《Biophysica》:Lipid Nanoparticles–Protein Interactions: Biochemical and Biophysical Tools to Unveil the Protein Corona Biointerface and Drive Precision Delivery
编辑推荐:
脂质纳米颗粒(LNPs)是临床进展最先进的非病毒核酸递送系统之一;然而,其在生物流体中自发组装的蛋白冠(PC)在很大程度上决定其生物分布,使LNP–PC生物界面成为实现更高效、更选择性递送至非肝器官的关键决定因素。传统终点分析无法解析LNP–PC生物界面的动力
脂质纳米颗粒(LNPs)是临床进展最先进的非病毒核酸递送系统之一;然而,其在生物流体中自发组装的蛋白冠(PC)在很大程度上决定其生物分布,使LNP–PC生物界面成为实现更高效、更选择性递送至非肝器官的关键决定因素。传统终点分析无法解析LNP–PC生物界面的动力学和结构复杂性。本综述系统概述研究该生物界面的方法,涵盖LNP–PC复合物的分离,如差速离心(DC)、密度梯度离心(DGC)、磁分离、光亲和分离、基于抗体的下拉、尺寸排阻色谱(SEC)以及不对称流场流分离(AF4);PC性质表征,如动态光散射(DLS)、多角度光散射(MALS)、纳米颗粒跟踪分析(NTA)、电泳光散射(ELS)、透射电子显微镜(TEM)、核磁共振波谱(NMR)、荧光相关光谱(FCS)、液相色谱-质谱联用(LC-MS)、圆二色光谱(CD)和分析超速离心(AUC);使用耗散型石英晶体微天平(QCM-D)、表面等离子体共振(SPR)和生物层干涉测量(BLI)实时监测结合动力学;通过等温滴定量热法(ITC)、微量热泳动(MST)和光谱位移(SpS)表征结合亲和力;以及LNPs的高通量筛选方法。整合这些工具可区分硬冠(HC)和软冠(SC)群体,定量测定吸附动力学和结合亲和力,并将PC组成指纹与LNP趋向性相关联。该整合工作流程将LNP–PC生物界面从定义不清的生物层转变为可编程信息界面,为加速下一代LNPs的合理设计提供方法学指南。
1. Introduction
本文指出脂质纳米颗粒(LNPs)是临床进展最快的非病毒核酸递送系统之一,具安全性、可重复给药、大载荷、易工程化和低成本制造等优势,并已从COVID-19 mRNA疫苗拓展至遗传病、感染和肿瘤。然而,肝外高效选择性递送仍是瓶颈。系统注射后LNPs在生物流体中数秒内形成蛋白冠(PC),其硬冠(HC)和软冠(SC)分别由强/慢交换和弱/快交换蛋白构成,并受Vroman效应调控;PC重塑LNP理化性质、生物分布、细胞摄取和免疫识别,主动与被动靶向均需考虑PC。现有体外筛选难以预测体内效能,因此本文整合分离、表征、动力学和高通量筛选方法,旨在将LNP–PC生物界面转化为可编程信息界面。
2. Lipid Nanoparticles and Their Protein Corona: Composition, Endogenous Interference, and Unique Interfacial Features
LNPs由可电离脂质、辅助磷脂、胆固醇和PEG-脂质自组装而成。可电离脂质(40–60 mol%)的pK
a决定电荷响应和ApoE吸附;辅助磷脂(5–15 mol%)和胆固醇(20–40 mol%)调节膜稳定性、流动性和疏水微区;PEG-脂质(1–3 mol%)提供空间稳定,其脱附暴露疏水表面并触发PC。微流控制备影响尺寸、电荷、PEG密度和包封效率。mRNA-LNP、siRNA-LNP和pDNA-LNP因货物和脂质组成不同而具有不同PC;选择性器官靶向(SORT)第五组分可重定向脾/肺,PC组成(ApoE、玻连蛋白(vitronectin)、糖蛋白I等)决定器官特异性。LNP界面是流体、可交换脂质单层,PEG脱附、脂质交换和脂蛋白融合使其区别于无机/聚合物颗粒;内源性脂蛋白和细胞外囊泡(EVs)与LNP密度/尺寸重叠,干扰分离,并可通过膜整合改变LNP身份。cryo-TEM显示ApoE4可部分整合入双层;PC并非独立吸附层而是LNP自身修饰。5A2-SC8与3A5-SC14案例表明,PC组成(ApoE富集与否)决定肝细胞与Kupffer细胞趋向。
3. Methods for Isolation of LNP–PC Complexes
