通过一种双兼容质粒在大肠杆菌(Escherichia coli)中构建异源核黄素生物合成途径

《Food Bioscience》:Construction of a heterologous riboflavin biosynthesis pathway by a double compatible plasmid in Escherichia coli

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年10月21日 来源:Food Bioscience 6.2

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  •一个包含26个基因的核黄素合成途径被重构为四个模块。•模块化途径的组装使得从葡萄糖出发进行核黄素的从头合成成为可能。•代谢物分析揭示了上游和下游模块之间的耦合关系。•发酵罐中氧气传输的优化提高了核黄素的产量。引言核黄素是人体和动物生长所需的微量营养素之一,在体内以黄素单核苷酸和

  
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    一个包含26个基因的核黄素合成途径被重构为四个模块。
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    模块化途径的组装使得从葡萄糖出发进行核黄素的从头合成成为可能。
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    代谢物分析揭示了上游和下游模块之间的耦合关系。
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    发酵罐中氧气传输的优化提高了核黄素的产量。

引言

核黄素是人体和动物生长所需的微量营养素之一,在体内以黄素单核苷酸和黄素腺嘌呤二核苷酸的活性形式作为辅酶,促进新陈代谢或参与细胞内的多种氧化反应(Saedisomeolia & Ashoori, 2018)。与大多数植物和微生物不同,脊椎动物无法自行合成这种营养素,必须通过饮食获得(Vitreschak, Rodionov, Mironov, & Gelfand, 2002)。当人体摄入的核黄素量低于0.3毫克/天时,容易导致结膜炎、脂溢性皮炎、白内障、心血管疾病等(Brabin & Coulter, 2009; McNulty, Pentieva, & Ward, 2023; Sinha et al., 2022)。核黄素广泛应用于功能性食品、饮料、制药和饲料行业,其年需求量不断增加,因此研究和开发更有效的合成方法至关重要(T. Y. Lee et al., 2023; H. Li, Krall, Frankenfeld, & Slavin, 2023; You et al., 2021)。
在核黄素工业生产的早期阶段,化学合成和半合成方法是主要的生产方式。然而,由于反应过程中会产生重金属和有毒化合物,这些方法逐渐被生物发酵所取代(Revuelta et al., 2017)。微生物发酵因其原材料成本低廉、生产过程简单且无污染而受到青睐。经过人工筛选的野生核黄素生产菌株(如Clostridium acetobutylicum和Ashbya gossypii)由于产率低和发酵周期长,在发酵生产中并未取得显著优势(Revuelta et al., 2017; J.-R. Zhang et al., 2022)。幸运的是,随着基因工程技术的进步,诸如突变选择、强启动子替换、基因敲除和异源表达等代谢工程策略被应用于工业菌株的设计中,显著提高了核黄素的产量。例如,重组Bacillus subtilis菌株RF1-pMA5-sat-zwf在60小时的中试发酵中产生了12.01克/升的核黄素产量(Cheng et al., 2015);Bacillus sp. CJKB0001菌株经过3天的发酵后,核黄素产量达到26.8克/升(Lee Kwang et al., 2003)。此外,Lactobacillus和酵母Candida flareri等细菌和真菌也被用于核黄素的生产研究。增强前体供应和优化核黄素操纵子已成为改造核黄素生产菌株的主要方法(Thakur, Tomar, Brahma, & De, 2016; Yatsyshyn, Fedorovych, & Sibirny, 2014; J.-R. Zhang et al., 2022)。
微生物中的核黄素合成途径已经被彻底阐明。葡萄糖进入细胞后,首先通过糖酵解(EMP)途径、三羧酸(TCA)循环、戊糖磷酸途径和嘌呤途径转化为核酮糖-5-磷酸(RU-5P)和鸟苷三磷酸(GTP)。这些代谢物随后作为核黄素合成途径的底物,在一系列5-6步的酶促反应中最终生成核黄素(Fu et al., 2022)。据报道,通过增强参与核黄素合成途径的基因表达、过表达嘌呤合成途径以及调节能量代谢等方法,工程菌株(如B. subtilis和Corynebacterium ammoniagenes)的核黄素产量显著提高(Revuelta et al., 2017)。例如,当使用强启动子PAgGPD共过表达核黄素合成途径基因RIB1、RIB2、RIB3、RIB5和RIB7时,Aspergillus oryzae的核黄素产量是野生型的5.4倍(Ledesma-Amaro, Serrano-Amatriain, Jiménez, & Revuelta, 2015)。通过对B. subtilis RH33进行fed-batch发酵,并通过组成型P43启动子过量表达gapB(编码NADPH依赖的甘油醛-3-磷酸脱氢酶)和fbp(编码果糖-1,6-二磷酸酶)基因,核黄素产量增加了27.8%(Y. Duan, Chen, Chen, Jingyu, & Zhao, 2010)。目前,B. subtilis因其良好的发酵性能和成熟的工业应用而成为核黄素生物合成的常用工程菌株。然而,菌株优化可能会受到质粒稳定性和相互连接的代谢途径调控等因素的影响(Perkins et al., 1999)。先前的代谢建模估计,在葡萄糖受限条件下,B. subtilis的理论核黄素产量约为0.16摩尔/摩尔葡萄糖(大约0.335克/克葡萄糖),而实验实际获得的葡萄糖到核黄素的转化率通常低于这一理论值(Sauer, Cameron, & Bailey, 1998)。这些观察表明,有效协调前体供应和下游核黄素合成仍是一个重要的工程挑战。
大肠杆菌是一种在生物学研究中非常重要的底盘细菌,生长迅速,具有明确的基因组特征,长期以来一直被用于生产氨基酸、生物燃料和可降解塑料等天然产物(Y. Lee et al., 2024; C. Wang, Pfleger, & Kim, 2017; L. Wang et al., 2023)。它是一种具有巨大工业生产潜力的宿主细菌。在之前的研究中,将拟南芥中的维生素C合成途径的十个基因表达在大肠杆菌中,摇瓶培养产物中含有1.53毫克/升的维生素C,实现了维生素C的从头合成(Tian et al., 2022)。从两个菌株中引入了六个基因到大肠杆菌中,成功构建了一种生产terrequinone A的工程菌株,通过L-色氨酸和预醇的发酵获得了106.3毫克/升的terrequinone A(L. Wang et al., 2023)。经过代谢工程和合成生物学改造的大肠杆菌具有完全表达外源代谢途径的潜力。在大肠杆菌中建立独立的核黄素合成途径是一个有吸引力的设计方向。B. subtilis的核黄素合成途径涉及26个功能基因,这些基因在大肠杆菌中的成功异源表达是一个重要的研究课题(Shi, Shen, Chen, Chen, & Zhao, 2009)。在这项研究中,我们利用实验室先前建立的基于PCR的精确合成(PAS)技术在大肠杆菌中实现了核黄素的从头合成(Xiong et al., 2006)。这些核黄素合成途径的26个基因被分为四个功能模块:RU-5P合成、肌苷一磷酸(IMP)合成、GTP合成和核黄素调控因子。这些功能模块被引入大肠杆菌并进行了适当表达,优化了发酵条件,最终在fed-batch发酵48小时后,该菌株的核黄素产量达到了651.94毫克/升。尽管这个产量低于以往报道的水平,但这项研究提供了一种新的核黄素生产策略和方法。

