《Transboundary and Emerging Diseases》:A Rapid p72-Targeting Colloidal Gold Immunochromatographic Strip for African Swine Fever Virus Detection
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非洲猪瘟(ASF)是由非洲猪瘟病毒(ASFV)引起的一种致死性、出血性、高度接触性传染病。目前,ASFV已在中国演化出多种毒力水平的变异株,使流行病学形势日趋复杂。在缺乏有效商业化疫苗的背景下,开发快速、准确的诊断方法成为防控重点。本研究通过灭活的ASFV免疫
非洲猪瘟(ASF)是由非洲猪瘟病毒(ASFV)引起的一种致死性、出血性、高度接触性传染病。目前,ASFV已在中国演化出多种毒力水平的变异株,使流行病学形势日趋复杂。在缺乏有效商业化疫苗的背景下,开发快速、准确的诊断方法成为防控重点。本研究通过灭活的ASFV免疫小鼠制备单克隆抗体(mAb),筛选出9株靶向p72蛋白的新mAb,并结合实验室前期已有的11株抗p72 mAb,建立用于ASFV检测的胶体金免疫层析试纸条。通过交叉配对分析确定最优抗体组合:ASFV-3为胶体金标记抗体,P72-6为捕获抗体。该试纸条可有效检测不同基因型ASFV,对基因Ⅰ型和Ⅱ型的检测限(LOD)分别为102.50TCID50/反应和相应水平,与五种常见猪病原(PCV、PRRSV、PRV、PEDV、TGEV)无交叉反应,与市售试纸条符合率达93.33%。研究表明,研究人员成功开发了一种快速、灵敏、特异的靶向ASFV p72蛋白的胶体金免疫层析试纸条,操作简便、无需专用设备,适用于现场检测,为ASF田间监测与早期诊断提供了实用工具。
论文解读:一种靶向p72的快速非洲猪瘟病毒胶体金免疫层析试纸条
研究背景与意义
非洲猪瘟(African Swine Fever, ASF)是由非洲猪瘟病毒(African Swine Fever Virus, ASFV)引起的一种高度致死性、急性出血性传染病,主要感染家猪和野猪,对全球养猪业构成重大威胁。ASFV目前无安全有效的商业化疫苗和抗病毒药物,防控依赖严格的生物安全与精准的扑杀策略。自2018年传入中国以来,ASFV已演化出基因Ⅱ型强毒株、中等毒力株、基因Ⅰ型低毒力株及Ⅰ/Ⅱ重组株,流行态势复杂化。虽然实时荧光定量PCR(qPCR)是公认的核酸确诊金标准,但其依赖精密仪器与专业人员,难以适应养殖场、屠宰场及边境口岸等现场快速初筛需求。因此,开发无需设备、操作简便、灵敏度与特异性俱佳的现场抗原检测技术具有重要现实意义。p72蛋白由B646L基因编码,是ASFV主要衣壳蛋白,占病毒粒子总质量约33%,以三聚体形式暴露于病毒表面,各流行株间高度保守且免疫原性强,是诊断与疫苗设计的理想靶标。基于此,研究人员以p72为靶标,通过制备新型单克隆抗体(mAb)并优化抗体配对,构建了胶体金免疫层析试纸条(Colloidal Gold Immunochromatographic Strip, CG-ICS),旨在提供一种适合现场使用的ASF快速抗原检测工具。本论文发表于《Transboundary and Emerging Diseases》。
主要关键技术方法概述
研究人员采用灭活全病毒免疫SPF BALB/c小鼠,通过杂交瘤技术制备单克隆抗体,并利用间接免疫荧光(IFA)、Western blot及间接ELISA(iELISA)鉴定其靶标为p72或p30蛋白。以天然三聚体p72蛋白及前期实验室保存的11株抗p72 mAb为库,通过大量交叉配对实验筛选层析最优组合。胶体金颗粒(约40 nm)通过晶种生长法制备,表征后与优选检测抗体偶联,优化pH与用量;在硝酸纤维素(NC)膜上分别包被捕获抗体与羊抗鼠IgG作为T线(检测线)与C线(质控线),组装样品垫、结合垫、NC膜与吸水垫于PVC背板。研究人员以ASFV基因Ⅰ型、Ⅱ型及Ⅰ/Ⅱ重组株为模型,通过系列稀释测定检测限(LOD);以PCV、PRRSV、PRV、PEDV、TGEV等常见猪病原评价特异性;通过多批次、多重复临床样本(口腔/肛门拭子、组织匀浆)对比qPCR与市售试纸条,评估重现性与临床符合率;部分抗体亲和力通过表面等离子共振(SPR)分析。临床样本来源于HLJ/18株感染SPF猪的纵向监测及健康对照。
研究结果
3.1 动物免疫与抗原制备
研究人员以β-丙内酯灭活ASFV HLJ/18-7GD株免疫小鼠,通过蔗糖密度梯度离心纯化病毒,电镜确认完整病毒颗粒。免疫后血清iELISA显示强抗p72应答,选取效价最高的5号小鼠进行细胞融合。
