羟基红花黄色素A通过Keap1候选互作减轻HT22细胞铁死亡相关损伤

《Antioxidants》:Hydroxysafflor Yellow A Protects HT22 Cells Against Ferroptosis-Associated Injury with Keap1 as a Candidate Interaction Partner

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年11月12日 来源:Antioxidants 8.2

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  羟基红花黄色素A(HSYA)是红花(Carthamus tinctorius L.)的生物活性成分,具有抗氧化和细胞保护特性。在RSL3攻击的海马来源细胞中,Keap1是否为HSYA的候选互作伙伴尚未明确。研究人员采用活力、线粒体、铁、氧化应激、脂质过氧化及蛋

  
羟基红花黄色素A(HSYA)是红花(Carthamus tinctorius L.)的生物活性成分,具有抗氧化和细胞保护特性。在RSL3攻击的海马来源细胞中,Keap1是否为HSYA的候选互作伙伴尚未明确。研究人员采用活力、线粒体、铁、氧化应激、脂质过氧化及蛋白检测方法,考察了暴露于RSL3的小鼠HT22细胞。HSYA预处理后继续与RSL3共孵育,可维持细胞活力与线粒体超微结构,并减轻不稳定Fe2+蓄积、活性氧(ROS)及脂质过氧化。上述变化伴随SLC7A11与GPX4丰度升高、ACSL4降低,以及RSL3诱导的HO-1升高被减弱。HSYA处理还与核内Nrf2增加及经GAPDH归一化的p-GSK-3β(Ser9)信号升高相关。分子对接、DARTS、基于裂解液的CETSA及低振幅SPR响应提供了互补的探索性证据,与HSYA–Keap1相互作用相符。上述发现支持HSYA对铁死亡相关损伤的保护作用,并提示Keap1为候选互作伙伴。将细胞保护作用与探索性互作证据相结合,推进了HSYA的药理学表征,并为进一步研究其神经保护潜力提供了可检验的分子假说。
研究背景方面,氧化应激、铁稳态失衡与脂质过氧化参与包括阿尔茨海默病(AD)在内的神经退行性疾病中的神经元损伤,这些过程与铁死亡(一种依赖铁、以磷脂过氧化过度为特征的调节性细胞死亡)密切相关。实验性破坏神经元抗氧化防御(如谷胱甘肽过氧化物酶4,GPX4)可导致脂质氧化损伤与神经退行性变,因此有必要研究针对铁死亡相关细胞损伤具有保护作用的化合物。核因子E2相关因子2(Nrf2)调控抗氧化反应及谷胱甘肽代谢、铁稳态相关过程,其稳定性受多重机制控制:基础条件下Kelch样ECH相关蛋白1(Keap1)作为含CUL3泛素连接酶复合物的底物衔接蛋白促进Nrf2降解;糖原合成酶激酶3β(GSK-3β)则可通过不依赖Keap1的机制经β-TrCP促进Nrf2降解,二者属不同调控途径,不应被理解为单一线性Keap1–GSK-3β–Nrf2通路。HSYA在脑缺血/再灌注模型中显示保护作用,既往研究也报道其在氧糖剥夺PC12细胞及缺血性卒中模型中减轻铁死亡相关损伤;但HSYA在明确的RSL3攻击下对海马来源HT22细胞的保护是否伴随Keap1可能与之互作的互补证据,以及如何在不预设单一因果通路的前提下解读Keap1、GSK-3β与Nrf2变化,仍不清楚。为此研究人员开展本研究,得出HSYA减轻HT22细胞铁死亡相关损伤、并提供Keap1为候选互作伙伴的探索性证据的结论;其意义在于将细胞保护表型与探索性互作证据结合,推进HSYA药理学表征,并提供可检验的分子假说,同时明确指出未确立Keap1依赖的保护作用或Nrf2调控通路的必要性。
技术方法上,主要包括:网络药理学与生物信息学分析(SwissTargetPrediction、TCMSP、GeneCards、FerrDb靶点检索,STRING蛋白互作网络构建,GO、KEGG与Reactome富集分析);细胞活力(MTT)与形态学观察、透射电子显微镜(TEM)线粒体超微结构评价;细胞内活性氧(ROS)、不稳定Fe2+与脂质过氧化荧光检测及MDA、GSH/GSSG比值、SOD生化测定;免疫荧光与Western blot蛋白分析;分子对接;药物亲和响应靶点稳定性(DARTS)实验;基于裂解液的细胞热位移分析(CETSA);表面等离子共振(SPR)。细胞为小鼠海马来源HT22细胞(iCell,上海),人体靶点注释仅用于提供背景,未作为实验验证证据。
