宿主E3泛素连接酶Smurf1缺失通过增强细菌清除并限制炎症性组织损伤提高对沙门菌(Salmonella)感染的抵抗

《Molecular Immunology》:Disruption of host E3 ubiquitin ligase Smurf1 promotes resistance to Salmonella by enhancing bacterial clearance and limiting inflammatory tissue damage

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年10月29日 来源:Molecular Immunology 3.7

编辑推荐:

  研究显示,宿主E3泛素连接酶(E3 ubiquitin ligase)Smurf1(SMAD ubiquitin regulatory factor 1)的缺失通过增强细菌清除并限制炎症性组织损伤促进对Salmonella的抵抗。Smurf1负向调控早期MAP

  
研究显示,宿主E3泛素连接酶(E3 ubiquitin ligase)Smurf1(SMAD ubiquitin regulatory factor 1)的缺失通过增强细菌清除并限制炎症性组织损伤促进对Salmonella的抵抗。Smurf1负向调控早期MAPK(mitogen-activated protein kinase)信号,并促进巨噬细胞中Salmonella的晚期复制。Smurf1依赖的细菌复制驱动活Salmonella感染期间的晚期细胞因子分泌。Smurf1缺陷增强细菌清除并限制组织损伤。Smurf1缺失提高宿主对沙门菌病(salmonellosis)的抵抗和生存。Smurf1抑制剂A01降低小鼠细菌负荷和炎症。
泛素化(ubiquitination)是一种翻译后修饰,E3泛素连接酶(E3 ubiquitin ligase)决定底物特异性。Smurf1(SMAD ubiquitin regulatory factor 1)是一种E3泛素连接酶,参与骨形成、胚胎发育和肿瘤进展,也是固有免疫的重要调节因子,可靶向多种信号衔接蛋白促使其蛋白酶体降解,负向调节TLR(Toll样受体,Toll-like receptor)、RIG-I(视黄酸诱导基因I,retinoic acid-inducible gene I)和IFN-γ(干扰素-γ,interferon-γ)通路,并限制NF-κB和JNK-MAPK(mitogen-activated protein kinase,丝裂原活化蛋白激酶)活化。既往研究表明,Smurf1在结核分枝杆菌感染中泛素化含菌结构,促进自噬组分募集;Smurf1-/-巨噬细胞细菌复制增加,Smurf1-/-小鼠细菌负荷更高、生存降低。相反,在Betacoronavirus感染中,Smurf1负向调节细胞因子产生并减轻炎症性肝损伤。上述结果提示Smurf1在不同感染背景下作用具有情境依赖性。鼠伤寒沙门菌(S. Typhimurium)是革兰阴性胞内病原体,可激活TLR信号和炎症小体等固有免疫通路;这些反应对控制细菌复制至关重要,但过度炎症可导致免疫病理和组织损伤,因此宿主需精确平衡抗菌防御与炎症控制。尽管Smurf1参与多种免疫调节过程,其在宿主抗S. Typhimurium防御中的作用尚不清楚。基于此,研究人员利用体外和体内模型研究Smurf1对S. Typhimurium感染固有免疫应答的影响,发现Smurf1负向调控早期MAPK信号,却通过促进胞内细菌复制和加剧全身炎症促进S. Typhimurium感染;Smurf1缺失或药理抑制可增强细菌清除并减轻组织损伤,Smurf1-/-小鼠生存率显著提高。该研究将Smurf1鉴定为沙门菌病中的宿主易感因子,并提示其作为情境依赖性固有免疫调节因子和潜在治疗靶点的重要意义。

研究人员开展研究用到的主要关键技术方法如下:采用C57BL/6野生型与Smurf1-/-小鼠(均为C57BL/6遗传背景)及其股骨、胫骨来源的骨髓来源巨噬细胞(BMDMs,bone marrow-derived macrophages);以S. Typhimurium(ATCC 14028)进行体外和体内感染。体外结合菌落形成单位(CFU,colony-forming unit)计数、Western blot、逆转录定量PCR(RT-qPCR,reverse transcription quantitative PCR)、酶联免疫吸附测定(ELISA,enzyme-linked immunosorbent assay)、Griess反应、MTT及细胞因子检测;体内经腹腔或灌胃感染,检测肝脾细菌负荷、细胞珠阵列(CBA,cytometric bead array)、苏木精-伊红(H&E,hematoxylin and eosin)组织病理评分、髓过氧化物酶(MPO,myeloperoxidase)/N-乙酰葡糖胺酶(NAG,N-acetylglucosaminidase)活性及生存;并使用Smurf1抑制剂A01进行药理干预。

