《Insects》:Lse-novel_mir23 Directly Targets LsPI3K21B and Contributes to Pupal–Adult Metamorphosis in the Cigarette Beetle Lasioderma serricorne
编辑推荐:
胰岛素/胰岛素样信号(insulin/insulin-like signaling, IIS)通路是昆虫生长和变态的核心,但其在储藏物昆虫中的转录后调控仍知之甚少。在此,研究人员研究了LsPI3K21B在烟草甲(Lasioderma serricorne)蛹—
胰岛素/胰岛素样信号(insulin/insulin-like signaling, IIS)通路是昆虫生长和变态的核心,但其在储藏物昆虫中的转录后调控仍知之甚少。在此,研究人员研究了LsPI3K21B在烟草甲(Lasioderma serricorne)蛹—成虫变态中的功能及其受微小RNA(microRNA, miRNA)调控的可能性。通过RNA干扰(RNA interference, RNAi)沉默LsPI3K21B导致严重发育缺陷、翅色素沉着和大小降低、几丁质和翅相关基因表达改变以及死亡率增加。预测到三种候选miRNA靶向LsPI3K21B,其中Lse-novel_mir23呈现相反表达模式,并在模拟物(mimic)或抑制剂(inhibitor)处理后显著影响LsPI3K21B转录本丰度。双荧光素酶(dual-luciferase)实验证明通过LsPI3K21B 3′非翻译区(3′-UTR)的序列依赖性抑制,RNA pull-down实验验证Lse-novel_mir23与LsPI3K21B转录本的结合。增强Lse-novel_mir23活性表型模拟(phenocopy)LsPI3K21B缺失引起的关键发育缺陷。这些发现鉴定了一个与甲虫变态相关的前所未知的miRNA-LsPI3K21B调控互作,并为在L. serricorne的基于RNA的管理策略中靶向发育调控因子提供了分子框架。
研究背景与问题:储藏物害虫烟草甲(Lasioderma serricorne)食性广,可在面粉厂、饲料厂和烟草仓库等环境持续发生,造成经济损失;化学熏蒸尤其是磷化氢仍是核心措施,但抗性上升促使寻找替代策略。RNA干扰(RNA interference, RNAi)在烟草甲中可破坏蜕皮激素生成和激素信号并导致发育停滞或生殖受损,但发育通路的转录后调控机制不清。胰岛素/胰岛素样信号(insulin/insulin-like signaling, IIS)通路保守协调昆虫生长、代谢、发育和寿命,并与其他激素通路互作;然而其在烟草甲蛹—成虫变态(pupal–adult metamorphosis)中的转录后调控,尤其miRNA-PI3K直接调控关系尚未建立。微小RNA(microRNA, miRNA)约22 nt,通过促进mRNA降解或抑制翻译进行转录后调控,可影响几丁质(chitin)代谢和20-羟基蜕皮酮(20-hydroxyecdysone, 20E)/保幼激素(juvenile hormone, JH)信号。因此,鉴定直接调控IIS组分的miRNA,对理解变态调控和开发基于RNA的防控有基础与应用意义。
研究概览与结论:研究人员检验此前未表征的Lse-novel_mir23是否调控IIS相关基因LsPI3K21B并参与蛹—成虫变态。结果表明,LsPI3K21B参与蛹—成虫发育,沉默导致严重变态缺陷;Lse-novel_mir23与LsPI3K21B呈负相关,并通过其3′非翻译区(3′ untranslated region, 3′-UTR)序列依赖性直接靶向LsPI3K21B;过表达Lse-novel_mir23可表型模拟(phenocopy)LsPI3K21B缺失的关键发育缺陷。研究鉴定了此前未表征的miRNA-LsPI3K21B调控互作,为在L. serricorne中靶向发育调控因子的RNA-based策略提供分子框架。
关键技术方法:烟草甲实验室种群建立自从贵州省贵阳市烟草储藏设施采集的成虫,于28 ± 1 °C、40%相对湿度、持续黑暗下以当归干根饲养;HEK293T细胞用于报告基因检测。以cDNA末端快速扩增(RACE)获得LsPI3K21B全长并做结构域、多重比对和最大似然系统发育分析;显微注射dsRNA进行RNAi,用实时定量PCR(qPCR)检测敲低效率及几丁质/翅相关基因;用RNA22、RNAhybrid和miRanda预测miRNA,结合mimic/inhibitor、野生型/突变型3′-UTR双荧光素酶和RNA pull-down验证直接互作;并做表型、存活、翅色素与面积图像定量及miRNA-dsRNA共注射。
研究结果:
3.1 LsPI3K21B的序列与系统发育分析:通过RACE和序列分析,LsPI3K21B开放阅读框(open reading frame, ORF)为2271 bp,编码756个氨基酸,预测分子量86.2 kDa、等电点(isoelectric point, pI)5.76;基因组区域14.93 kb,含14个外显子和13个内含子。17种代表昆虫的最大似然系统发育树分为鞘翅目和鳞翅目两大支,L. serricorne与其他鞘翅目聚支;同源蛋白均含SH2和iSH2结构域,鞘翅目同源物另有SH3、C1、SAM或RhoGAP结构域。结论:序列和结构域特征支持其分类位置及同源蛋白结构域组成差异。
