优化无血清、无基质诱导系统,实现人造血干细胞大规模制备功能性红细胞

《Cytotherapy》:Optimization of a serum-free and stroma-free induction system for large-scale generation of functional red blood cells from human hematopoietic stem cells

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年10月27日 来源:Cytotherapy 4.5

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   摘要输血每年挽救了无数生命,但血液库存短缺问题依然存在,且需求持续上升。因此,在临床环境中寻找红细胞(RBC)的替代来源至关重要。体外将源自人类脐带血(CB)的血造血干细胞(HSC)分化为红细胞已成为一种有前景的解决方案。本研究采用实验因子设计和最速上升法,开发了一种无血清细

  

摘要

输血每年挽救了无数生命,但血液库存短缺问题依然存在,且需求持续上升。因此,在临床环境中寻找红细胞(RBC)的替代来源至关重要。体外将源自人类脐带血(CB)的血造血干细胞(HSC)分化为红细胞已成为一种有前景的解决方案。本研究采用实验因子设计和最速上升法,开发了一种无血清细胞因子优化的红细胞诱导(SF-RBC)培养系统,用于将HSC分化为CD71+Gly-A+红细胞。同时,本研究还探讨了该系统中细胞因子与血清替代物之间的相互作用。为评估该系统的效能,对诱导红细胞的多种特征进行了分析,包括细胞增殖、形态、细胞表面标志物表达、基因表达、血红蛋白含量、去核率、变形性、氧气结合能力及血液学集落形成能力。结果表明,SF-RBC培养系统成功地在体外由HSC生成了大量红细胞,单个HSC可产生约2.1 × 104个红细胞。值得注意的是,生成的红细胞不仅表达了红细胞的关键表面抗原(CD71、Gly-A和CD36)和转录因子(GATA-1、NF-E2和KLF1),还具有与从CB中分离的新鲜红细胞相似的功能特征(如血红蛋白含量和组成、变形性及氧气结合能力)。这些发现表明,SF-RBC培养系统可作为与贫血相关的药物筛选平台,并有望成为临床输血应用中可靠的红细胞来源。

引言

红细胞(RBCs),又称erythrocytes,是最丰富的血液细胞类型,是将氧气从肺部运输到组织的主要载体[1]。由于这一基本功能,红细胞输血是各种临床状况中的常见治疗手段,包括创伤、产科出血和儿童贫血[2]。然而,这种方法受到储备库存不足和输血传播感染的潜在风险等方面的限制[3]。为应对这些挑战,必须探索能够产生红细胞的替代来源。
干细胞是原始的未分化细胞,能够进行有丝分裂并分化为各种特化细胞;它们还可通过自我更新传播更多的干细胞[[4], [5], [6], [7], [8]]。源自骨髓、外周血和脐带血(CB)的造血干细胞(HSC)具有多能性和自我更新能力。作为所有血液和免疫细胞的基本前体,HSC在造血和免疫系统中发挥着关键作用[[9], [10], [11], [12]]。它们还可分化为红细胞[[13], [14], [15]]。因此,体外大规模生产红细胞对于基础研究和临床用途具有重要意义。
红细胞的生成是HSC经历增殖和分化以产生成熟红细胞的过过程[16]。多种表面分子,包括CD34、CD36、CD71和糖蛋白A(Gly-A,又称CD235a),作为显著的标志物用于识别红细胞生成的不同阶段[17]。CD34主要表达于HSC上,并随着红细胞生成的进行而降低。此外,CD71和Gly-A在成熟红细胞上高度表达[18]。CD36是红系祖细胞的重要标志物[19,20]。此外,红细胞生成受到四个关键转录因子动态网络的严格调控:GATA-1、GATA-2、NF-E2和KLF1。GATA-2(又称NF-E1)在HSC中高表达,并随着分化的进行而降低。然而,在红系分化过程中,GATA-1、NF-E2和KLF1的表达水平显著增加[21,22]。血红蛋白是红细胞内的主要分子,是红系分化过程中的重要指标。血红蛋白能够高效结合氧分子并促进氧气向组织运输以满足代谢需求[23]。
可以通过使用不同的培养基组合血清、细胞因子和基质细胞在体外生成红细胞,以模拟体内红细胞生成的微环境[13,24]。然而,细胞因子对红细胞生成的影响是复杂的。一种细胞因子可能根据其浓度和其他细胞因子的存在而产生不同的作用。此外,血清和基质细胞存在病毒、支原体和细菌污染的风险。因此,培养系统中血清和基质细胞的存在可能在输注给患者时引发免疫反应[25,26]。为克服这一局限,开发无血清、无基质且细胞因子优化的培养基对于从HSC中大量生成红细胞至关重要。
本研究的目标是开发一种无血清红细胞诱导培养基,能够将HSC分化为大量红细胞。为此,我们利用因子设计和最速上升法确定了有效的细胞因子和血清替代物并优化了其浓度。为增加初始HSC数量,我们在之前的研究中采用了一种在无血清条件下扩增HSC的成熟技术(SF-HSC培养基)[[27], [28], [29], [30]]。在SF-HSC培养基中,不仅CD34+CD133+CD38-细胞,而且集落形成细胞和长期培养起始细胞也得到了高度扩增。重要的是,移植到严重联合免疫缺陷(SCID)小鼠体内的无血清扩增HSC(eHSCs)能够重建造血功能并保持分化为自然杀伤细胞[31]、巨核细胞[32,33]、单核细胞[34,35]和树突状细胞[36]的能力。随后,我们在本研究中开发了一个两步培养过程,包括7天的HSC扩增和21天的红系分化,以产生大量CD71+Gly-A+红细胞。我们的技术有潜力用于生成输血细胞产品及其他红细胞相关应用。

