利用长读长基因组测序技术,重新完成了当代黑腹果蝇(Drosophila simulans)中沃尔巴克氏体(Wolbachia)内共生菌的完整组装

《Microbiology Resource Announcements》:Complete de novo assembly of Wolbachia endosymbiont of contemporary Drosophila simulans using long-read genome sequencing

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年05月01日 来源:Microbiology Resource Announcements 0.6

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   摘要 我们呈现了一种高质量的、全新的 Wolbachia pipientis(wRi Merrill 23,OZ411647)基因组组装结果,这种细菌是 Drosophila simulans (D. simulan

  




摘要


我们呈现了一种高质量的、全新的 Wolbachia pipientis(wRi Merrill 23,OZ411647)基因组组装结果,这种细菌是 Drosophila simulans (D. simulans) 的α-变形菌内共生体。该基因组是通过使用长读长测序技术对 2023 年 10 月从加州大学圣克鲁兹分校 Merrill 学院收集的感染了 wRi 的 D. simulans 胚胎进行测序获得的。







公告


Wolbachia pipientis 可感染多种节肢动物和线虫,通过细胞质不相容性(CI)、杀死雄性以及恢复生育能力等方式改变宿主表型(1, 2)。Riverside 菌株(wRi)于 20 世纪 80 年代首次在加州 Drosophila simulans (D. simulans) 中被发现(3),由于其极强的细胞质不相容性而迅速在整个州范围内传播(4)。尽管该菌株具有重要意义(5),但目前唯一的参考基因组仍基于 1984 年的 wRi 版本(3, 6)。在这里,我们提供了基于 2023 年 10 月在加州大学圣克鲁兹分校 Merrill 学院 Alan Chadwick Garden 收集的现代 D. simulans 样本的完整 de novo wRi 基因组组装结果。

为了获得现代的 wRi 基因组序列,我们收集了野生 D. simulans 飞虫,建立了纯雌系,并对感染了 wRi 的胚胎进行了测序。我们通过放置装有香蕉诱饵的瓶子吸引雌虫约 5 天,然后将怀孕的雌虫收集到白色培养基上。后代孵化后,通过表型鉴定雄性并使用 silf-F/R 引物通过 PCR 鉴定 D. simulans 与 D. melanogaster 的区别(7),并使用 wsp_1F/592R 引物确认 wRi 的存在(8)。我们使用 Wizard HMW DNA Extraction Kit(Promega)提取了感染 wRi 的胚胎的 DNA,并使用 Native Barcoding Kit V14(SQK-NBD114-24)制备文库,未进行大小筛选。这些文库在 Nanopore MinION Mk1B 测序仪上使用 R10 流式细胞(FLO-MIN-114)和 MinKNOW v23.07.8 软件(采用自适应采样快速模式)进行测序,以去除 D. simulans 的序列(GCF_016746395.2),最终获得了 4.26M 个读段(N50 749 bp,20 h),并使用 Dorado(v0.7.3,hac 模式,--min-qscore 10)进行碱基调用。过滤掉长度超过 3 kb 的非宿主序列后(剩余 93K 个读段,N50 10.5 kb),我们根据 Jacobs 和 Nakamoto 等人的方法(9,10)使用 Flye 工具组装了 wRi 基因组,得到了一个覆盖率为 30× 的 1.26 Mb 环状基因组。Flye 工具还确定了基因组的环化情况(最小重叠长度为 4,000 bp),并且基因组没有发生旋转。

为了进一步完善基因组组装,我们从整个感染了 wRi 的 D. simulans 飞虫(Merrill 23 菌株)中获得了 Illumina 的短读长全基因组测序数据。Illumina 文库是使用基于 Tn5 的标签化协议制备的(11)。Tn5 酶(Tn5R27S、E54K 和 L372P)来自加州大学伯克利分校的 QB3 MacroLab。标签化过程同时切割了基因组 DNA 并连接了适配子序列(Tn5-A: FC-121-1030、Tn5-B: FC-121-1031 和 Tn5-rev;IDT)。文库使用 Nextera XT Index Kit v2(i5/i7 适配子,Illumina)和 KAPA HiFi(Roche)进行索引和扩增,然后在 NovaSeqX Plus(2 × 150 bp)上进行测序。使用 fastp v1.0.1(11)去除测序适配子和低质量区域,再使用 Pilon v1.24(12)对基因组进行优化(图 1)。我们使用 BUSCO v5.7.0(13)(rickettsiales_odb10)评估了优化后的基因组完整性,达到 99.2%;使用 Prokka v1.1.1(14)(kingdom:bacteria)对基因组进行了注释(表 1);并使用 Proksee v1.1.2(15)计算并可视化了基因组的 GC 含量和 GC 偏斜(图 1)。除非另有说明,否则使用默认参数。




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