AbOptimizer:基于抗体大语言模型与强化学习的并行多位点序列编辑实现治疗性抗体多属性优化

《Nature Communications》:Multiproperty optimization of therapeutic antibodies through sequence editing via large language model and reinforcement learning

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年10月27日 来源:Nature Communications 18.1

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  发现具有多种有益特性的抗体对治疗药物开发至关重要,但实验鉴定的抗体仍需进一步优化。联合优化仍具挑战,因为序列空间巨大、注释稀疏且属性权衡常见。在此,研究人员提出AbOptimizer,一种通过并行多位点序列编辑(parallel multisite seque

发现具有多种有益特性的抗体对治疗药物开发至关重要,但实验鉴定的抗体仍需进一步优化。联合优化仍具挑战,因为序列空间巨大、注释稀疏且属性权衡常见。在此,研究人员提出AbOptimizer,一种通过并行多位点序列编辑(parallel multisite sequence editing)进行多属性(multiproperty)抗体优化的强化学习(RL)框架。AbOptimizer在从蛋白质语言模型(protein language models)推荐突变之前,识别有前景的编辑位点(editing sites)和编辑动作(edit actions),包括“保留(reservation)”“替换(substitution)”以及可选的“插入(insertion)”或“缺失(deletion)”,同时代理评估(surrogate evaluation)和Pareto奖励(Pareto rewards)塑造策略训练(policy training)。研究人员在三种治疗性抗体(therapeutic antibodies)上评估AbOptimizer,涵盖多属性、数据有限和包含插入缺失(indel-inclusive)的优化。在计算机模拟(in silico)中,AbOptimizer改善了优化属性并优于基线方法。在体外(in vitro)中,所选变体显示emibetuzumab的亲和力-特异性共优化(affinity-specificity co-optimization)、siltuximab的亲和力和特异性改善且热稳定性基本保持,以及trastuzumab的包含插入缺失的亲和力优化。这些结果验证AbOptimizer是治疗性抗体优化的实用框架。
治疗性抗体发现是先导药物开发的重要起点,但体内免疫或体外展示筛选获得的先导抗体常存在结合亲和力不足、特异性低、免疫原性高及可开发性不佳等问题。先导发现后通常仍需抗体优化;然而抗体序列空间巨大,依赖迭代设计-构建-测试的实验优化昂贵且缓慢。现有机器学习(ML)引导的定向进化(MLDE)及梯度上升(GAsc)、遗传算法(GA)、贝叶斯优化(BO)和抗体大语言模型(LLM)等方法,多集中于单个属性、单位点突变或独立有利突变组合,较难捕获多位点高阶依赖,且多属性联合优化仍不足。多属性治疗性抗体常面临属性间权衡,改善一个属性可能损害其他属性;同时既有方法多忽略插入缺失(indel)并较少采用并行一步多位点编辑。基于此,研究人员提出AbOptimizer,将治疗性抗体多属性优化表述为抗体LLM与强化学习(RL)引导的序列编辑过程,并在三种治疗性抗体中开展计算机模拟与体外验证。该论文发表在《Nature Communications》。研究结果表明AbOptimizer可改善优化属性并优于基线方法,并在体外获得亲和力-特异性协同改善、热稳定性基本保持及indel-inclusive亲和力优化等结果,为治疗性抗体优化提供了实用框架。

关键技术方法概述:研究人员将抗体优化建模为RL序列编辑:Transformer策略网络(editor)并行输出各位点动作(保留/替换,可选插入/缺失);AbLang作为抗体语言模型解释器对掩码位点采样突变;Pareto非支配排序与代理模型评分构成奖励,采用近端策略优化(PPO)训练。Emibetuzumab与trastuzumab使用现有湿实验突变文库训练CNN亲和力/特异性代理;siltuximab不训练抗体特异预测器,采用通用fitness预测器(ESM-IF1 GVP-Transformer)作为代理;原创性参考OAS和UniRef90。实验验证用HEK293表达IgG。

Pipeline of AbOptimizer(AbOptimizer流程):研究人员构建策略梯度RL框架,含agent、state、action、environment和reward;editor基于Transformer并行标记各位点编辑动作,interpreter用抗体预训练LLM预测替换/插入位点突变,evaluator以代理预测和Pareto奖励评分,经PPO训练获得优化变体。

