人相关性六氟环氧丙烷二聚酸暴露经KDM6A介导CDC42 K27去甲基化驱动神经元亚型特异性衰老

《Journal of Hazardous Materials》:Human-relevant hexafluoropropylene oxide dimer acid exposure drives neuronal senescence via KDM6A-mediated CDC42 K27 demethylation

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年11月04日 来源:Journal of Hazardous Materials 10.6

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  研究人员建立了一种人相关性六氟环氧丙烷二聚酸(HFPO-DA)暴露小鼠模型,证实HFPO-DA是一种环境诱导剂,可驱动脑衰老病理并增加神经退行性病变易感性。人相关性内部暴露水平的HFPO-DA以亚型特异性方式促进神经元衰老(Camk2d+

研究人员建立了一种人相关性六氟环氧丙烷二聚酸(HFPO-DA)暴露小鼠模型,证实HFPO-DA是一种环境诱导剂,可驱动脑衰老病理并增加神经退行性病变易感性。人相关性内部暴露水平的HFPO-DA以亚型特异性方式促进神经元衰老(Camk2d+和Sgcz+亚群扩增,保护性Dock10+亚群耗竭)。研究人员进一步揭示KDM6A(赖氨酸特异性组蛋白去甲基化酶6A)是该过程的关键驱动因子。在机制层面,研究人员阐明KDM6A直接结合CDC42(细胞分裂控制蛋白42),催化其第27位赖氨酸(K27)去甲基化并激活CDC42。此外,研究人员验证Kdm6a缺失可显著抑制CDC42激活并缓解HFPO-DA诱导的神经元衰老。综上,这些新发现确定KDM6A-CDC42轴是拮抗衰老相关神经退行性疾病的潜在靶点。
六氟环氧丙烷二聚酸(HFPO-DA)作为一种新兴的全氟和多氟烷基物质(PFAS)替代品,因其广泛的环境检出及潜在健康风险而备受关注。HFPO-DA在全球水体系统中频繁被检出,人类生物监测研究已在血清、母乳、脐带血甚至脑组织中检测到该物质,且在胶质瘤组织中的总HFPO-DA负荷高于非胶质瘤脑组织。然而,现有研究多集中于HFPO-DA的代谢及肝脏毒性,其神经毒性及分子机制尚不清楚。随着环境应激物累积暴露加速脑衰老轨迹的证据不断积累,神经元衰老作为神经退行性病变的关键驱动因素,其在HFPO-DA暴露下的作用亟待阐明。甲基化失调是衰老的核心标志,而KDM6A作为组蛋白H3第27位赖氨酸(H3K27)去甲基化酶,在大脑皮层和海马富集并调控神经系统发育,但其在环境污染物诱导神经元衰老中的功能尚未完全明确。基于此,研究人员开展了HFPO-DA暴露诱导神经元衰老的机制研究。

研究人员通过建立人相关性HFPO-DA暴露小鼠模型,系统研究了HFPO-DA对神经元衰老的影响及其分子机制。研究得出以下核心结论:人相关性内部暴露水平的HFPO-DA可在时间和剂量依赖下诱导皮层及海马神经元衰老,并呈现亚型特异性,即Camk2d+和Sgcz+亚群扩增而保护性Dock10+亚群耗竭;KDM6A是驱动该过程的关键因子,其通过直接结合CDC42并催化其K27去甲基化,进而激活CDC42;Kdm6a缺失可显著抑制CDC42激活并缓解HFPO-DA诱导的神经元衰老。该论文发表于《Journal of Hazardous Materials》,首次揭示了KDM6A-CDC42轴在环境污染物诱导神经衰老中的关键作用,为理解环境暴露加速脑衰老提供了新机制,也为干预衰老相关神经退行性疾病提供了潜在靶点。

