# 高温胁迫下华盛顿蛤(*Saxidomus purpuratus*)的短期热应激响应:存活、耗氧率与血淋巴生化特征

《Fishes》:Short-Term Thermal Stress Responses in Washington Clam, Saxidomus purpuratus: Survival, Oxygen Consumption, and Hemolymph Biochemistry

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年10月29日 来源:Fishes 2.9

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  研究人员考察了成年华盛顿蛤(*Saxidomus purpuratus*)的短期热响应,采用了存活率、耗氧率(OCR)与血淋巴指标测定。存活实验每个温度设30只个体,分配于3个重复水槽中。呼吸测定每个温度使用3个独立呼吸室,每室10只个体。每个水槽取5只个体采

  
研究人员考察了成年华盛顿蛤(*Saxidomus purpuratus*)的短期热响应,采用了存活率、耗氧率(OCR)与血淋巴指标测定。存活实验每个温度设30只个体,分配于3个重复水槽中。呼吸测定每个温度使用3个独立呼吸室,每室10只个体。每个水槽取5只个体采集血淋巴。存活率与OCR在10、15、20、25和30 °C下评估。血淋巴于10–25 °C暴露96 h后取样,于30 °C暴露24 h后取样,因最高温度下死亡迅速发生。10–20 °C存活率超过90%,25 °C降至70%,30 °C在96 h后降至0%。半致死时间(LT50)在10–25 °C超过96 h,但在30 °C为43.8 h。OCR随温度升高至25 °C,随后在30 °C下降。Q10值在20 °C与25 °C之间最高。96 h后,葡萄糖(GLU)、天冬氨酸氨基转移酶(AST)、丙氨酸氨基转移酶(ALT)和总胆固醇(TCHO)在各处理间存在差异,而甘油三酯(TG)和总蛋白(TP)无差异。超氧化物歧化酶(SOD)蛋白丰度在25 °C最高。在本实验条件下,25 °C伴随明显的亚致死胁迫,而30 °C引起严重短期胁迫并超出蛤的短期耐受能力。
**研究背景** 华盛顿蛤(*Saxidomus purpuratus*)是分布于韩国沿岸沙砾质底质、从潮间带至约40 m水深的经济性双壳贝类,主要依靠潜水渔业采捕。年产量在2005年前曾超过3000吨,此后持续下降,2017年降至1104吨的低点。该种自2001年起纳入总可捕量管理制度,2008年列入国家种群恢复计划,但近年捕捞量仍维持在约1116吨,约为历史最高值的17%。水温上升可能对该种的持续存在构成日益增大的威胁,韩国海洋水产部报告该种在28 °C以上出现大量死亡。然而,该种对热胁迫的生理响应及其上限热耐受性仍认识不足。以往研究主要集中于年龄与生长、性腺发育和繁殖等基础生物学性状,对升温及其他气候相关胁迫因子的生理响应了解较少。全球海洋热浪日趋频繁和强烈,1982—2016年卫星观测期内海洋热浪天数增加54%,IPCC第六次评估报告预计在高碳排放情景(SSP5-8.5)下到2040年海洋热浪发生频率将增加三倍,这对活动能力有限的底内双壳贝类可能产生致命影响。韩国南部海岸水温上升速度为全球平均的1.5倍,夏季平均水温由2003—2007年的19.81 °C升至2008—2012年的21.90 °C和2013—2017年的23.63 °C。已有研究报道该种幼体最适生长温度为20–25 °C,但成体在体型、能量储备和生理状况上不同于幼体,幼体数据不能直接外推;同时,跨温度梯度的存活、代谢活动与血淋巴生化指标的综合评估仍然缺乏。因此本研究设置10–30 °C实验温度,旨在确定LT50以评估成体在高温环境下的临界存活时间,并量化其热胁迫耐受限度。

**研究内容与结论** 研究人员将20 °C暂养的成体按1 °C h?1连续调温至目标温度,分别开展存活、呼吸测定和血淋巴分析,预期OCR随温度升高至临界限度后出现呼吸抑制并伴随死亡率上升。结果显示,10–20 °C存活率接近全存活,25 °C降至70%,30 °C全部死亡,LT50为43.8 h;OCR升至25 °C达最高后于30 °C下降,20–25 °C间Q10最高而25–30 °C间低于1;96 h处理组中GLU、AST、ALT和TCHO随温度变化,25 °C下SOD蛋白丰度最高。研究表明,在实验条件下25 °C伴随明显亚致死胁迫,30 °C则造成严重短期胁迫并超出短期耐受能力,上限临界热阈值位于25–30 °C之间,且亚致死与致死条件之间间隔狭窄。

