《Mitochondrial Communications》:Phosphate and induction of the mitochondrial permeability transition
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在哺乳动物线粒体中,通透性转换(permeability transition, PT)——线粒体内膜通透性增高,截断分子量约为1500 Da——需要基质Ca2+,还需要多种“诱导剂”之一,包括无机磷酸盐(inorganic phosph
在哺乳动物线粒体中,通透性转换(permeability transition, PT)——线粒体内膜通透性增高,截断分子量约为1500 Da——需要基质Ca2+,还需要多种“诱导剂”之一,包括无机磷酸盐(inorganic phosphate, Pi)。Pi通过缓冲基质[Ca2+]和pH促进大量Ca2+摄取,从而阻止Ca2+浓度梯度的形成并允许膜电位再生,而膜电位是Ca2+摄取的主要驱动力。然而,Pi对PT的作用存在一定悖论。通过形成固相Ca2+-Pi颗粒使基质[Ca2+]维持在低微摩尔范围,Pi本应抑制PT,正如在酵母和果蝇线粒体中所见。研究人员在此讨论在哺乳动物线粒体中Pi如何通过两种主要效应诱导PT。第一种是促进亲环蛋白D(cyclophilin D, CyPD)与ATP合酶OSCP亚基之间的相互作用,该作用仅发生于较高等物种;第二种是刺激氧化应激,后者可能放大反向电子转移(reverse electron transfer, RET)的诱导效应,尤其是在CyPD缺失时。
Bernardi和Carraro围绕磷酸盐与线粒体通透性转换诱导进行机制综述。线粒体通透性转换(PT;线粒体内膜通透性增高,截断约1500 Da)被认为由通透性转换孔(PTP;介导PT的通道)开放所致;短暂开放参与线粒体Ca
2+稳态,持久开放引起基质肿胀、外膜破裂并可能导致细胞死亡。PT发生需要基质Ca
2+这一许可因子,还需要包括无机磷酸盐(Pi)在内的多种诱导剂;环孢素A(CsA;CyPD抑制剂)的脱敏效应将亲环蛋白D(CyPD;肽基脯氨酰顺反异构酶)引入机制核心。当前共识认为PT由F-ATP合酶(F-ATP synthase)和腺嘌呤核苷酸转位酶(ANT)介导,并可能受CyPD与ATP合酶OSCP亚基结合促进。问题在于:Pi既能通过形成固相Ca
2+-Pi颗粒缓冲基质[Ca
2+]而本应抑制PT,又在哺乳动物线粒体中诱导PT,形成机制悖论;酵母和果蝇线粒体中Pi则表现为抑制且对CsA不敏感。作者因此整合CyPD-OSCP互作、RET/ROS、Ca-Pi颗粒储存及跨物种进化证据,提出Pi诱导哺乳动物PT的双效应工作假设,为理解缺血再灌注等病理条件下的PTP调控提供框架。
本文为机制综述,未开展原始实验。作者主要采用文献证据整合与机制推断,并引用分离线粒体PT/肿胀与Ca
2+摄取测定、条件性基因敲除(小鼠心脏磷酸盐载体PiC)、NMR溶液结构与动力学、冷冻扫描透射电子断层成像与能量色散X射线谱、RET/ROS检测及药理学干预(鱼藤酮、CsA)、跨物种序列比较等技术方法。样本来源包括小鼠心脏PiC条件性敲除、分离豚鼠心脏线粒体、酵母/果蝇/线虫/哺乳动物线粒体及细胞模型;原文未报告临床样本队列。
研究结果如下。
引言:通过梳理PT定义、Ca
2+许可因子、诱导剂/抑制剂及CsA-CyPD-F-ATP合酶/ANT证据,作者指出已知效应物可在F-ATP合酶-ANT框架内得到安置,但Pi诱导哺乳动物PT仍需机制解释。
供能线粒体中的Ca
2+与磷酸盐摄取:通过线粒体Ca
2+摄取、膜电位和磷酸盐载体(PiC)研究,作者总结Pi经PiC电中性摄取H
+和Pi,缓冲基质pH与[Ca
2+];基质游离Ca
2+在2 mM Pi时约3 μM、5 mM Pi时约1 μM。心脏PiC条件性敲除显著降低Pi摄取但保留Ca
2+摄取,并抑制PT,提示通透化与Pi升高而非Ca
2+浓度升高更相关。
基质钙与磷酸盐储存:通过冷冻扫描透射电子断层成像和能量色散X射线谱,作者总结基质Ca
2+以20–100 nm固相Ca-Pi颗粒储存,质子载体可消除该可交换池。Bazil等发现分离豚鼠心脏线粒体在Ca
2+/Pi过载时颗粒数量和尺寸增加,PT发生后减少,CsA阻止PT并允许颗粒进一步增加;颗粒由5.3 ± 2.1 nm纳米簇组成,Posner等提出无定形Ca-Pi由Ca
