破坏主要的GTP水解机制会导致HAS-GTP酶(Era和FeoB)中出现替代催化机制

《Biochemical and Biophysical Research Communications》:Disrupting primary GTP hydrolysis mechanisms leads to the emergence of alternative catalytic mechanisms in HAS-GTPases, Era and FeoB.

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年10月25日 来源:Biochemical and Biophysical Research Communications 2.5

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   •FeoB和Era催化突变体的晶体结构揭示了持续GTP水解的结构基础。•活性位点水分子经历了广泛的重新排列,以建立替代的水链介导催化通路。•结构可塑性使得当主要水解机制被破坏时能够实现催化的重新布线。•这些发现建立了HAS-GTPases替代催化的机制框架,并提示长水链介导的

  
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    FeoB和Era催化突变体的晶体结构揭示了持续GTP水解的结构基础。
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    活性位点水分子经历了广泛的重新排列,以建立替代的水链介导催化通路。
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    结构可塑性使得当主要水解机制被破坏时能够实现催化的重新布线。
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    这些发现建立了HAS-GTPases替代催化的机制框架,并提示长水链介导的水解可能是慢GTPases的一个普遍特征。

引言

G蛋白或GTP酶是GTP水解酶,构成了一类重要的调控蛋白,调节细胞生长、信号传导、蛋白质合成和分子运输等关键细胞过程1, 2, 3。GTP向GDP和无机磷酸的酶促水解通常与"开关"区域(开关I和开关II)发生显著的结构重排相偶联,这些区域与下游效应分子形成界面3, 4。GTP酶在GTP存在时达到活性"ON"状态,并与其它效应结构域/蛋白质相互作用。GTP水解将其切换为GDP结合的"OFF"状态,从而消除上述相互作用。由于它们有效地将核苷酸状态的变化传达给激活/失活的生化途径,GTP酶被称为"生物开关"2, 5。
GTP水解对于生物开关的及时失活至关重要,并由GTPase Activating Proteins(GAP,GTP酶激活蛋白)严格调控。GAPs增强本征缓慢的水解速率以控制活性状态的持续时间。因此,消除GTP水解的突变使下游信号传导处于永久"ON"状态6, 7。GTP水解反应涉及活化的水分子对γ-磷酸的亲核攻击,导致连接GTP的β和γ磷酸之间的磷酸酐键断裂2, 4。Ras-RasGAP复合物的过渡态结构(结合过渡态类似物GDP.AlF3)揭示,来自开关II区域的催化谷氨酰胺Gln61(称为Glncat)将攻击水分子定位到更靠近GTP的γ-磷酸处以完成水解8。计算和实验研究进一步确立Ras利用"Substrate Assisted Catalytic(SAC,底物辅助催化)机制"进行GTP水解,其中GTP的末端磷酸作为通用碱来活化亲核水分子9, 10, 11, 12, 13, 14, 15。Glncat促进亲核水的活化,但其本身不足以启动水解。它由RasGAP外部提供的精氨酸残基(ArgGAP)定向为催化活性构象8, 16。ArgGAP还中和带负电的过渡态并加速GTP水解。值得注意的是,据报道这种催化排列有许多变体,包括阳离子(Na+或K+)承担ArgGAP的角色17, 18, 19,以及组氨酸(His)取代Glncat,如翻译GTP酶EF-Tu20, 21, 22所示。我们后来提供了一个统一多种GTP水解机制的结构基础23。尽管存在这些变异,经典GTP酶仍使用SAC机制进行GTP水解。Glncat(或相应的催化残基)始终从开关II区域保守的DxxG基序相邻的独特位置提供。
有趣的是,存在一类功能GTP酶,它们在Glncat位置以疏水取代。这些Hydrophobic Amino-acid Substituted(HAS,疏水氨基酸取代)GTP酶尽管缺乏Glncat,仍能有效催化GTP水解24。被取代的疏水氨基酸远离活性位点的带电环境,从而提供了从不同方向供应催化残基的可能性。少数HAS-GTPases(atlastin、MnmE和dynamin)的可用过渡态结构说明了催化残基的不同空间起源19, 25, 26。与Ras的Glncat直接活化攻击水分子不同,HAS-GTPases利用桥接水介导的相互作用来活化类似水分子(图S1)。深入调查仍在揭示HAS-GTPases所采用的多种催化机制。
FeoB是一种独特的多结构域HAS-GTP酶,促进Fe2+跨越细菌内膜的运输27, 28。存在于N端胞质部分(NFeoB)的G结构域通过C端跨膜结构域调节Fe2+运输29, 30。对胞质结构域功能机制基础的深入了解来自于对Streptococcus thermophilus NFeoB(StNFeoB)的详细结构研究31, 32, 33, 34。然而,由于无法推断催化残基,这些研究无法阐明水解机制。一个谷氨酸对——Glu66和Glu67——高度保守,并且被发现参与γ磷酸周围一套复杂的水介导相互作用。在E. coli FeoB中与Glu66等价的残基突变破坏了铁的运输——即FeoB的生理功能29。综合起来,这些观察加强了这对谷氨酸具有催化作用的可能性。然而,单个谷氨酸突变体的生化研究揭示了一个令人惊讶的不同发现。这些突变体并未完全消除GTP水解,而是仅降低了水解速率(约60%)32, 35。由于这与催化残基突变体的预期不符,对其研究使我们发现FeoB在缺乏这些谷氨酸时可能采用其他有趣的催化替代方案。在本研究中,我们试图明确理解谷氨酸对在GTP水解中的作用,并探索其缺失时的催化替代方案。为此,我们确定了StNFeoB突变体的过渡态结构,这些结构得到了我们先前报道的量子力学/分子力学(QM/MM)混合模拟的支持35。这使得我们能够阐明每个谷氨酸在GTP水解中的作用。这些研究共同说明了这对谷氨酸的催化重要性,并突出了StNFeoB突变体所表现出的可塑性。
我们还研究了另一种HAS-GTP酶Era,它在30S亚基组装中发挥作用36, 37, 38。迄今为止,Era所采用的GTP水解机制仍不为人知。在此,我们也呈现了Aquifex aeolicus Era(AaEra)的结构和生化研究,并提出了一种可能的水解机制:对StNFeoB和AaEra催化机制的比较使我们能够推断HAS-GTPases中GTP水解的一般原则。与StNFeoB类似,在AaEra中,我们也观察到活性位点残基的突变并不消除GTP酶活性,这表明存在GTP水解的替代机制。这些尝试揭示了HAS-GTPases催化机制的迷人方面,并提出了由结构可塑性驱动的新的替代方案,表明这些系统具有内在的稳健性。