**关键技术方法** 实验动物于2024年10月采自韩国Geoje,运至韩国海洋科学技术院(KIOST)在循环过滤系统中暂养一周(水温20 °C,盐度30.1–33.5 psu,溶解氧>7.0 mg L?1),选用壳长82.75 ± 3.17 mm、体重145.92 ± 14.53 g的个体。采用可编程加热器(2 kW)与冷水机以1 °C h?1速率调温,以YSI Pro 2030校正温度并维持±0.1 °C。存活实验以水槽为实验单元,每6 h监测一次,死亡以对轻柔机械刺激无壳或水管反应判定,LT50采用概率分析(暴露时间经log10转换)估计并以Pearson卡方检验拟合优度。呼吸测定采用封闭流水式呼吸系统,以室进出口溶氧差、流量和软体组织湿重计算OCR,并在12L:12D光周期下进行,Q10由处理均值计算,日代谢能量需求(MER)以氧热当量13.6 J mg O2?1估算。血淋巴自围心腔以3 mL注射器(24G × 1/2″,无抗凝剂)抽取,离心后上清于?70 °C保存,AST、ALT、GLU、TG、TP、TCHO以FUJI DRI-CHEM 4000i测定,SOD以竞争抑制ELISA试剂盒测定蛋白浓度(450 nm读数,四参数逻辑标准曲线)。统计分析采用Shapiro–Wilk与Levene检验、单因素方差分析及Tukey检验、两因素重复测量方差分析,显著性设为p < 0.05。

**研究结果**

**3.1 存活率与LT50** 通过96 h存活监测发现,10和15 °C终存活率为100%,20 °C为96.7%;25 °C在48 h后降至80%以下并逐渐下降,96 h时为70.0%;30 °C在24 h后急剧下降并于96 h内全部死亡。10–25 °C累积死亡率未达50%,LT50表示为>96 h;30 °C经概率分析估计LT50为43.8 h(95%置信区间:40.8–46.7 h;PROBIT (p) = ?9.259 + 5.640·log10t;Pearson χ2 = 8.851,df = 14,p = 0.840)。

**3.2 耗氧率(OCR)** 通过24 h呼吸测定(期间无死亡)发现,10、15、20、25和30 °C平均OCR分别为101.6 ± 14.0、182.7 ± 24.5、242.9 ± 33.2、805.7 ± 152.5和492.3 ± 33.6 mg O2 kg?1 h?1,温度显著影响OCR(p < 0.05),Tukey检验显示25 °C最高。光暗比较显示,10–20 °C光暗值无显著差异,25和30 °C暗期OCR较低(p < 0.05);两因素重复测量方差分析显示温度(F(4, 10) = 43.83,p < 0.001,η2 = 0.90)、光照条件(F(4, 10) = 11.82,p < 0.05,η2 = 0.37)及其交互作用(F(4, 10) = 8.33,p < 0.001,η2 = 0.62)均显著,最高OCR出现在25 °C光照条件下(1065.7 ± 131.6 mg O2 kg?1 h?1)。由处理均值计算的Q10在20–25 °C间最高(11.0),25–30 °C间低于1.0(0.37)。日平均MER在10、15、20、25和30 °C分别为33.2 ± 4.6、59.6 ± 8.0、79.3 ± 10.8、263.0 ± 49.8和160.7 ± 11.0 kJ kg?1 d?1,以25 °C最高。

**3.3 血淋巴参数** 在96 h处理组(10–25 °C)内,血淋巴GLU、AST、ALT和TCHO在温度间存在显著差异(GLU:F(3, 8) = 19.2,p < 0.001,η2 = 0.88;AST:F(3, 8) = 10.38,p < 0.05,η2 = 0.80;ALT:F(3, 8) = 11.25,p < 0.05,η2 = 0.81;TCHO:F(3, 8) = 3.99,p < 0.05,η2 = 0.60),而TG和TP无差异(均F(3, 8) = 0.801,p = 0.527,η2 = 0.23)。GLU在20 °C最高、25 °C最低(Tukey,p < 0.05);AST和ALT在20 °C显著低于10和25 °C(p < 0.05);TCHO在20和25 °C显著高于10 °C(p < 0.05)。SOD浓度在96 h处理间存在方差非齐性(F(3, 8) = 11.34,p < 0.05,η2 = 0.81),25 °C(32.24 ± 1.83 ng mL?1)显著高于15 °C(20.15 ± 5.77 ng mL?1,p < 0.05)和20 °C(13.85 ± 0.38 ng mL?1,p < 0.05),与10 °C(15.35 ± 1.44 ng mL?1)差异不显著(p = 0.262)。30 °C组于24 h取样,仅作描述性急性响应呈现:GLU 238.0 ± 68.6 mg dL?1、AST 48.9 ± 12.5 U L?1、ALT 52.3 ± 24.1 U L?1、TG 1.95 ± 0.18 mg dL?1、TP 0.20 ± 0.02 g dL?1、TCHO 13.7 ± 1.2 mg dL?1,SOD显著升高(44.90 ± 5.79 ng mL?1),因暴露时长不同未纳入正式统计比较。