3.1 Smurf1 deficiency enhances early MAPK signaling and cytokine transcription, and subsequently limits late-stage Salmonella replication(Smurf1缺失增强早期MAPK信号和细胞因子转录,并随后限制晚期Salmonella复制):研究人员感染野生型和Smurf1-/- BMDMs后发现,感染0和4 h时胞内细菌负荷相当,提示Smurf1不参与S. Typhimurium吞噬,且感染初期差异复制不明显;感染18 h时Smurf1-/-巨噬细胞细菌负荷显著低于野生型,24 h时两组趋于相当。Western blot显示,野生型巨噬细胞p38 MAPK磷酸化仅在感染后60 min可检测到,而Smurf1-/-细胞在30 min即出现并持续至60 min。感染3 h时,在两组细菌负荷相同的前提下,Smurf1-/-细胞Tnf和Il10 mRNA表达显著高于野生型。结果表明Smurf1通过限制MAPK活化和细胞因子转录负向调控对Salmonella的早期炎症反应。

3.2 Smurf1 deficiency results in attenuated late cytokine secretion to live Salmonella but enhanced activation following stimulation with heat-killed bacteria or LPS(Smurf1缺失导致对活Salmonella的晚期细胞因子分泌减弱,但在热灭活细菌或LPS刺激后活化增强):研究人员检测亚硝酸盐发现,感染早期两组相当,晚期Smurf1-/-巨噬细胞亚硝酸盐水平显著较低;MTT显示两组细胞死亡无显著差异。活菌感染6 h时Smurf1-/-细胞分泌TNF和IL-6显著低于野生型,18和24 h时TNF、IL-6、IL-1β、IL-12、CXCL1和IL-10等介质亦较低。相反,热灭活S. Typhimurium刺激时Smurf1-/-细胞分泌TNF和IL-6显著高于野生型;LPS(lipopolysaccharide,脂多糖)刺激后TNF和IL-10亦更高。结果表明,活菌感染时Smurf1-/-细胞晚期细胞因子降低并非固有炎症信号缺陷,而需要活菌介导的机制;Smurf1缺失与早期炎症信号增强、晚期细菌负荷和细胞因子分泌降低相关。

3.3 Smurf1 deficiency enhances Salmonella clearance, reduces inflammation and tissue damage, and improves host resistance to salmonellosis(Smurf1缺失增强Salmonella清除、减轻炎症和组织损伤,并提高宿主对沙门菌病的抵抗):研究人员经腹腔感染野生型和Smurf1-/-小鼠,感染72 h时Smurf1-/-小鼠肝、脾S. Typhimurium负荷显著低于野生型;肝匀浆中TNF、IL-6、IFN-γ和CCL2水平显著降低。H&E显示野生型小鼠肝组织出现由中性粒细胞、巨噬细胞和淋巴细胞组成的多灶性炎症浸润,并伴实质坏死、血管血栓和栓塞;Smurf1-/-小鼠组织架构较好,组织病理评分显著较低。NAG活性两组相当,MPO活性在野生型感染肝中显著较高,提示野生型组织损伤加重可能与中性粒细胞募集增加有关。口服和腹腔感染模型中,Smurf1-/-小鼠生存率均显著高于野生型。结果表明Smurf1促进S. Typhimurium复制并加剧炎症,进而导致组织损伤和宿主生存降低。

