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生物分子相互作用的动态过程构成生命活动的核心机制，然而对其直接观测长期面临挑战。研究人员提出连续质量光度法（continuous mass photometry，cMP），可在小时时间尺度上对锚定在支撑脂质双分子层（supported lipid bilaye
生物分子相互作用的动态过程构成生命活动的核心机制，然而对其直接观测长期面临挑战。研究人员提出连续质量光度法（continuous mass photometry，cMP），可在小时时间尺度上对锚定在支撑脂质双分子层（supported lipid bilayer，SLB）上的单个生物分子及其复合物进行质量分辨观测，质量精度达亚千道尔顿（sub-kilodalton）级别，时间分辨率达毫秒级。该方法利用折射率对比散射读取分子质量，结合图案化SLB与单分子限域策略，使目标分子持续停留在视场内并与溶液中配体发生相互作用；通过连续背景扣除与质量-时间轨迹分析，可定量解析结合/解离事件、驻留时间分布与状态跃迁。cMP提供了一种定量、时间分辨的单分子测量模态，能够在天然、无标记条件下揭示多步生物分子机制的真实动态序列。
研究背景与立项逻辑：单分子生物物理学的核心目标之一，是对生物分子复合物的组成、结合顺序、驻留时间与状态跃迁进行连续、定量、时间分辨的观测。传统系综测量会掩盖稀有中间体与异质性；既有单分子质量测量技术——包括腔增强散射、纳米流控散射显微、标准质量光度法（mass photometry，MP）——虽能无标记读取单分子质量，但分别受限于自由溶液中短暂停留时间、复杂样本通量不足，以及表面“着陆”实验只能拍快照、难以追踪同一分子后续相互作用。基于支撑脂质双分子层（supported lipid bilayer，SLB，即在固体基底上构建的磷脂二维膜模型）的横向扩散质量追踪可延长观测数秒，但分子很快漂出视场，无法支撑多步过程与高精度平均。
为此，研究人员在《Nature Methods》报道连续质量光度法（continuous mass photometry，cMP）：将图案化SLB微陷阱与单分子质量光度结合，用Ni-NTA脂质锚定His标签靶标，借助PEG刷背景钝化，在638 nm弱损伤照明下将单个分子限域数分钟至小时，实现“同一分子连续称重”。
主要关键技术方法：构建光刻图案化SLB陷阱与PLL-PEG钝化界面；以6×His标签SARS-CoV-2 spike三聚体（536±5 kDa）为捕获对象；自建638 nm质量光度光学系统，以约497 Hz帧率、1.7 ms曝光连续扫描约6×6 μm视场；用Laplacian-of-Gaussian检测、点扩散函数拟合与质量定标提取单分子位置与对比度质量；以步进检测算法与两态隐马尔可夫模型（hidden Markov model，HMM）解析质量跃迁与瞬态结合。样本为体外重组spike与抗体/Fragment antigen-binding（Fab）/纳米抗体/单体ACE2（mACE2）配体体系。
研究结果：
小时级单分子质量监测：在图案化陷阱中连续追踪单个spike蛋白，获小时级质量-位置轨迹；随平均时间延长，536 kDa蛋白质量精度通过信号平均逼近约1 kDa（100 s平均），验证1/√N噪声收敛。
单分子相互作用的步进质量解析：spike依次结合IgG（150±1 kDa）、Fab（49±1 kDa）、纳米抗体（16,480±1 Da）时，质量轨迹出现离散台阶而非静态混合峰；每个spike最多记录三个结合位点的分步占据，质量增量与配体预期质量相符（受受体结合域距SLB距离导致的干涉对比度衰减约15%偏移）。
瞬态结合动力学：以低质量、快解离的mACE2（85±1 kDa）为配体，观察到结合-解离随机跳变；平均结合寿命约64 s，与已有生物层干涉与磁镊数据一致，证明cMP可量化秒至数十分钟尺度动力学。
讨论与结论翻译浓缩：研究人员指出，cMP当前适用起始质量>200 kDa、可辨质量变化>20 kDa、寿命秒级以上的体系；其意义在于把“质量”作为普适、特异、无标记的观察量，将单分子质量光度从快照式组成分析推进到机制级时间分辨动力学。未来通过扩大视场、优化陷阱几何、脉冲照明、SLB化学改进及引入约200 kDa桥联捕获复合物，可进一步降低背景、缩短平均时间、延长观测并拓展至更小质量变化，为蛋白质机器、免疫识别与药物结合动力学提供定量单分子范式。
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