研究结果:第一,网络药理学与生物信息学分析鉴定出铁死亡相关HSYA靶点。HSYA预测靶点、AD相关基因与铁死亡相关基因交集得到14个人源注释靶点,富集分析包括铁死亡与KEAP1–NFE2L2通路;KEAP1并非交集命中,系依据通路注释及其在Nrf2调控中的既定作用而检测,该计算分析属假说生成性质。第二,HSYA在RSL3处理的HT22细胞中维持细胞活力并减轻线粒体结构损伤。HSYA单独1–50 μM不影响活力;RSL3(0.5 μM,24 h)使活力降至对照约40%,10与30 μM HSYA预处理并持续共孵育使活力分别升至81.3%与92.7%,故选用30 μM;TEM显示RSL3致线粒体皱缩、电子密度增高及嵴减少或破坏,HSYA组改变较轻。第三,HSYA减少铁蓄积、氧化应激与脂质过氧化。RSL3升高细胞内不稳定Fe2+与ROS信号,C11-BODIPY图像定性显示氧化荧光增强;HSYA降低Fe2+与ROS荧光强度,降低MDA、提高GSH/GSSG比值并部分恢复SOD活性,减弱RSL3诱导的HO-1升高;FTH1/GAPDH均值在两组攻击组均高于对照,但RSL3+HSYA组显著低于RSL3组(Tukey校正p=0.0484)。第四,HSYA升高SLC7A11与GPX4蛋白丰度并降低ACSL4。免疫荧光与Western blot均显示HSYA使GPX4升高、ACSL4降低,SLC7A11与GPX4丰度较单用RSL3升高(p<0.001),ACSL4降低(p<0.01)。第五,HSYA增加核内Nrf2蓄积及经GAPDH归一化的p-GSK-3β(Ser9)信号。免疫荧光与Western blot均显示HSYA后核内Nrf2增加;全细胞总Nrf2在RSL3后降低、HSYA后较单用RSL3升高,组间效应显著(F(2, 9)=24.54,p<0.001),三组两两比较均显著;HSYA还使Keap1丰度及经GAPDH归一化的p-GSK-3β(Ser9)信号升高,因未以总GSK-3β归一化,该结果不量化磷酸化比例或激酶活性,上述观察不建立Keap1、GSK-3β与Nrf2间的因果关系。第六,互补实验为HSYA–Keap1互作提供探索性支持。分子对接预测HSYA在Keap1口袋内的可能结合构象,对接评分为?9.828 kcal/mol;DARTS显示HSYA浓度依赖性保护Keap1免受Pronase E消化;基于裂解液的CETSA显示HSYA(30 μM)使可溶性Keap1表观热位移约7.7 °C;SPR响应随HSYA浓度(0.025–1.56 μM)升高,对晚期结合期均值进行单点拟合得表观KD约0.4 μM,但低振幅响应与未验证的平衡平台限制该估计,不能视为已验证的结合亲和力。
讨论部分总结:HSYA减轻HT22细胞RSL3诱导的损伤表型,活力与线粒体形态得以保持,不稳定Fe2+、ROS、脂质氧化与MDA降低;SLC7A11与GPX4升高、ACSL4降低与较低脂质过氧化负荷相符,因蛋白分别参与胱氨酸供给、脂质过氧化物解毒及可氧化脂肪酸掺入磷脂。本研究未使用ferrostatin-1、liproxstatin-1或铁螯合救援,故表型宜描述为铁死亡相关损伤而非确定性铁死亡。蛋白与定位结果提示抗氧化反应改变但未界定单一上游途径:p-GSK-3β以GAPDH而非总GSK-3β归一化,不量化相对磷酸化或激酶活性;GSK-3β/β-TrCP与Keap1/CUL3为Nrf2周转的不同途径,故p-GSK-3β信号与Keap1丰度应作为与核内Nrf2相关的平行观察,而非线性Keap1–GSK-3β–Nrf2级联的证据;总Keap1丰度不反映其底物结合或泛素连接酶功能;HO-1变化伴随氧化应激负荷降低,其功能贡献与因果作用未确立;FTH1的功能贡献亦待确定。Keap1作为候选互作伙伴,对接为预测性、裂解液稳定性实验不能确立完整细胞内的功能必要性,未建立Keap1依赖的保护或Nrf2泛素化改变。解释受模型与缺失扰动限制:人源注释网络预测与小鼠来源HT22细胞的部分蛋白及互作读数相比较,种间同源性不保证表达或通路行为等同;RSL3模型不重现AD细胞环境;铁死亡抑制剂救援、Keap1或Nrf2功能缺失、Keap1–Nrf2结合与泛素化实验及更强正交亲和力测定有待开展;原始靶点预测查询与富集背景基因全集不可得,计算结果为假说生成性。研究结论翻译:总之,HSYA减轻HT22细胞铁死亡相关损伤,并有Keap1互作的探索性证据;核内Nrf2蓄积与经GAPDH归一化的p-GSK-3β(Ser9)信号为相关观察,后者不量化相对总GSK-3β的磷酸化或激酶活性;未证明Keap1结合或Nrf2调控途径为保护作用所必需。
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