技术快讯 | 免费试用

    版权所有 生物通

    Copyright© eBiotrade.com, All Rights Reserved

    联系信箱:

    粤ICP备09063491号