章节摘要

CB CD34+ HSC的收集与扩增

CB样本经台湾卫生福利部桃园总医院机构审查委员会批准后,获得捐赠者同意进行收集(IRB编号:TYGH106035)。CD34+HSC从CB样本中分离和扩增的方法如前所述[29,30]。简要而言,使用Ficoll-Paque密度梯度离心法(Amersham Biosciences)从CB中分离单核细胞(MNC),以去除红细胞和血小板。从CB中去除的红细胞作为红细胞对照。

含血清条件下CD71+Gly-A+红细胞诱导的细胞因子选择与浓度优化

HSC表达多种细胞因子受体,造血细胞因子之间存在众多协同或抑制相互作用。基于广泛的文献综述和我们的先前经验,我们筛选了六种细胞因子(SCF、EPO、IL-3、IGF-1、Flt-n
3L和TPO;补充表1),其中四种(SCF、EPO、Flt-3L和TPO)在含血清培养基中对红系分化具有促进作用,被选择用于在体外从eHSC诱导CD71+Gly-A+红细胞。这四种

讨论

体外生成的红细胞在临床转化中长期以来受到两大主要限制:来自动物源性血清或基质共培养带来的免疫原性或病毒污染风险,以及经验性细胞因子配方的经济和生物学变异性。在本研究中,我们通过开发SF-RBC培养系统来解决这些限制。根据文献综述,此前大多数红细胞分化培养方法依赖于饲养层[42]或血清。

结论

我们的SF-RBC培养系统建立了一个可扩展、安全且无血清的微环境,能够促进HSC分化为功能性红细胞。该平台为血液学研究(包括贫血等血液系统疾病)中的高通量筛选提供了一个有前景的工具,可为输血医学中通用、安全和可持续红细胞的发展提供参考。

CRediT作者贡献声明

Zhe-Young Lin(n38124018@gs.ncku.edu.tw):撰写 – 原始草稿、方法论、数据管理
Yun Chen(ychen@mail.femh.org.tw):方法论、数据管理
Cheng-Hao Wen(wch1@firdi.org.tw):方法论、数据管理
Chang-Hsun Tsai(duke93524@gmail.com):方法论、数据管理
Yu-Jen Chang(cyj@firdi.org.tw):方法论、数据管理
Yu-Tzu Tsao(tsaoyutzu@gmail.com):方法论、数据管理
Wei-Lun Huang(allenhuang@mail.ncku.edu.tw):方法论、数据管理
Chieh-Tsung Lo

数据和材料的可用性

数据可根据请求提供。

代码可用性

不适用。

伦理审批

不适用。

参与同意

不适用。

出版同意

不适用。
补充表1。26-1部分因子设计矩阵及HSC诱导CD71+Gly-A+细胞的细胞因子实验结果(n = 5)。
Zhe-Young Lin|Yun Chen|Cheng-Hao Wen|Chang-Hsun Tsai|Yu-Jen Chang|Yu-Tzu Tsao|Wei-Lun Huang|Chieh-Tsung Lo|Yi-Fang Tu|Po-Ming Wu|Chao-Ling Yao
国立成功大学化工系,台湾台南市70101
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