电激活纳米抗体生物传感器:按需检测技术的新突破

《ACS Sensors》:An Electrically Activated Nanobody Biosensor for On-Demand Detection

【字体: 时间:2026年02月08日 来源:ACS Sensors 9.1

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  本文介绍了一种创新型电激活纳米抗体(Nb)生物传感器平台,通过电响应寡肽(10EA)动态调控纳米抗体结合位点的暴露与屏蔽,实现从“关闭”(OFF)到“开启”(ON)状态的精准切换。该系统在复杂介质(如血清、细胞培养基)中表现出高灵敏度(pg/mL级)、宽动态范围(pg/mL–μg/mL)及可寻址的多重检测能力,为生物制造、医疗诊断和环境监测提供了可编程、高性能的分子检测新范式。

  
Biosensor Fabrication
该按需传感策略的核心原理是利用金电极表面构建混合单层,由纳米抗体识别元件和寡肽响应单元组成。通过寡肽的净电荷,在施加电场下控制其相对于金 transducer 表面的取向,从而屏蔽(OFF)或暴露(ON)纳米抗体的抗原结合位点。具体制备过程包括:首先在金电极上自组装11-巯基十一烷酸(11-MUA)单层(SAM),提供羧基用于后续偶联;然后通过碳二亚胺化学一步法共固定纳米抗体和寡肽。研究选用增强型绿色荧光蛋白(eGFP)纳米抗体作为模型识别元件,其靶抗原eGFP分子量适中(<30 kDa)。寡肽设计包含生理pH下带负电的谷氨酸残基,以在施加电位下实现构象控制,并通过末端β-丙氨酸残基实现定向偶联。初步测试发现,较短的7聚谷氨酸(7EA)寡肽无法完全屏蔽纳米抗体结合位点,因此选用更长的10聚谷氨酸(10EA)以确保在静态(开路电位,OCP)下实现完全的OFF状态。
电化学阻抗谱(EIS)用于确认电极功能化成功,通过监测氧化还原对[Fe(CN)6]3?/4?在电极-溶液界面的电子转移。数据显示,随着10EA比例增加,电荷转移电阻(Rct)显著上升,例如纯纳米抗体表面Rct为1204 ± 191 kΩ,而1:2 Nb:10EA比例下升至2365 ± 621 kΩ,这归因于带负电的寡肽排斥氧化还原探针,阻碍电子转移。
Nanobody OFF to ON Activation
选择+0.3 V作为激活电位,因其在肽和硫醇SAM的电化学稳定窗口内,能有效诱导寡肽塌陷而不破坏单层完整性。在OCP下,1:2 Nb:10EA传感器对eGFP的响应为19 ± 6%,表明结合位点被屏蔽(OFF状态);施加+0.3 V后,响应降至?78 ± 6%(p < 0.01),激活效率达80%。更高比例(1:5)的寡肽会形成空间屏障,阻碍构象变化,而1:1比例则无法完全屏蔽结合位点。特异性实验显示,非特异性蛋白RFP在+0.3 V下响应显著低于eGFP(p < 0.01),且电位应用未引起表面降解,证实响应源于抗原特异性结合而非电场长程效应。
Sensor Characteristics
1:2 Nb:10EA传感器表面亲水性适中(前进接触角66 ± 5°),厚度为3.0 ± 0.4 nm。X射线光电子能谱(XPS)证实混合单层形成,显示纳米抗体表面氮比例更高,而硫比例降低表明寡肽占据部分表面空间。计算表面Nb:10EA比例为7:1,高于溶液比例(1:2),源于纳米抗体通过多个赖氨酸残基更易固定,而带负电的寡肽因静电排斥吸附效率较低。
Evaluation of Biosensor Performance
在PBS和RPMI培养基中,传感器均保持从OFF到ON的激活能力。电激活传感器灵敏度显著提升,检测限(LoD)达4.5 pg/mL(PBS)和5.0 pg/mL(RPMI),动态范围扩展至pg/mL–μg/mL(较纯纳米抗体传感器扩大100倍)。这得益于寡肽引入的额外空间减少了纳米抗体拥挤,增强结合位点可及性。在干细胞培养上清和胎牛血清(FBS)中,传感器仍能有效区分OFF/ON状态,尽管10% FBS会引入噪声,但特异性未受影响。
On-Demand Sensing in a Multiarray
利用丝网印刷多电极阵列(SPE)构建可独立寻址的传感器平台。在6小时内,依次激活四个工作电极(WE),每个电极在+0.3 V下特异性检测eGFP,而OCP电极保持OFF状态。结果证实,寡肽屏蔽有效防止非特异性结合,实现时序可控的多重检测。
该电激活纳米抗体平台通过寡肽动态门控机制,实现了高性能、可编程的分子检测,在复杂生物环境中具有广阔应用前景。
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