开发结合了生物逆相色谱(bio-RP-HPLC-UV)与超高效液相色谱-紫外电喷雾检测(UHPLC-ELSD)的方法,用于在尺寸排阻色谱之前和之后定量mRNA-LNP的含量

《Journal of Chromatography B》:Development of combined bio-RP-HPLC-UV and UHPLC-ELSD methods for quantitation of mRNA-LNP content before and after size-exclusion chromatography

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年11月08日 来源:Journal of Chromatography B 2.8

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  •Bio-RP-HPLC-UV与UHPLC-ELSD的技术集成实现了mRNA和LNP脂质组分的同步精确量化。该平台克服了现有方法的主要缺点,包括分辨率不足、来自金属仪器表面的污染以及漫长的洗脱时间。•在UHPLC-ELSD检测器前端安装了一个2/6端口阀门切换装置,以消除LNP脂

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    Bio-RP-HPLC-UV与UHPLC-ELSD的技术集成实现了mRNA和LNP脂质组分的同步精确量化。该平台克服了现有方法的主要缺点,包括分辨率不足、来自金属仪器表面的污染以及漫长的洗脱时间。
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    在UHPLC-ELSD检测器前端安装了一个2/6端口阀门切换装置,以消除LNP脂质定量过程中遇到的高强度基质峰。这种配置降低了内部检测器组件的污染风险,并延长了检测器的使用寿命。
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    该集成分析平台被系统地应用于尺寸排阻色谱(SEC)纯化工作流程中。通过对mRNA含量、药物与脂质比例以及通过高通量动态光散射(DLS)获得的粒径数据进行了互相关分析,实现了mRNA-LNP的多属性参数相互验证。