研究人员主要采用了以下关键技术方法:建立C57BL/6J小鼠HFPO-DA慢性饮水暴露模型(暴露16周),利用超高效液相色谱-串联质谱(UPLC-MS/MS)检测血清HFPO-DA浓度;通过单细胞核RNA测序(snRNA-seq)分析小鼠海马组织细胞组成及神经元亚型;采用RNA测序(RNA-seq)及甲基化蛋白质组学筛选差异表达基因及甲基化修饰蛋白;运用免疫共沉淀-质谱联用(IP-MS)联合生物信息学分析鉴定KDM6A相互作用蛋白;借助CRISPR-Cas9技术构建Kdm6a敲除细胞系,并通过免疫共沉淀(Co-IP)、GTP-CDC42 pull-down激活实验、Western blot及流式细胞术验证KDM6A对CDC42 K27去甲基化的调控;利用Emx1-Cre介导的条件性Kdm6a敲除小鼠(Kdm6afl/fl; Emx1-Cre)在体验证KDM6A功能;此外,分析了GTEx数据库正常人脑皮层及海马组织的表达相关性。

3.1 人相关性内部暴露水平诱导皮质与海马的细胞衰老
研究人员通过小鼠饮水暴露实验发现,经16周暴露后,中、高剂量组(10 μg/L和1 mg/L)血清HFPO-DA浓度分别达到3.7–4.26 ng/mL和36.54–42.66 ng/mL,接近人体环境暴露报告值。SA-β-gal(衰老相关β-半乳糖苷酶)染色显示,16周暴露显著升高海马及皮层β-gal+细胞比例;H&E和Nissl染色证实高剂量组出现细胞收缩、退行性损伤及Nissl小体减少。Western blot显示p53、p21和p16蛋白水平在16周时显著上调,表明HFPO-DA以时间和剂量依赖方式诱导脑区衰老。

3.2 整合单细胞与bulk转录组分析揭示HFPO-DA诱导的神经元特异性衰老及亚型特异性神经退行易感性增加
研究人员对小鼠海马组织进行snRNA-seq分析,经质控后保留23,110个细胞,分为21个簇。细胞类型注释显示神经元比例下降最显著。基于CellAge、Aging Atlas等四个数据库的衰老评分富集分析表明,神经元是唯一在所有数据库中均显著富集的细胞类型。神经元亚聚类为10个亚群,发现Camk2d+(增加3.3%)和Sgcz+(增加2.92%)亚群比例上升,而保护性Dock10+亚群(减少4.32%)显著耗竭。GSEA显示上调亚群激活多条神经退行性疾病相关通路,而Dock10+虽比例下降但其神经退行特征受抑。体外实验中,N2A细胞经HFPO-DA(250 μM、500 μM,72 h)暴露后,细胞活力下降、SA-β-gal活性升高;RNA-seq显示2,438个基因上调、1,891个基因下调,p53信号通路及细胞周期显著富集,彗星实验证实DNA损伤,提示HFPO-DA通过DNA损伤-p53通路诱导神经元衰老。

3.3 KDM6A是HFPO-DA诱导神经元衰老的关键因子
研究人员通过转录组学发现HFPO-DA显著影响甲基化相关过程并损害叶酸代谢,导致S-腺苷甲硫氨酸(SAM)减少及全局蛋白低甲基化。在21种赖氨酸去甲基化酶(KDMs)中,HFPO-DA选择性上调Kdm4a和Kdm6a。药理学抑制实验显示KDM6A抑制剂GSK-J4显著抑制p53、p21、p16上调,而KDM4A抑制剂Toxoflavin仅抑制p16。HFPO-DA降低H3K27me3水平,GSK-J4可恢复该修饰。CRISPR-Cas9构建Kdm6a敲除细胞系显示,Kdm6a缺失显著削弱HFPO-DA诱导的p53/p21/p16上调并缓解细胞周期阻滞,证实KDM6A通过增强去甲基化酶活性和降低甲基供体可用性驱动神经元衰老。