章节摘要

Glu66和Glu67在FeoB中发挥GTP水解的催化作用

对StNFeoB的QM/MM模拟确定了E66和E67作为质子受体来活化亲核试剂35。有趣的是,突变其中任何一个仅降低GTP水解约60%,但并未完全消除它。我们试图通过在过渡态中确定它们的结构来理解这一迷人现象。StNFeoB E67A在过渡态模拟物GDP.AlF4-存在下结晶,以PEG 6000作为沉淀剂。晶体衍射分辨率

总结与展望

HAS-GTPases在对应于Ras的催化Gln(Glncat)位置含有一个疏水残基,即紧跟在开关II保守基序DxxG之后,在Ras和Ras样GTP酶中该残基直接活化攻击水分子。催化Gln/His被无法活化水分子的疏水残基取代这一事实,需要引入替代机制来进行催化。在HAS-GTPases中,被取代的疏水残基采用

StNFeoB表达质粒

编码NFeoB结构域(StNFeoB)的DNA(对应残基1-270)以Streptococcus thermophilus(ATCC)的基因组DNA为模板进行扩增,并克隆到经修饰的pGEX表达载体中,该载体携带TEV蛋白酶切割位点,用于从融合蛋白中去除N端GST标签。所有StNFeoB突变体均通过重叠PCR方法构建,以pGEX-StNFeoB WT载体为模板。引物(表S3)用于特定

CRediT作者贡献声明

Ashok Kumar:资源。Balaji Prakash:撰写——审阅与编辑,监督,资源,资金获取,概念构思。Sahil Batra:撰写——审阅与编辑,撰写——原稿,调查,概念构思

利益冲突声明

作者声明不存在利益冲突。

致谢

我们感谢印度理工学院坎普尔分校(IIT Kanpur)的Neha Vithani博士和Nisanth Nair教授提供的科学建议以及分享模拟快照以准备插图。我们感谢美国国立癌症研究所(National Cancer Institute)NIH的David Waugh教授慷慨馈赠Aquifex Era表达构建体。我们感谢新德里国家免疫学研究所和班加罗尔国家生物科学中心的X射线晶体学设施进行数据收集。我们感谢
Sahil Batra | Ashok Kumar | Balaji Prakash
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