硫酸乙酰肝素对EVs–成纤维细胞结合的双向负调控及其对HCMV附着的促进作用

《Journal of Extracellular Vesicles》:Heparan Sulfate Differentially Regulates Fibroblast Binding by Extracellular Vesicles and Human Cytomegalovirus

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年11月05日 来源:Journal of Extracellular Vesicles 21.7

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  细胞外囊泡(EVs)是由细胞产生的脂质包裹颗粒,作为细胞间通讯和货物交换的载体。病毒感染细胞可产生货物发生改变的EVs,其中可包括病毒组分。这些EVs在病毒感染的多个方面发挥功能作用。其与细胞的相互作用,包括内化前在细胞表面发生的相互作用,对其后续功能效应至关

  
细胞外囊泡(EVs)是由细胞产生的脂质包裹颗粒,作为细胞间通讯和货物交换的载体。病毒感染细胞可产生货物发生改变的EVs,其中可包括病毒组分。这些EVs在病毒感染的多个方面发挥功能作用。其与细胞的相互作用,包括内化前在细胞表面发生的相互作用,对其后续功能效应至关重要,但尚未得到广泛研究。在本工作中,研究人员研究细胞糖胺聚糖(GAGs)——细胞外基质(ECM)的主要成分——在稳态细胞及感染人巨细胞病毒(HCMV)的细胞所产生EVs的细胞结合中的作用。研究人员显示,来自感染和未感染细胞的EVs均与肝素相互作用,肝素是硫酸乙酰肝素(HS)的高度硫酸化形式。然而,在结合成纤维细胞的背景下,研究人员显示细胞和EV表面的HS均抑制EV-细胞相互作用,同时促进HCMV附着。EVs并非利用GAGs,而是与成纤维细胞表面的其他ECM成分,即胶原和纤连蛋白相互作用。本工作表明,HS作为EVs与成纤维细胞结合的双向负调控因子,同时作为HCMV附着的正调控因子。因此,在稳态和HCMV感染期间,EVs与HCMV似乎利用不同且不重叠的ECM配体进行细胞结合。
研究背景方面,EVs由细胞持续分泌,是稳态和病理条件下细胞间通讯的重要方式,其部分功能依赖细胞摄取,而摄取前首先发生EV与细胞表面的相互作用;病毒感染细胞还可释放携带病毒组分或货物改变的EVs,这些EVs参与病毒感染的多个环节。与此同时,HCMV等病毒进入细胞前亦需与细胞表面初始结合。由于病毒感染细胞可共同产生EVs和病毒颗粒,且二者具有重叠的生物物理特性,明确介导其初始细胞相互作用的因素十分重要。GAGs是ECM和基底膜中丰富的一类聚糖,包括透明质酸(HA)、硫酸软骨素(CS)、硫酸皮肤素(DS)、硫酸乙酰肝素(HS)和硫酸角质素(KS)等;HS和CS分别以硫酸乙酰肝素蛋白聚糖(HSPGs)和硫酸软骨素蛋白聚糖(CSPGs)形式广泛存在于组织中。既有研究表明EVs和HCMV均可结合肝素并利用HS结合多种细胞,但此前尚无研究直接比较共分离的EVs与病毒同GAGs的相互作用,以判断二者是否利用相同配体进行细胞结合;HS是否为EV-细胞结合的普遍介导因素、病毒感染如何改变这些相互作用、共产生的EVs与病毒是否共享细胞配体机制等问题尚待澄清。这些问题对于理解病毒感染细胞释放EVs向邻近初始细胞传递病毒病原相关分子模式(PAMPs)等功能,以及开发靶向性EV治疗策略均具重要性。基于此,研究人员系统表征并比较了HCMV感染的成纤维细胞与未感染成纤维细胞来源EVs同初始受体细胞的相互作用,重点分析GAGs在其中的作用。该研究发表于《Journal of Extracellular Vesicles》,其意义在于揭示HS对EVs与HCMV细胞结合具有差异性调控作用,并提示二者利用不同且不重叠的ECM配体。方法上,研究人员使用人包皮成纤维细胞(HFF;Hs27,ATCC)及HCMV Merlin R1111株制备感染与未感染条件培养基;以密度垫高速离心分离病毒颗粒与无病毒颗粒EVs,并经超滤和尺寸排阻色谱(SEC)纯化及AF647标记。采用透射电镜(TEM)、纳米流式细胞术(nFC)、蛋白质印迹(WB)和酶联免疫吸附试验(ELISA)表征EVs;用GAG寡糖微阵列分析糖胺聚糖结合谱;以肝素酶、软骨素酶及胶原酶/中性蛋白酶处理细胞或EVs;通过共聚焦显微镜EV细胞结合实验、定量PCR(qPCR)病毒结合实验及固相结合实验评估结合。