《Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects》:Menaquinones in bacteria – occurrence, function and biosynthesis
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甲基萘醌类(Menaquinones,MKs),通常被称为细菌中的呼吸醌,存在于大多数细菌物种中,并在结构上表现出极大的多样性,包括侧链长度、饱和度、环甲基化及其他修饰。MKs在细菌中的功能主要归因于其在厌氧呼吸中的作用,但其潜在的电子供体和受体种类非常丰富。
甲基萘醌类(Menaquinones,MKs),通常被称为细菌中的呼吸醌,存在于大多数细菌物种中,并在结构上表现出极大的多样性,包括侧链长度、饱和度、环甲基化及其他修饰。MKs在细菌中的功能主要归因于其在厌氧呼吸中的作用,但其潜在的电子供体和受体种类非常丰富。然而,它们的功能远不止参与呼吸作用。例如,它们还参与细菌光合作用、介导胞外电子传递或参与细胞信号传导。此外,细菌的呼吸性MK库还是DsbA-DsbB双组分系统的电子受体,该系统参与多种目标蛋白质中二硫键的形成。经典的以及一种新的细菌MK生物合成途径——即所谓的叶绿醌酮途径(futalosine pathway),最近已被全面阐明,几乎所有酶促步骤均已被识别,其中一些步骤展现出独特的催化机制。最后,本文还介绍了MK测定的分析方法实例,包括实用提示。
细菌中甲基萘醌类的分布、功能与生物合成研究进展
一、研究背景与研究目的
维生素K(Vitamin K,VK)化合物是一类以2-甲基-1,4-萘醌核为共同结构特征的脂溶性分子,广泛存在于从细菌到哺乳动物及高等植物的几乎所有生物体中。在人类中,VK主要参与凝血和骨代谢,同时也影响能量代谢、大脑发育,并具有抗癌等多种积极作用。细菌中的甲基萘醌类(Menaquinones,MKs,又称VK2)是主要的呼吸醌,其侧链由不同数量的异戊二烯单元组成,通常不饱和,但也存在部分甚至完全饱和的侧链。相比之下,叶绿醌(Phylloquinone,PhQ,VK1)则含有一个单不饱和的植基侧链。
尽管对MKs的研究已有多年历史,但仍存在若干亟待解决的科学问题。首先,MKs在细菌中的功能远不止传统的厌氧呼吸作用,其在光合作用、胞外电子传递及细胞信号传导中的具体角色尚需进一步阐明。其次,MKs的生物合成途径除了经典途径外,近年来发现了一条全新的叶绿醌酮途径(futalosine pathway),但其后期反应步骤仍未完全解析。此外,某些蓝细菌中缺乏已知MK生物合成途径的基因组证据,却仍能合成MK-4,暗示可能存在第三条尚未被发现的合成路径。同时,稀有MKs如氯菌醌(Chlorobiumquinone,ChQ)、甲硫醌(Methionaquinone,MTQ)及氢化MKs的生物合成机制也尚待探索。由于许多致病细菌仅依赖MKs作为呼吸醌,因此MK生物合成途径成为开发新型抗生素的重要潜在靶点。
基于上述背景,本综述旨在系统总结细菌中MKs的分布、功能及生物合成的最新研究进展,重点涵盖经典途径与叶绿醌酮途径的酶学特征、MKs在呼吸与光合电子传递链中的作用、DsbA-DsbB双组分系统与MK库的偶联关系,以及VK的分析检测方法,从而为该领域的未来研究方向提供参考。
二、关键技术方法
研究人员在综述中汇总了多项关键技术方法用于MKs的研究与测定。在MKs的分离与定量方面,最常用的方法是高效液相色谱法(High-Performance Liquid Chromatography,HPLC),采用反相色谱柱进行分离。为提高检测的选择性和灵敏度,研究人员采用了柱后还原荧光检测法:在分析柱后安装填充锌粉的柱后还原柱,将氧化态的VK在线还原为其强荧光的还原形式,激发波长为238-248 nm,发射波长为418-430 nm。流动相中添加乙酸钠、乙酸和氯化锌以保证还原效率。此外,电化学检测法和质谱法(Mass Spectrometry,MS)也被应用于VK的定性与定量分析,其中液相色谱-质谱联用法(LC-MS/MS)可用于分子量确认。在MK生物合成研究中,研究人员综合运用了生物信息学分析、诱变技术、放射性同位素标记及基因工程等手段,特别是对叶绿醌酮途径中多个酶进行了克隆、体外活性验证及晶体结构解析。
三、研究结果
1. 分布与功能