引言

核糖核酸(RNA)是生物制药领域中一种具有巨大潜力的生物活性分子,能够调节细胞命运和生化途径。信使RNA(mRNA)因其易于体外合成、快速制造和可控的成本而推动了基于RNA的基因疗法的发展。其免疫原性和安全性已在COVID-19疫苗中得到了充分验证[1], [2], [3], [4], [5], [6]。然而,mRNA容易受到核酸酶的降解,并且在细胞膜转运过程中存在障碍;因此,通常采用脂质纳米颗粒(LNPs)作为递送载体。LNPs主要由四类成分组成:可离子化的阳离子脂质、胆固醇、辅助磷脂和PEG化脂质,分别负责RNA的结合、颗粒结构的稳定、内吞作用的促进以及颗粒聚集的抑制。利用微流控混合技术,可以按预定义的比例组装mRNA和脂质,从而生成粒径均匀的mRNA-LNP疫苗制剂[7], [8], [9]。
疫苗的免疫原性和安全性直接取决于mRNA的含量、纯度、完整性和稳定性。mRNA剂量不足可能导致免疫反应较弱,而剂量过高则可能引发过度激活的免疫反应[10], [11]。同时,四种LNP脂质的摩尔比例、药物与脂质的比例、封装效率、粒径、颗粒稳定性以及细胞摄取能力之间存在密切关联。因此,在mRNA-LNP的研发和制造阶段,必须对mRNA含量和药物与脂质比例等关键指标进行严格的质量控制[12], [13], [14], [15], [16], [17]。
随着mRNA-LNP疫苗在传染病预防和免疫治疗中的应用不断扩大,全球监管机构相继发布了质量控制指南。世界卫生组织发布了针对RNA预防性疫苗的监管评估文件。美国食品药品监督管理局(FDA)和欧洲药品管理局(EMA)规定了COVID-19 mRNA产品的mRNA完整性、杂质、粒径、药物与脂质比例及稳定性的控制要求。FDA随后发布的分析方法指南进一步指出,mRNA定量检测应满足准确性、重复性和灵敏度的要求[18], [19], [20], [21]。在中国,国家药品监督管理局(NMPA)通过《COVID-19疫苗预防性研究技术指南(试行)》等技术文件加强了mRNA疫苗的药品研究和质量控制,要求对mRNA和LNP成分进行全面的质量研究[22], [23], [24], [25], [26], [27], [28], [29], [30], [31], [32], [33], [34], [35], [36], [37], [38], [39], [40], [41], [42], [43], [44]。
可靠的分析方法为mRNA-LNP疫苗的质量控制奠定了基础[45], [46], [47]。mRNA定量面临多重技术挑战。mRNA具有5′-帽和poly (A)尾结构,结构复杂且易降解。碱基修饰可能会影响qPCR扩增效率并引入定量偏差。样品中的质粒DNA和宿主来源的RNA等杂质可能造成分析干扰。此外,mRNA对温度、pH值和核酸酶敏感,因此在样品预处理过程中容易发生降解。
LNP脂质组分的准确量化也颇具挑战性。四种脂质具有不同的理化性质,需要高效的分离策略。分离和测量封装态和游离态mRNA通常依赖于超滤和柱层析。粒径波动和系统稳定性问题会影响结果的重复性。分析方法需要具备足够的灵敏度和组分特异性,以便有效分离多种脂质分析物。
已报道的核酸定量技术包括RiboGreen检测[48]、液相色谱-质谱(LC-MS)[47]和高效液相色谱(HPLC)[49]。RiboGreen检测只能测定总核酸浓度[49]。对于基于LC-MS的检测方法,长链mRNA必须在LC-MS测量前被消化成短寡核苷酸片段;此外,这些方法的洗脱时间较长[47]。HPLC被广泛用于脂质和核酸的分离和定量[49]。然而,大多数报道的核酸分析研究侧重于色谱模式的优化[47], [49],而忽视了金属离子与mRNA之间络合作用引起的污染效应,这会干扰定量结果。现有的脂质定量方法无法避免来自复杂基质的快速检测器污染,且每种脂质的线性校准曲线的相关系数(R2)仅超过0.99[50]。即使是一些同时测量脂质和核酸的方法,也主要关注检测的适用性和分离性能,对检测灵敏度的关注有限;相应地,它们对单个脂质的相关系数(R2)也仅略高于0.99[49]。
因此,迫切需要一个集成分析平台,能够专门量化复杂mRNA疫苗基质(含有mRNA、缓冲盐和其他成分)中的mRNA和脂质,并支持mRNA-LNP疫苗制剂的質量评估和工艺优化。
在本研究中,我们构建了一个结合了Bio-RP-HPLC-UV和UHPLC-ELSD的集成分析平台。传统的金属不锈钢LC系统被替换为生物相容的惰性液相色谱硬件,以减少吸附和污染现象。进一步优化了色谱条件,显著缩短了分析时间,提高了mRNA的定量精度和分析通量。在UHPLC-ELSD检测器前端安装了一个2/6端口阀门切换装置,以降低复杂LNP基质直接注入导致检测器快速污染的风险。进一步的色谱条件优化提高了LNP脂质检测的分辨率和灵敏度。验证结果显示,mRNA和每种脂质分析物的线性校准曲线的相关系数(R)均高于0.9990。mRNA的定量回收率在87.89%到100.31%之间,四种LNP脂质在三个浓度水平的平均回收率在99.52%到102.46%之间,性能优于以往报道的方法。该集成平台在实际应用于mRNA-LNP质量控制中表现出良好的优势。它可用于尺寸排阻色谱(SEC)纯化前后的样品表征,以及结合高通量动态光散射(DLS)获得的mRNA含量、药物与脂质比例和粒径数据的相关性分析。使用三个批次的制剂进行的检测验证显示了批次间的一致性。该平台实现了复杂mRNA疫苗基质中mRNA和脂质的专门量化,并在整个SEC纯化工作流程中实现了多属性参数的相互验证。它为建立此类疫苗制剂的简便实用的质量评估系统提供了技术支持。

章节片段

实验设计概述

本研究旨在将Bio-RP-HPLC-UV和UHPLC-ELSD集成到一个分析平台上,展示其在mRNA-LNP疫苗制剂中mRNA和LNP脂质定量方面的适用性,以及在尺寸排阻色谱(SEC)纯化工作流程中对多属性参数相互验证的实用性。
为了进行定量测量,传统的金属液相色谱系统被替换为生物相容的

方法开发

方法开发采用了系统性的单因素研究方法,具体细节如下。

结论

在本研究中,建立了一个结合了Bio-RP-HPLC-UV和UHPLC-ELSD的集成分析平台。证明了该平台作为mRNA-LNP疫苗制剂中mRNA和LNP脂质定量分析工具的适用性,以及其在整个尺寸排阻色谱(SEC)纯化工作流程中对多属性参数相互验证的能力。
对色谱硬件和分析方法进行了系统研究

CRediT作者贡献声明

Ting Sun:撰写——原始草稿,数据整理。Qi Wu:监督。Xueli Liuc:资金获取。Zhanlei Xing:验证,研究。Lin Shi:项目管理。Feizi Hu:资源协调。Yang Sun:软件开发。Yafeng Wang:数据分析。

利益冲突声明

作者声明他们没有已知的可能会影响本文工作的财务利益或个人关系。

致谢

本研究得到了河北省重点研发计划和生物医学创新专项项目:重组蛋白疫苗和mRNA疫苗的安全控制技术和标准化研究(项目编号:23372403D)的支持。
Ting Sun|Qi Wu|Xueli Liuc|Zhanlei Xing|Lin Shi|Feizi Hu|Yang Sun|Yafeng Wang

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