结果部分:3.1 EVs Can Be Separated From HCMV Viral Particles Based on Density and They Display Characteristic EV Markers。研究人员通过密度垫离心分离、SEC纯化和多方法表征,发现纯化EVs在TEM下呈典型圆形/椭圆形形态且未见病毒颗粒,nFC显示两类EVs粒径分布相似、峰值约60 nm,AF647标记有效,并能检测到CD63、CD81、β-actin以及纤连蛋白和钙联蛋白;结论是EVs可依据密度与HCMV病毒颗粒分离,并具有典型EV标志物。3.2 EVs Interact With Heparin and Heparin Inhibits EV-Cell Interactions。通过GAG寡糖微阵列和共聚焦EV细胞结合实验,研究人员发现两类EVs主要与肝素结合,结合呈链长依赖性,而与HA和CS结合很少或无结合;外源肝素使未感染EVs和HCMV感染EVs的细胞结合分别降低58.9%和61.7%;此外,感染细胞来源EVs的基线细胞结合低于未感染来源EVs,降低约58%(p=0.0049),且结合模式更趋于离散。结论是EVs与肝素相互作用,肝素可抑制EV-细胞结合。3.3 Fibroblast Heparan Sulfate Inhibits Binding by EVs but Promote Binding by HCMV。通过流式细胞术和共聚焦确认HFF表面存在HS和CS,并用肝素酶I/III或软骨素酶ABC去除相应GAGs后开展EV结合与HCMV结合实验,研究人员发现去除HS使未感染EVs结合增加2.5倍(p=0.0020),使感染EVs结合增加1.7倍但未达统计学显著(p=0.176),去除CS不影响EV结合;相反,去除HS使HCMV结合下降13.2倍(降低92.4%),去除CS无影响;HA和KS未在HFF细胞检测到。结论是成纤维细胞表面HS抑制EV结合而促进HCMV结合。3.4 EV-associated Heparan Sulfate Inhibits EV-Cell Interactions。通过肝素酶I/III或软骨素酶ABC处理纯化EVs并以ELISA检测SEC组分中的CD63、HS和CS,研究人员确认EVs携带HS和CS且可被相应酶特异性去除,nFC显示酶处理未改变EV粒径分布和AF647标记;共聚焦结合实验显示HS缺失EVs的细胞结合增加2.0倍(p=0.044),CS缺失EVs结合无主要变化。结论是EV表面HS亦抑制EV-细胞相互作用。3.5 Collagen and Fibronectin Promote Cellular Surface Binding by EVs。通过固相结合实验,研究人员发现未感染和HCMV感染来源EVs均结合I型胶原和纤连蛋白,而不结合IV型胶原;免疫染色确认HFF表面存在相关蛋白,胶原酶I与dispase II处理后,未感染EVs结合下降37.7%(p=0.017),感染EVs结合下降51.3%(p=0.0038)。结论是I型胶原和纤连蛋白促进EVs与成纤维细胞表面结合。讨论部分总结认为,该研究首次报道HS可以双向方式抑制EV-细胞相互作用,同时促进HCMV附着,从而将HS界定为EVs与HCMV成纤维细胞结合的差异性调控因子。讨论指出,EVs与肝素结合并不必然意味着细胞HS是功能性结合伙伴;肝素较高硫酸化和较强负电荷、HS结构域空间组织、肝素诱导EV聚集以及EV亚群差异等均可解释EV与肝素结合但细胞结合不依赖HS的现象,且肝素结合对EV纯化具有潜在价值但可能带来亚群偏倚。讨论还提出,细胞和EV表面的HS均带负电,去除任一侧HS可减少静电排斥;EV携带GAGs还可能影响生长因子、细胞因子等信号因子 sequestration。HCMV感染来源EVs基线结合降低提示感染时促进细胞相互作用的EV因素发生失调,EV转运不同于稳态。胶原和纤连蛋白被确认为未感染及感染来源HFF EVs的真实结合伙伴,而其作为细胞表面配体的作用此前未被充分研究。讨论同时强调研究限于成纤维细胞这一顺式相互作用模型,EV异质性及SEC体相分离限制了对单个EV亚型GAG结合和细胞结合特性的解析,且EV“corona”等复杂因素未直接涉及;未来应将糖微阵列拓展至N-聚糖、O-聚糖和糖脂等其它聚糖类别。研究结论翻译:本研究为HS在调控EV-细胞相互作用中的作用、以及EVs与病毒在此方面的差异提供了新见解,并应促进针对这些相互作用的新研究,无论是靶向性还是广谱性研究。
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