9(PO
4)
6小簇构成。Hunter和Haworth的“记忆效应”提示基质内形成可逆的结构化Ca-Pi储存。
磷酸盐与CyPD-ATP合酶互作:通过CyPD结合蛋白鉴定和NMR结构研究,作者总结CyPD结合ATP合酶OSCP亚基;CsA在野生型线粒体刺激ATP合酶约30%,CyPD缺失时CsA无效应且酶活性与CsA处理野生型相同。去垢剂提取后CyPD结合需至少1 mM Pi,10 mM Pi时明显增强。人全长CyPD具柔性N端,可经calpain 1切割生成ΔN-CyPD(人缺失13个、小鼠缺失10个氨基酸);Coluccino等发现KCl影响S2/gatekeeper和S1/活性位点,ΔN-CyPD对ATP合酶亲和力增加且无Pi也可结合;N端在KCl介质中抑制全长CyPD结合OSCP,除非有Pi。OSCP Lys70乙酰化促进、His112质子化抑制CyPD-OSCP互作。
反向电子转移与鱼藤酮效应:通过琥珀酸驱动RET/ROS及组织CyPD表达差异研究,作者总结鱼藤酮抑制PT的效果可变;高CyPD、CsA敏感的组织中鱼藤酮无效,低CyPD、CsA不敏感的组织中鱼藤酮最有效,二者联合可叠加抑制;CyPD基因敲除可恢复鱼藤酮抑制。OSCP Cys141是氧化应激靶点,CyPD结合保护Cys141;CyPD过表达可保护细胞免于staurosporine和tert-butyl hydroperoxide诱导的死亡。该机制与缺血再灌注、微胶质细胞神经炎症、肥胖和肝脂肪变性中辅酶Q失衡及tau蛋白抑制复合体I等相关。
磷酸盐与活性氧:通过Ca
2+加Pi后ROS和线粒体肿胀测定,作者总结Pi增加ROS生成;固定Ca
2+负荷25 nmol×mg
?1蛋白时,硫代巴比妥酸反应物(TBARS)由0.3升至0.93(1 mM Pi),2、3、4、5 mM Pi时分别升至1.91、2.24、2.48、2.67;肿胀可被EGTA+ADP逆转并被CsA阻止,但4 mM Pi时CsA不再阻止,提示脂质过氧化相关结构损伤。Pi至2 mM还可在无外加Ca
2+时增加H
2O
2产生;其机制尚未明确。
CyPD与OSCP相互作用的进化:通过跨物种序列比较及酵母、果蝇、线虫PT研究,作者总结CyPD核心结构从E. coli到哺乳动物高度保守,N端仅高等生物具有;酵母PT被Pi抑制且对CsA不敏感,果蝇Ca
2+诱导Ca
2+释放通道被Pi抑制且对CsA不敏感,即使表达人CyPD仍如此;线虫OSCP下调触发线粒体未折叠蛋白反应、PTP开放和寿命降低,CsA或沉默c-ring/外周柄亚基可正常化。作者提出CyP-OSCP界面共进化及高等生物CyPD独特N端限制PTP诱导等工作假设。
总结与结论:讨论部分将Pi的诱导效应归因于促进全长CyPD与OSCP结合,同时基质Ca
2+仍被缓冲在1–3 μM的许可范围;N端作为PTP开放的“刹车”,Pi浓度升至约1 mM以上可能通过电荷中和CyPD或OSCP而利于结合;CsA使CyPD脱离OSCP后,RET和/或基质Ca
2+-Pi产生的ROS可氧化OSCP Cys141并促进PT,鱼藤酮抑制RET时Pi因降低基质[Ca
2+]的抑制作用可能显现;持续高ROS可致不可逆膜损伤和CsA不敏感通透化。研究结论翻译:综合考虑本综述所述系列观察,可形成关于Pi对哺乳动物线粒体PT诱导效应的合理工作假设。在表达全长CyPD的线粒体中,其与OSCP的相互作用受高度可动N端调节,该N端作为PTP开放的“刹车”。当Pi浓度升高至约1 mM以上时有利于结合,其可能通过对CyPD本身或OSCP的电荷中和发挥作用,类似于后者Lys70乙酰化的PT诱导效应。因此,在全长CyPD存在时,Pi通过促进CyPD结合而表现为PT诱导剂,同时基质Ca
2+仍被缓冲在允许PT发生的区域(1–3 μM)。与CyPD基因敲除类似,CsA使CyPD从OSCP脱离,允许由RET和/或基质Ca
2+-Pi产生的ROS氧化OSCP Cys141,从而促进PT。由于鱼藤酮抑制RET,在这些条件下,Pi因降低基质[Ca
2+]而产生的抑制作用可能显现。持续高水平ROS可诱导不可逆膜损伤并引起CsA不敏感的通透化。由于CyPD表达水平在不同细胞和组织中、甚至可能在不同线粒体群体内存在差异,设计实验和解释结果时应始终考虑Pi对PT调控及其对抑制剂和实验条件敏感性的复杂性。