3.4 Pharmacological inhibition of Smurf1 reduces intracellular Salmonella replication and inflammatory cytokine production in macrophages(Smurf1药理抑制降低巨噬细胞胞内Salmonella复制和炎症细胞因子产生):研究人员用Smurf1抑制剂A01处理野生型BMDMs,50 μM A01不造成细胞毒性;A01不影响S. Typhimurium吞噬或入侵,但感染18和24 h时A01处理细胞胞内细菌负荷显著降低。A01不直接影响LB培养基中S. Typhimurium生长,说明其作用并非直接抗菌;A01处理还降低感染巨噬细胞IL-1β和IL-12分泌,且24 h处理不影响宿主细胞活力。结果表明药理抑制Smurf1可削弱Salmonella复制并减少细胞因子产生,且不依赖影响细菌摄取或宿主细胞活力。

3.5 Pharmacological inhibition of Smurf1 enhances Salmonella clearance and reduces cytokine production in infected mice(Smurf1药理抑制增强感染小鼠Salmonella清除并降低细胞因子产生):研究人员给野生型小鼠腹腔给予10 mg/kg A01,并在感染后每24 h给药。感染72 h时A01处理小鼠肝、脾CFU显著低于溶剂对照;肝匀浆TNF、IL-6和IFN-γ水平降低,且感染A01处理小鼠细胞因子水平与未感染对照相近。H&E显示未处理感染小鼠肝广泛坏死和多灶炎症浸润,A01处理小鼠肝架构保存较好、损伤轻微,组织病理评分显著降低。然而A01治疗未改善生存,A01和溶剂处理小鼠最终均死亡。结果表明药理抑制Smurf1增强宿主抗菌反应并减少细胞因子分泌,与Smurf1缺陷巨噬细胞和小鼠表型一致,但未提高生存。

讨论部分总结:作者认为Smurf1是S. Typhimurium感染中的宿主易感因子,可促进巨噬细胞中细菌复制并放大炎症性免疫病理;Smurf1缺失或药理抑制可改善细菌清除、减轻组织损伤,Smurf1-/-小鼠生存率显著提高。作者将Smurf1与RNF213、TRIM32和Parkin等宿主泛素连接酶的作用进行比较,指出Smurf1促进Salmonella感染的作用与这些连接酶不同,也与其在结核分枝杆菌和Betacoronavirus感染中的保护作用不同,强调Smurf1在宿主防御中的作用具有病原体特异性和情境依赖性。机制上,作者认为Smurf1负向调控早期p38 MAPK信号,可能削弱感染初期抗菌自噬的诱导,从而形成有利于Salmonella建立和复制的胞内环境;但早期p38磷酸化增强与细菌清除加速之间的因果关系在本模型中仍为相关性,需未来使用特异性p38抑制剂验证。作者提出MyD88、TRAF6和MEKK2等为Salmonella感染背景下的候选底物,但强调尚需生化实验验证。作者还指出,Smurf1-/-巨噬细胞早期炎症活化增强而活菌感染晚期细胞因子降低,晚期降低可能是细菌清除加速的继发结果;活菌与热灭活细菌或LPS刺激反应的差异提示活菌毒力因子可能调节Smurf1功能,SseL和SpvC等效应器可能参与相关过程。关于A01,作者认为其降低细菌负荷和肝脏炎症但不改善生存,可能与急性药理干预与完全基因敲除的差异、药物组织分布和生物利用度等药代动力学限制有关,且A01特异性未在Smurf1-/-细胞中正式验证以排除脱靶效应。研究结论翻译:总之,该研究揭示Smurf1促进S. Typhimurium复制并加剧免疫病理,将其鉴定为沙门菌病期间的宿主易感因子。结合Smurf1在分枝杆菌和病毒感染中提供保护作用的证据,这些发现确立Smurf1为固有免疫的情境依赖性调节因子,其功能结局由入侵病原体的性质塑造。更广泛地,该工作补充了越来越多证据,表明宿主E3泛素连接酶是抗微生物免疫防御中的关键且潜在可治疗靶向的检查点。
相关新闻
生物通微信公众号
微信
新浪微博

热点排行

    今日动态 | 人才市场 | 新技术专栏 | 中国科学人 | 云展台 | BioHot | 云讲堂直播 | 会展中心 | 特价专栏 | 技术快讯 | 免费试用

    版权所有 生物通

    Copyright© eBiotrade.com, All Rights Reserved

    联系信箱:

    粤ICP备09063491号