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慢病毒介导的细胞色素P450 2D6在HepaRG细胞中的表达:体外异生物质生物转化及细胞对嵌合病毒mRNA反应的新方法
《Archives of Toxicology》:Lentiviral-mediated expression of cytochrome P450 2D6 in HepaRG cells: new means for in vitro xenobiotic biotransformation and cellular response to chimeric viral mRNA
【字体: 大 中 小 】 时间:2026年05月23日 来源:Archives of Toxicology 6.9
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摘要人类HepaRG?细胞系是毒理学研究中最接近原代肝细胞(PHH)的替代模型。然而,分化的HepaRG?细胞表达的细胞色素P450 2D6(CYP2D6)水平较低,而CYP2D6参与许多药物的生物转化过程。在本研究中,使用编码人类CYP2D6和GFP蛋白的慢病毒颗粒对HepaR
人类HepaRG?细胞系是毒理学研究中最接近原代肝细胞(PHH)的替代模型。然而,分化的HepaRG?细胞表达的细胞色素P450 2D6(CYP2D6)水平较低,而CYP2D6参与许多药物的生物转化过程。在本研究中,使用编码人类CYP2D6和GFP蛋白的慢病毒颗粒对HepaRG?前体细胞进行了转导。由此产生的转基因HepaRG?细胞能够稳定表达具有催化活性的CYP2D6,其表达水平与快速代谢者的原代肝细胞(PHH)及HepaSH?肝细胞中的水平相当。在CYP2D6转基因HepaRG?细胞中,曲马多被代谢为N-脱甲基曲马多和O-脱甲基曲马多,这与人体内的情况一致;而亲本HepaRG?细胞仅产生N-脱甲基曲马多。经哌赫西林处理后,表达CYP2D6的HepaRG?细胞表现出更高的IC50值,并且线粒体损伤程度低于亲本细胞。转录组分析显示,CYP2D6的表达并未显著影响细胞的增殖和分化能力,也未损害关键的肝细胞特异性功能。不过,我们发现了一些在转基因细胞中上调的基因,包括NXF3和TRIM63。通过CRISPR/Cas9介导的GFP和/或CYP2D6序列敲低实验,我们证实NXF3 mRNA和蛋白质的诱导是由编码GFP和CYP2D6的慢病毒mRNA引起的,而非基因组转基因整合所致。综上所述,这些发现表明CYP2D6转基因HepaRG?细胞是一种优化且可靠的类肝细胞模型,适用于研究CYP2D6底物的代谢和毒性。我们的结果还支持这样一个假设:NXF3基因可能是细胞对慢病毒嵌合mRNA表达反应的标志物。
人类HepaRG?细胞系是毒理学研究中最接近原代肝细胞(PHH)的替代模型。然而,分化的HepaRG?细胞表达的细胞色素P450 2D6(CYP2D6)水平较低,而CYP2D6参与许多药物的生物转化过程。在本研究中,使用编码人类CYP2D6和GFP蛋白的慢病毒颗粒对HepaRG?前体细胞进行了转导。由此产生的转基因HepaRG?细胞能够稳定表达具有催化活性的CYP2D6,其表达水平与快速代谢者的原代肝细胞(PHH)及HepaSH?肝细胞中的水平相当。在CYP2D6转基因HepaRG?细胞中,曲马多被代谢为N-脱甲基曲马多和O-脱甲基曲马多,这与人体内的情况一致;而亲本HepaRG?细胞仅产生N-脱甲基曲马多。经哌赫西林处理后,表达CYP2D6的HepaRG?细胞表现出更高的IC50值,并且线粒体损伤程度低于亲本细胞。转录组分析显示,CYP2D6的表达并未显著影响细胞的增殖和分化能力,也未损害关键的肝细胞特异性功能。不过,我们发现了一些在转基因细胞中上调的基因,包括NXF3和TRIM63。通过CRISPR/Cas9介导的GFP和/或CYP2D6序列敲低实验,我们证实NXF3 mRNA和蛋白质的诱导是由编码GFP和CYP2D6的慢病毒mRNA引起的,而非基因组转基因整合所致。综上所述,这些发现表明CYP2D6转基因HepaRG?细胞是一种优化且可靠的类肝细胞模型,适用于研究CYP2D6底物的代谢和毒性。我们的结果还支持这样一个假设:NXF3基因可能是细胞对慢病毒嵌合mRNA表达反应的标志物。