3.4 甲基化蛋白质组学鉴定CDC42为KDM6A的下游靶点
研究人员利用Emx1-Cre条件性敲除小鼠进行甲基化蛋白质组学分析,鉴定出45个上调和99个下调的甲基化蛋白,KEGG分析富集于细胞周期和细胞衰老通路。通过与KDM6A互作蛋白及GenAge数据库交叉比对,确定CDC42为最显著的衰老相关上调甲基化蛋白,质谱显示CDC42第27位赖氨酸二甲基化(K27me2)升高。Dot blot验证CDC42-K27me2抗体特异性。Western blot显示HFPO-DA降低CDC42-K27me2水平,Kdm6a敲除可恢复该修饰。分子对接显示KDM6A与CDC42通过氢键相互作用(CDC42 K27与KDM6A N777/N789)。Co-IP证实两者互作,且HFPO-DA暴露增强该互作。GTP-CDC42 pull-down实验表明HFPO-DA显著提高CDC42活性,而Kdm6a缺失则抑制其激活,表明KDM6A直接结合CDC42并催化其K27去甲基化进而激活CDC42。

3.5 CDC42 K27去甲基化促进神经元衰老
序列比对显示CDC42 K27在物种间高度保守。研究人员构建CDC42 K27R(模拟去甲基化)和K27F(模拟二甲基化)突变体。Western blot显示K27R表达增强CDC42活性及下游p53、p21、p16表达,而K27F则逆转上述效应。Co-IP证实K27R突变削弱CDC42与KDM6A的互作,表明CDC42 K27去甲基化通过解除KDM6A结合并激活CDC42驱动神经元衰老。

3.6 Emx1-Cre介导的条件性Kdm6a敲除减轻HFPO-DA诱导的小鼠神经元衰老
在Kdm6afl/fl; Emx1-Cre小鼠中,16周HFPO-DA暴露后,SA-β-gal活性升高被显著抑制;Nissl和H&E染色显示Kdm6a缺失减轻皮层及海马神经元损伤并维持Nissl小体完整性。免疫荧光及Western blot证实Kdm6a敲除显著削弱HFPO-DA诱导的p53、p21、p16上调,表明KDM6A是HFPO-DA诱导脑内神经元衰老的关键介导因子。

3.7 KDM6A表达与神经元衰老相关
GTEx数据库分析显示人脑皮层及海马组织中KDM6A表达与CDC42(R=0.63)、p53(R=0.64)、p21(R=0.41)及p16相关转录本(R=0.45)呈正相关。小鼠脑组织免疫组化显示HFPO-DA暴露增加KDM6A、p53、p21、p16表达,且KDM6A与p53(R=0.66)、p21(R=0.76)、p16(R=0.73)正相关。条件性Kdm6a缺失显著减弱HFPO-DA诱导的p53/p21/p16表达,而总CDC42水平不变,进一步支持KDM6A作为CDC42上游调控因子的结论。

讨论指出,HFPO-DA在全球水体中广泛检出(浓度0.7–14 ng/L,点源附近可达14,107.94 ng/L),人类生物监测显示血清浓度最高达15 ng/mL,职业暴露可达169 ng/mL。本研究中的HFPO-DA-M组血清浓度(3.7–4.26 ng/mL)落在环境暴露人群范围内,而H组接近高端值,表明模型具有人相关性。HFPO-DA暴露通过选择性耗竭保护性Dock10+亚群、病理性扩增脆弱的Camk2d+和Sgcz+亚群破坏神经元亚型稳态,加速衰老进程。代谢层面,HFPO-DA减少SAM生成及全局蛋白甲基化,而外源SAM可部分缓解衰老。研究还揭示KDM6A-CDC42轴作为神经元衰老的新型分子标志,拓展了环境神经毒理学机制。局限性包括需明确HFPO-DA是否直接促进人类神经元衰老、KDM6A-CDC42轴的治疗价值需进一步探索,以及高剂量暴露结果的外推需谨慎。

研究结论:人相关性血清浓度的HFPO-DA暴露以亚型特异性方式(Camk2d+/Sgcz+扩增、Dock10+耗竭)诱导神经元衰老并破坏神经元稳态;KDM6A通过促进CDC42 K27去甲基化激活CDC42,进而驱动衰老相关信号通路;Kdm6a缺失可抑制CDC42激活并缓解神经毒性。KDM6A-CDC42轴为拮抗HFPO-DA神经毒性和衰老相关神经退行性疾病提供了潜在靶点。

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