3.2 单克隆抗体制备与鉴定
融合筛选获得15株杂交瘤,IFA均显示感染细胞特异性荧光。Western blot显示14株识别感染细胞裂解物,其中9株靶向p72(B646L),5株靶向p30(CP204L),1株(ASFV-9)靶标未明。亚型分析显示轻链均为κ型,重链涵盖IgG1、IgG2a、IgG2b、IgG3。部分抗p72 mAb在天然与变性条件下识别略有差异,反映表位构象特征。
3.3 p72基免疫层析试纸条的建立
研究人员将新制备的全病毒源抗p72 mAb与实验室原有p72三聚体免疫源mAb库进行交叉配对(捕获-检测组合筛查)。通过可视化T线信号强度评估,最终确定ASFV-3(全病毒源,IgG2a)为胶体金标记检测抗体,P72-6(重组p72三聚体源,IgG1)为NC膜捕获抗体。SPR显示ASFV-3亲和常数为4.32×10?9M,P72-6为2.61×10?8M。胶体金粒径约43.6 nm(PDI 0.097),偶联效率90.8%±1.2%。优化后条件:标记pH 7.5,ASFV-3 20 μg/mL,T线P72-6 1.5 mg/mL,C线羊抗鼠IgG 2.0 mg/mL。试纸条判读规则:C线与T线均显色为阳性,仅C线为阴性,C线不显色为无效。
3.4 SPR亲和力测定
研究人员以重组p72蛋白为配体,测定5株表现优良抗体的动力学。ASFV-3具最高亲和力(ka=1.69×105M?1s?1,kd=7.29×10?4s?1),适合液相快捕;P72-6解离稍快(kd=1.11×10?2s?1),适合固相稳定捕获,与功能分工一致。
3.5 特异性评估
以高滴度PCV-2d、PRRSV HuN4、PRV HeN1、PEDV LN-NY、TGEV JMS及ASFV HLJ/HRB1/20测试,仅ASFV样本出现T+C双线,其余病原仅C线,表明试纸条对ASFV高度特异,无交叉反应。
3.6 敏感性评估
对HLJ/HRB1/20(基因Ⅱ)、SD/DY-Ⅰ/21(基因Ⅰ)、JS/LG/21(重组Ⅰ/Ⅱ)进行10倍系列稀释,三次独立重复检测限分别为102.50、102.42、102.30TCID50/反应,综合LOD定义为102.50TCID50/反应。同期市售试纸条对HLJ/HRB1/20的LOD为104.20TCID50/反应,新建试纸条灵敏度约提升50倍;对应稀释下qPCR均为阳性(Ct 31–34)。
3.7 重现性测试
选取qPCR阳性临床样本P1–P5与阴性N1–N5,用三批次试纸条各重复3次。结果显示所有阳性样本均3/3阳性,阴性样本均0/3阳性,批内与批间一致,表明试纸条具良好重现性。
3.8 临床样本检测
以HLJ/18感染SPF猪的口腔/肛门拭子(3、5、7、9 dpi)及组织(脾、肺、扁桃体、下颌及肠系膜淋巴结等)共90份样本,并行qPCR、新建试纸条与市售试纸条检测。与市售试纸条比,总符合率93.33%(46一致阳性,38一致阴性,6例新建阳性而市售阴性,无假阳)。临床敏感性100.00%,特异性88.36%。动态监测中,新建试纸条在5 dpi肛门拭子即检出1例阳性,而市售试纸条多从7 dpi起检出,提示更早检出的潜力。
讨论与结论总结
研究人员在讨论中指出,全病毒免疫筛选的mAb更易识别天然构象表位,适合作为液相“捕捉手”;重组蛋白免疫的mAb稳定性好,适合作为固相“陷阱”,这种“全病毒源快捕+重组蛋白源稳捕”的配对策略可协同提升敏感与特异。本研究建立的抗体库涵盖多种IgG亚型,其中ASFV-3(IgG2a)高亲和力、快结合,P72-6(IgG1)稳定固相捕获,最优配对兼顾层析动力学与信号稳定性。SPR以重组p72替代完整病毒颗粒测定亲和力,避免了大颗粒病毒的质量传输限制,数据(χ2<0.5)与1:1 Langmuir模型吻合,且试纸条对完整病毒的实测LOD验证了其可靠性。该试纸条对国内主流流行株(基因Ⅰ、Ⅱ及重组株)均有效,分析31条2022–2026年p72序列发现国内流行株存在S126A、V376I、A383P变异,但所检三株均携带这些突变且被测抗体仍有效;香港株R392H未实验验证,未来需持续监测p72表位变异对免疫诊断的影响。相比qPCR,胶体金法灵敏度仍有差距,极低病毒载量可能漏检,长期稳定性与便携式读数定量是未来方向。
研究结论翻译
综上所述,研究人员设计了一种基于ASFV p72蛋白单克隆抗体的胶体金免疫层析检测方法,与市售胶体金检测试纸条相比具有良好的特异性、敏感性和准确性。此外,该方法操作简便,无需复杂样品前处理,适用于ASFV的现场快速初筛。