**讨论部分总结** 在存活方面,讨论指出25 °C存活率在48 h后逐渐下降、30 °C死亡迅速,LT50为43.8 h,说明该种上限临界热阈值位于25–30 °C之间;与在26 °C下LT50为24 h的硬壳蛤(*Spisula solidissima*)幼体及在26 °C下12 h内100%死亡、96 h半致死温度23.8 °C的虾夷扇贝(*Mizuhopecten yessoensis*)相比,本研究成体表现出相对较高的热耐受性,其48 h后存活率逐渐下降被视为种间热耐受差异;25 °C下至少70%个体存活96 h与30 °C全部死亡之间的明显差异,表明成体亚致死胁迫与致死条件之间间隔狭窄,温度由约25 °C升至30 °C可导致存活率迅速下降,但恒温实验室获得的LT50不能直接用于预测养殖设施或自然种群的死亡时间与程度。在耗氧率方面,OCR随温度由10 °C升至20 °C并在25 °C最高,由于25 °C存活率已下降,该升高可能反映热胁迫下代谢需求增加而非有利的生理响应;30 °C降至492.3 ± 33.6 mg O2 kg?1 h?1,可能与代谢抑制、活动减少、氧限制或渐进性生理损伤有关,但因未测定厌氧代谢物和线粒体功能,机制尚不确定。光暗差异提示光周期可能影响严重热胁迫下活动相关耗氧,也可能反映开壳或水管运动变化;该种为底内蛤类,经水管换气,摄氧与开壳和水管伸展密切相关,在呼吸室中蛤可能在光期更活跃、暗期活动下降,10–20 °C代谢需求与活动水平较低使光周期效应难以检出,不直接依赖光的日节律也可能参与其中,这些可能仍需通过连续监测壳运动或整体活动加以检验;日本鲍及其杂交种光期OCR较高的报道与本研究观察大体一致,但在缺乏直接行为测定前不能外推至该种。20–25 °C间Q10高达11.0提示氧消耗呈陡峭非线性增加,与河蚬(*Corbicula fluminea*)报道相似,但因活动、操作、禁食时长和开壳行为可影响Q10估计,该值不应视为确定性代谢阈值;25–30 °C间Q10低于1.0提示随温度升高氧消耗下降,可能与代谢抑制、闭壳、活动减少或严重应激个体的生理损伤有关,机制因未测定厌氧代谢物、线粒体功能和壳行为而不确定。MER在25 °C最高,30 °C降至160.7 ± 10.9 kJ kg?1 d?1,可能源于活动减少、代谢抑制或生理功能障碍,因未测定能量储备和代谢效率,这些解释应视为初步。在血淋巴参数与代谢状态方面,因30 °C组取样于24 h而10–25 °C组于96 h,前者代表独立的急性响应,未与96 h处理直接比较;96 h各组中GLU、AST、ALT和TCHO随温度变化,SOD蛋白丰度在25 °C最高;AST和ALT在20 °C(暂养温度)最低而在10和25 °C升高,可能提示对温度偏离的响应,但仅凭这些测定无法确定机制;30 °C下GLU、ALT、AST、TP和TG虽也存在描述性差异,但因暴露时长不同不能归因于温度本身;25 °C 96 h后GLU最低而30 °C 24 h后GLU较高,暴露时长差异使二者无法统计比较,这种相反的葡萄糖模式可能与急性应激动员循环葡萄糖、长期应激耗竭能量储备的双相响应相容,但因未测定糖原周转该解释仍属初步;ALT和AST变化可能反映代谢调节或一般组织应激,但不能证明消化腺损伤,TP和TG降低也可能源于营养动员、摄食减少、血淋巴稀释或合成下降;25 °C下高OCR、转氨酶升高、葡萄糖降低与SOD蛋白丰度升高的组合与明显的亚致死胁迫相符,但ELISA测定的是SOD蛋白丰度而非催化活性且未评估氧化损伤标志物,故结果不能确立氧化损伤、抗氧化能力下降或SOD功能激活;接近25 °C的长期暴露可能影响能量平衡,但需通过测定糖原储备和氧化损伤的慢性暴露研究加以确认。

**结论翻译** 本研究考察了成年*Saxidomus purpuratus*对10至30 °C恒定实验室温度的短期响应。存活率在30 °C急剧下降,估计LT50为43.8 h;OCR升至25 °C后于30 °C下降。20 °C与25 °C之间的高Q10估计值应仅解释为描述性处理均值,因其基于三个独立呼吸室且可能受行为影响。在96 h各组中,GLU、AST、ALT和TCHO随温度变化,SOD蛋白丰度在25 °C最高;然而ELISA测定不能确立SOD活性或氧化损伤。在本实验方案下,25 °C伴随明显的亚致死胁迫,而30 °C引起严重短期胁迫。这些结果不能界定慢性养殖最适温度,也不能预测养殖场或野生种群的死亡情况。未来研究应考察波动性热浪,并纳入性腺发育阶段、行为、抗氧化酶活性、氧化损伤标志物、糖原和厌氧代谢物。
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