3.2 RNAi功能分析:通过显微注射dsRNA和qPCR,LsPI3K21B敲低效率在1–3天为58.6%–79.7%,存活率显著降低并出现不完全蜕皮、体畸形、翅形成异常和成虫羽化失败或不完全;翅色素强度和翅面积显著降低;翅相关基因中LsEN无显著变化、LsMT上调约6.4倍、其余六个下调;几丁质代谢基因LsTRE2、LsUAP、LsCHT5上调,LsTRE1、LsCHS1、LsNAG1、LsNAG2、LsCDA1下调。结论:LsPI3K21B参与蛹—成虫发育并影响翅和几丁质相关转录程序。
3.3 靶向LsPI3K21B的miRNA预测及发育关联:通过三种算法预测和mimic/inhibitor处理,三个候选miRNA中Lse-novel_mir23与LsPI3K21B在蛹—成虫转变中呈相反表达;mimic显著降低、inhibitor显著升高LsPI3K21B转录本。结论:Lse-novel_mir23在体内负调控LsPI3K21B转录本丰度。
3.4 Lse-novel_mir23对LsPI3K21B的直接调控:通过前体结构预测、野生型/突变型3′-UTR双荧光素酶和RNA pull-down,Lse-novel_mir23前体形成单一茎环,成熟序列22 nt;野生型报告基因活性降低55.3%,突变种子位点后无显著变化;pull-down捕获LsPI3K21B约1421.7倍,非靶标LsEF1α无显著变化。结论:Lse-novel_mir23通过3′-UTR种子序列直接、特异结合LsPI3K21B转录本。
3.5 Lse-novel_mir23过表达损害蛹—成虫发育:通过mimic注射和表型/基因表达分析,过表达导致不完全蜕皮、严重翅畸形,12天死亡率89.5%(NC-mimic组约90.0%完成发育);翅色素降低、翅面积由2.7 mm
2降至1.9 mm
2,减少31.3%;翅和几丁质相关基因显著改变。结论:增强Lse-novel_mir23活性可表型模拟LsPI3K21B缺失的关键缺陷。
3.6 Lse-novel_mir23-inhibitor与dsLsPI3K21B共注射效应:通过三组共注射,dsLsPI3K21B+NC-inhibitor导致死亡增加、角质层(cuticle)色素和翅面积降低、LsPI3K21B下调约53.7倍;dsLsPI3K21B+Lse-novel_mir23-inhibitor与对照在色素、翅面积和表达上无显著差异。结论:减轻Lse-novel_mir23介导的抑制可在表型上部分抵消LsPI3K21B敲低,但原文强调该三组设计及无显著差异不能作为确定性救援或等效证据。
讨论总结:IIS保守整合营养、代谢和激素线索,I类磷酸肌醇3-激酶(phosphoinositide 3-kinase, PI3K)由p110催化亚基和p60调节/衔接亚基组成;LsPI3K21B被鉴定为IIS相关发育调控关键组分。沉默表型与几丁质和翅相关转录变化提示蛹—成虫重塑、角质层形成、色素沉着和翅形成受扰,但研究主要测转录本,不能将下游基因视为LsPI3K21B直接转录调控,需测蛋白和PI3K-Akt通路活性。Lse-novel_mir23直接靶向LsPI3K21B的证据来自表达负相关、mimic/inhibitor、野生型/突变型3′-UTR报告基因和RNA pull-down;过表达表型与敲低部分重叠,但miRNA可调控多转录本,不能将表型完全归因于LsPI3K21B。共注射为间接证据。局限包括miRNA多靶点、仅mRNA/转录后水平、几丁质和翅基因为转录响应,需全基因组靶标、蛋白和通路活性、Argonaute相关RNA免疫沉淀(Argonaute-associated RNA immunoprecipitation)等验证;应用上,LsPI3K21B是概念验证靶标,实际RNA防控需评估递送、稳定性、摄取、剂量、持久性、发育阶段敏感性和非靶标生物影响。
研究结论翻译:总体而言,本研究鉴定了一个与L. serricorne蛹—成虫变态相关的前所未知的Lse-novel_mir23-LsPI3K21B调控关系。发育表型分型结合RNAi、miRNA mimic和inhibitor处理、序列特异性双荧光素酶实验和RNA pull-down提供了互补证据,表明Lse-novel_mir23直接靶向LsPI3K21B。数据支持一个模型:miRNA介导的对IIS相关组分的转录后调控有助于协调发育重塑、角质层形成、色素沉着和翅形成。更广泛地,该研究为miRNA调控如何与储藏物甲虫中IIS相关发育过程相交提供了新见解,并突出LsPI3K21B作为基于RNA的害虫管理的有前景分子靶标。进一步的通路水平和遗传互补实验对于确定Lse-novel_mir23-LsPI3K21B模块在更广泛激素和发育网络中的精确位置和相对贡献将很重要。