分离方法决定观察HC还是SC。差速离心(DC)高g剥离SC并共沉脂蛋白;密度梯度离心(DGC)较温和但耗时长且密度重叠;磁分离利用SPIONs温和保留复合物但需载铁和配方优化;光亲和分离共价捕获HC/SC并支持绝对定量但需光探针;抗体下拉针对PEG化LNP、高通量但SC损失;尺寸排阻色谱(SEC)低剪切保留部分SC但稀释和柱吸附;不对称流场流分离(AF4)零剪切最接近天然状态但通量和稀释受限。选择应依问题而定。
4. Methods for Characterizing the PC and LNP–PC Complexes
表征需正交。DLS给出流体力学尺寸;MALS联用AF4/SEC给绝对质量;NTA单颗粒尺寸/浓度并估算PC厚度和HC/SC;ELS测ζ电位;TEM/cryo-TEM观察形态和PC厚度;NMR在浑浊介质中提供原子级信息,
19F标记可测PC;FCS单分子扩散;LC-MS是PC组成金标准但破坏空间/动态;CD测二级结构;AUC解析尺寸/密度异质性并区分HC/SC。方法选择应匹配问题。
5. Methods for Characterizing Adsorption Kinetics and Binding Affinity
HC提供持久生物身份,SC快速交换难表征。5.1 QCM-D测质量与耗散,区分HC/SC并实时追踪;样品量大低通量。5.2 ITC无标记测K
D、ΔH、ΔS、ΔG和化学计量N,区分焓/熵驱动;低通量且受聚集干扰。5.3 MST热泳动,荧光标记或内源Trp/Tyr,适合验证结合和区分SC/HC但不适合分离鉴定;SpS双波长发射位移,信噪比好、抗聚集,用于交叉验证。5.4 SPR基于金膜折射率实时测动力学,适合弱瞬态吸附和高通量多重比较。5.5 BLI固定LNP分析血浆PC组成、吸附动力学和受体识别,实时区分SC/HC。六种平台互补。
5.1. Quartz Crystal Microbalance with Dissipation (QCM-D)
QCM-D基于声学传感同时测量质量吸附与耗散变化,可区分刚性HC与高耗散SC,并实时追踪PC交换和结构硬化,适合比较不同LNP配方的结合行为;但样品体积大、制备复杂且通量较低。
5.2. Isothermal Titration Calorimetry (ITC)
ITC以热信号无标记监测蛋白与LNP结合,给出K
D、ΔH、ΔS、ΔG和化学计量N,可区分静电/氢键驱动的焓驱动吸附与疏水效应/水释放驱动的熵驱动吸附;但样品需求较高、通量低,且受LNP聚集和复杂平衡干扰。
5.3. Microscale Thermophoresis (MST) and Spectral Shift (SpS)
MST监测荧光分子沿温度梯度的热泳迁移,可用标记LNP/蛋白或内源Trp/Tyr荧光验证结合强度并区分SC/HC,但不适合分离或鉴定PC。SpS监测双波长发射比值的微小位移,信噪比和抗聚集能力较好,适合与MST交叉验证结合参数,但同样依赖荧光标记且不能用于PC制备性分离。
5.4. Surface Plasmon Resonance (SPR)
SPR基于金属膜附近折射率变化实时监测结合与解离,灵敏度高,适合弱、瞬态蛋白吸附及SC/HC动态组装分析;可固定纳米颗粒并进行高通量多重比较,但需控制固定方式和表面效应。
5.5. Biolayer Interferometry (BLI)
BLI可将LNPs固定于生物传感器,分析人血浆PC组成、吸附动力学及PC组分与细胞受体的结合,实时区分SC与HC,并可用于预测PC介导的LNP行为;其适用样品范围较广,但依赖传感器固定策略。
6. Lipid Nanoparticles High-Throughput Screening Methods
DNA条形码将独特寡核苷酸掺入LNP库,混合体内给药后测序定量器官分布,可发现ApoE非依赖趋向;但共包封可能改变结构,利用3′ UTR条形码可保持单一核酸种类。肽条形码编码于mRNA C端,LC-MS定量,直接反映胞质递送和翻译功能。机器学习(ML)学习LNP性质到PC组成的高维映射,预测关键蛋白吸附并整合多组学,但依赖标准化大数据。
7. Conclusions
工具链覆盖分离、表征、动力学和高通量筛选,但SC捕获、体外到体内转化、计算与实验整合仍存挑战;多技术整合可将PC从障碍转化为功能优势,支持下一代LNPs的理性设计。