章节片段

化学物质、质粒和菌株

标准核黄素由sigma-aldrich(美国密苏里州圣路易斯)提供,研究中使用的载体和引物来自Sangon Biotech(中国上海),其他分子生物学试剂由Takara(日本)提供。实验中使用的标准和化学试剂分别为色谱纯度和分析纯度等级,购买自Aladdin(中国上海)。
质粒pBR326携带pBR322复制起点(ori)和氨苄青霉素(Ap)

在大肠杆菌中组装核黄素合成途径

为了在大肠杆菌中组装一个完整的从头合成途径,优化并化学合成了26个参与核黄素合成的基因。这些基因被命名为BsGLK1S、BsZWF1S、BsPglS、BsGNDS、BsYWLFS、BsPRSS、BspurFS、BspurDS、BspurNS、BspurLS、BspurQS、BspurSS、BspurMS、BspurKS、BspurES、BspurCS、BspurBS、BspurHS、BsGuaAS、BsGuaBS、BsGMPKS、BsNDKS、BsRibAS、BsRibBS、BsRibGS和BsRibHS。其序列见表S3。
核黄素从头合成途径可以分离

讨论

代谢工程和合成生物学的发展改变了生产菌株的开发过程,人工改造的工程菌株表现出更高的目标化合物生产效率(Dmytruk et al., 2014)。尽管取得了这些进展,但在某些方面仍需进一步改进

结论

在这项研究中,从B. subtilis中获得的26个基因的核黄素合成途径通过密码子优化、序列重构和模块化组装到两个兼容的质粒中,在大肠杆菌中得到了重建。重建的途径能够实现从葡萄糖到核黄素的头从头转化,在fed-batch发酵过程中最大产率达到651.94毫克/升。RT-qPCR分析确认了所有26个异源基因的转录,尽管它们的表达水平存在差异

CRediT作者贡献声明

Rihe Peng:撰写 – 审稿与编辑、验证、项目管理、资金获取、概念构思。Yongsheng Tian:撰写 – 审稿与编辑、验证、项目管理、资金获取、概念构思。Bo Wang:方法学、研究、数据管理。Yongdong Deng:撰写 – 审稿与编辑、方法学、研究、数据管理。Hao Zhang:撰写 – 初稿、方法学、研究、形式分析、概念构思。Quanhong Yao:撰写 –

作者声明他们与本手稿所述的工作没有利益冲突。

数据可应要求提供。

? 作者声明他们没有已知的可能会影响本文工作的财务利益或个人关系。

本工作得到了上海市农业委员会(2021-02-08-00-12-F00795)和上海市闵行区领军人才计划(202245)的支持

Hao Zhang|Yongdong Deng|Bo Wang|Yongsheng Tian|Rihe Peng|Quanhong Yao
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