Computational evaluation of AbOptimizer across antibody-optimization scenarios(跨抗体优化场景的计算评估):在emibetuzumab、trastuzumab和siltuximab上与虚拟筛选(VS)、BO、GAsc、GA、蛋白质LLM(ProtLLM)及ProtLLM*比较,突变限制于选定位置,代理评分作为优化评分器,并以不同随机种子重复。结论为AbOptimizer在多种场景中优于基线。

Affinity maturation of emibetuzumab(emibetuzumab亲和力成熟):用湿实验亲和力数据训练代理(r=0.87,P=1.15×10?37),选90条起始序列分高、中、低亲和力组,每组30条,每序列生成128个变体取最优。AbOptimizer在各组达最高约0.99,相对改善(RI)与ProtLLM*相当且显著优于其余方法;人源性(humanness)仅次于LLM方法;Levenshtein距离(LD)累计最低(8.4±2.8),中、高亲和力组最低;序列标识显示其识别Y33、R50、G56等高亲和力相关保守残基。

Co-optimization of affinity and specificity of emibetuzumab(emibetuzumab亲和力与特异性共优化):针对emibetuzumab固有特异性差及亲和力-特异性权衡,选120条起始序列分四组,每序列生成128个变体。AbOptimizer使变体向高亲和力/高特异性右上象限聚集,RI为0.29±0.01,高于ProtLLM*的0.27±0.01及其余基线;Borda计数前5中19/20由AbOptimizer优化。Pareto奖励优于加权和与动态加权和,沿Pareto前沿逐步平衡属性;约20%变体含至少一个OAS V/J匹配子集中频率>5%的野生型残基被<5%稀有残基替换,UniRef90中为31%,不严格偏向胚系(germline)残基。

Multi-property optimization of emibetuzumab(emibetuzumab多属性优化):优化亲和力、特异性、免疫原性、黏度(viscosity)和清除率(clearance);免疫原性用NetMHCIIpan评估,黏度与清除率用FvNetCharge、FvCSP和HISum评估。随机选30条起始序列。AbOptimizer与ProtLLM*对6个属性呈平衡改善,AbOptimizer总体RI最高,前5个优化变体均由AbOptimizer产生,显示多属性优化稳健性。

Optimization of siltuximab without antibody-specific mutant data(无抗体特异突变数据的siltuximab优化):在无抗体特异突变数据时,用结构信息语言模型fitness分数作为奖励;其与结构预测代理ipTM趋势相似(P=0.67)但更高效。从野生型生成128个变体取最优。单属性fitness优化和多属性(fitness、免疫原性、黏度、清除率)优化中AbOptimizer均优于基线;ProtLLM与ProtLLM*因野生型siltuximab部分属性已较优而出现负RI。结论为通用fitness可支持数据有限条件优化。

Optimization of trastuzumab through flexible sequence editing beyond substitution(超越替换的trastuzumab灵活序列编辑):用等长与变长HER2亲和力数据训练代理,比较两动作(保留/替换)与四动作(增加插入/缺失)。平均亲和力由0.58升至0.85(两动作)和0.95(四动作),四动作显著更优(P<0.0001),RI更高。位置分布显示多数位点倾向保守,替换富集于101–103,缺失富集于108,插入仅少数位点;前20变体多序列比对显示W99、G100、G101、G103、F104、Y105、M107高度保守。结论为indel扩展序列长度空间并发现更高亲和力变体,同时保留关键保守残基。

Sequence editing reveals interpretable mutation-site selection and epistatic patterns(序列编辑揭示可解释突变位点选择与上位效应模式):以emibetuzumab分析位点富集,Y33、R50、R55在高亲和力及高非特异变体中富集提示权衡;W97、Y102未富集提示可优化。AbOptimizer富集S97、A102,与低非特异变体一致,33/50/55/56倾向保留野生型与高亲和力一致,G102、V95等新突变常见。双位点分析显示位点97与多数位点共突变增强亲和力,AbOptimizer捕获该上位效应(epistasis);约束突变位点数显示随允许突变增加保留关键位点,亲和力先升后平台,倾向组合有益单点突变,多突变中可出现情境依赖缓冲。结论为“identify-before-mutating”策略提供可解释、可控优化。