Collins和Jones对近700种细菌菌株的调查显示,MK-7和MK-8最为常见,但含有1至14个异戊二烯单元的MKs均有发现。古细菌富含具有完全饱和侧链的MKs,而部分革兰氏阳性菌中常出现部分饱和的氢化MKs。脱甲基甲基萘醌类(Demethylmenaquinones,DMKs)存在于兼性厌氧的革兰氏阴性杆菌中,在某些物种中甚至是唯一的呼吸性异戊二烯醌。近期还在古细菌中鉴定出了含额外甲基化的甲基MKs(Methyl-MKs,MMKs)和二甲基MKs(Dimethyl-MKs,DMMKs)。甲硫醌存在于Aquifex-Hydrogenobacter分支及嗜酸热原体(Thermoplasma acidophilum)中。氯菌醌是绿色硫细菌中特有的MK衍生物,主要存在于绿体中。人类粪便中也检测到了丰富的MK同系物(MK-4至MK-15),来源于肠道细菌。值得注意的是,部分专性发酵细菌(如多数乳酸杆菌属和链球菌属)已丧失合成MK的能力。
MKs在细菌呼吸电子传递链中扮演核心角色,充当多种呼吸蛋白复合物之间的电子载体。以大肠杆菌(Escherichia coli)和希瓦氏菌(Shewanella oneidensis)为例,其异戊二烯醌库可包含MKs、DMKs和泛醌(Ubiquinones,UQ),展现出高度灵活性。嗜酸热原体在厌氧条件下,其总醌库中97%为TPQ-7(即MMK-7),而在有氧条件下三种醌含量相近。乳酸乳球菌(Lactococcus cremoris)主要产生长链MKs(MK-8和MK-9)用于呼吸,同时也合成少量MK-3,后者优先介导胞外电子转移。
MKs还参与细菌光合作用,存在于紫色细菌和绿色丝状细菌的光系统II型反应中心,以及绿色硫细菌和太阳杆菌的光系统I型反应中心。在绿硫细菌Chlorobium tepidum中,MK-7主要作为细胞质膜光系统I型反应中心的电子载体,而氯菌醌则作为绿体天线中氧化还原敏感的能量淬灭剂。
此外,肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumoniae)中MK参与了固氮作用的氧感应调控。在大肠杆菌中,厌氧条件下MK分子作为DsbA-DsbB双组分系统的电子受体,该系统负责周质空间中目标蛋白质的二硫键形成,电子从底物蛋白的半胱氨酸经DsbA和DsbB传递至MK,随后进入呼吸链。
2. 生物合成
大肠杆菌中MK-8的经典生物合成途径已被充分阐明。莽草酸途径产生的分支酸(chorismate)是早期中间体,大部分酶位于细胞质中。最新鉴定的酶是DHNA-CoA硫酯酶(MenI)。侧链长度由多异戊二烯焦磷酸合酶决定,该类酶的FARM基序及其邻近区域的氨基酸残基对产物链长起关键作用。
第二条途径即叶绿醌酮途径存在于约13%-16%的细菌物种中,包括天蓝色链霉菌(Streptomyces coelicolor)、幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)、空肠弯曲菌(Campylobacter jejuni)和嗜热栖热菌(Thermus thermophilus)。该途径的关键中间体氨基叶绿醌酮和叶绿醌酮的核苷部分来源于S-腺苷甲硫氨酸。其中MqnE是一种独特的自由基SAM酶,催化氨基叶绿醌酮的形成;MqnC是依赖[4Fe-4S]簇的自由基SAM环化酶,催化形成螺环化合物DHFL。对超过26,000个细菌基因组的分析表明,叶绿醌酮途径分布于更广泛的细菌目(293个目),而经典途径分布在208个目中,两种途径基本互斥,仅有20个基因组同时含有两种途径的证据。
关于稀有MKs的生物合成,MenJ已被证实可催化结核分枝杆菌(Mycobacterium tuberculosis)中MK-9第二个异戊二烯单元的加氢饱和。某些蓝细菌如Gloeobacter violaceus和Anthocerotibacter panamensis合成MK-4而非PhQ,但缺乏已知MK生物合成途径的基因组证据,提示可能存在另一条替代途径。
四、讨论与结论
尽管多年来已知VK在脊椎动物、细菌和光合生物中分别发挥凝血辅因子、呼吸醌和光合电子传递链组件的功能,但近期才在这些领域取得进一步突破。在细菌中已鉴定出大量结构多样的MK衍生物,参与各种厌氧呼吸链。新发现的叶绿醌酮途径已被详细描述,成为新型抗生素的潜在靶点。细菌中与呼吸性MK库偶联的DsbA-DsbB双组分系统已被详细表征,该系统在所有生命谱系中均存在功能同源物。
未来的研究方向包括:为何只有哺乳动物的DsbA-DsbB同源物(VKOR)能够还原VK环氧化物,而细菌和光合生物的酶则不能;叶绿醌酮途径后期的MK生物合成步骤有待阐明;可能存在于某些蓝细菌中的新MK生物合成途径有待发现;以及稀有MKs包括侧链饱和同系物的生物合成机制有待探索。