Wet-laboratory validation demonstrates successful optimization of candidate antibodies(湿实验验证候选抗体成功优化):选emibetuzumab、siltuximab和trastuzumab候选变体,分别对应多属性、数据有限和indel-inclusive优化任务,进行体外验证。

In vitro validation of emibetuzumab variants from affinity-specificity co-optimization(emibetuzumab亲和力-特异性共优化变体体外验证):以野生型Ab1及高亲和力/高非特异Ab2为起点,选9个候选表达为IgG。Ab1-2、Ab1-3的HGFR ELISA EC50由1.33±0.07 nM降至0.92±0.05和0.77±0.02 nM,OVA和CHO细胞非特异结合降低;Ab2-2、Ab2-3、Ab2-4亦略改善亲和力并降低非特异结合,4个变体总体改善HGFR结合并降低非特异结合。氢键(H-bond)分析显示Ab1-2、Ab1-3各形成3个氢键,野生型Ab1为2个;氢键残基为N100、T59、G26,短亲水侧链降低构象熵罚,可能解释亲和力与特异性改善。

In vitro validation of siltuximab variants optimized without antibody-specific mutant data(无抗体特异突变数据优化的siltuximab变体体外验证):将CDR-H区全部位点作为候选,选8个变体;Ab3-1至Ab3-4同时改善IL-6结合与非特异结合。Ab3-4的EC50为0.016±0.001 nM,野生型Ab3为0.22±0.04 nM,约13.4±2.3倍改善,OVA和CHO非特异结合降低;Ab3-2 OVA非特异无显著降低但CHO非特异显著降低。热稳定性显示Ab3-3的Tm与野生型相当,Ab3-4约升高4 °C,Ab3-1和Ab3-2分别约降低2 °C和0.5 °C,均保持高热稳定性。结论为通用fitness可优化无抗体特异突变数据抗体。

In vitro validation of trastuzumab variants with substitutions and indels(含替换和indel的trastuzumab变体体外验证):以CDR-H3为可编辑区,四动作优化后选前5个变体表达;Ab4-2、Ab4-3、Ab4-4的HER2 ELISA EC50分别为1.32±0.24、1.36±0.14、0.82±0.10 nM,均低于野生型Ab4的2.61±0.28 nM;Ab4-4约3.2±0.5倍改善,Ab4-2和Ab4-3约2倍改善。结论为在变长亲和力数据支持下,AbOptimizer可探索替换、插入和缺失并有效优化抗原结合亲和力。

讨论部分总结:AbOptimizer的优势包括“identify-before-mutating”序列编辑策略缩小搜索空间并提供可解释动作空间;在变长数据可用时可选支持插入和缺失,扩展固定长度变体之外的可编辑序列空间;并行多位点突变加速优化并捕获单位点方法易遗漏的上位效应。三种互补场景的湿实验验证显示所选变体具有改善靶标结合亲和力、降低非特异结合及在适用时基本保持热稳定性等有利实验特征。局限性包括优化效果依赖稳健可靠的代理模型;多数目标抗体缺乏高质量突变数据,尤其表达、免疫原性、热稳定性、自关联、黏度和多反应性等可开发性数据仍稀缺;LLM衍生似然或fitness信号在模型学习偏好与目标功能不一致时可靠性可能下降;indel可能带来更强结构扰动和更大分布偏移,需变长突变数据支持;实验验证范围相对计算评估广度仍有限。未来系统生成高质量功能数据集、整合序列-结构-抗原背景-实验读数的多模态预测器,并在更多抗体支架、抗原类别和可开发性终点上开展更广实验验证,将增强此类框架。研究结论翻译:这些结果证明AbOptimizer能够整合不同代理设置和序列编辑策略,在多种优化场景中生成经实验验证的抗体候选,并支持其在受限湿实验预算下用于迭代design-build-test-learn流程;这些结果验证AbOptimizer是治疗性抗体优化的实用框架。

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