扇贝血淋巴介导的麻痹性贝类毒素与河豚毒素动力学

《Marine Drugs》:Hemolymph-Mediated Dynamics of Paralytic Shellfish Toxins and Tetrodotoxin in Scallops

【字体: 时间:2026年06月10日 来源:Marine Drugs 5.4

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  为探究麻痹性贝类毒素(PSTs)与河豚毒素(TTX)在扇贝体内的动态变化规律,研究人员对日本东部养殖的虾夷扇贝(Yesso scallop)与赤坂扇贝(Akazara scallop)的血淋巴上清液(hemolymph-S)及消化腺中的PSTs和TTX进行了系

  
为探究麻痹性贝类毒素(PSTs)与河豚毒素(TTX)在扇贝体内的动态变化规律,研究人员对日本东部养殖的虾夷扇贝(Yesso scallop)与赤坂扇贝(Akazara scallop)的血淋巴上清液(hemolymph-S)及消化腺中的PSTs和TTX进行了系统分析。在2025年4月22日至2025年10月21日期间采集的虾夷扇贝样本中,血淋巴-S中的PST浓度为消化腺中浓度的1.6%–17%(mol/mol),二者呈显著正相关(r = 0.753)。然而,两个组织中的PST组成存在明显差异:血淋巴-S中的PST组成初期与实验室培养的甲藻相似,这与4月下旬典型产毒甲藻赤潮的暴发时间相吻合。随后,血淋巴-S中的PST组成逐渐趋同于消化腺的组成,表明毒素先在消化腺中发生化学转化,继而释放进入血淋巴。11β-OSO3H毒素(C2、GTX4、GTX3)与11α-OSO3H毒素(C1、GTX1、GTX2)之间的化学平衡比值亦呈现类似的季节性变化趋势。TTX在2025年8月28日至2026年1月27日期间采集的两种扇贝的两个组织中均有检出,其中血淋巴-S中的TTX浓度为消化腺中浓度的0.5%–5.4%(mol/mol)。上述结果表明,这些毒素由产PST甲藻及特定含TTX生物体被扇贝摄取后,主要富集于消化腺,随后部分进入血淋巴并在体内循环分布。
本研究聚焦于扇贝体内两种重要海洋生物毒素——麻痹性贝类毒素(PSTs)与河豚毒素(TTX)的动力学过程,首次对血淋巴中的这两种毒素进行了定性定量分析,并与消化腺中的检测结果进行了系统比较,为理解毒素的摄入、转移、器官蓄积及结构转化机制提供了重要 insights(见解)。该论文发表于《Marine Drugs》期刊。

研究背景方面,PSTs与TTX均为强效电压门控钠离子通道阻断剂。PSTs包含超过50种类似物,主要分为石房蛤毒素类(STXs)、膝沟藻毒素类(GTX1-6)、C-毒素类(C1-C4)及M-毒素类,主要由亚历山大藻属(Alexandrium)与链状裸甲藻(Gymnodinium catenatum)等产毒甲藻产生,并通过双壳贝类如扇贝、牡蛎和贻贝等富集, globally regulated(全球监管)以防止致死性食物中毒事件。近年来PSTs的生物合成研究已取得显著进展。TTX传统上被称为河豚毒素,在欧洲、新西兰、中国及日本等地的双壳贝类中均有低浓度检出,欧洲食品安全局(EFSA)已 established(建立)44 μg/kg的监管阈值。然而,贝类中TTX的来源尚不明确。

在日本东部地区,双壳贝类通常在4月中旬至7月下旬甲藻赤潮期间呈现高PST浓度,其中亚历山大藻属(Alexandrium spp.)通常从4月中旬开始暴发,至10月左右结束。相反,TTX在扇贝中的蓄积峰值则出现在8月下旬至10月或11月。尽管前期研究如Li等关于扇贝基因组的研究、Liu等及Li等关于虾夷扇贝不同组织中PSTs生物转化的报道,已揭示消化腺和肾脏在毒素转化中的作用,但血淋巴作为毒素循环媒介的相关分析数据尚未见报道。鉴于血淋巴在无脊椎动物中的功能与脊椎动物的血液和淋巴相当,本研究首次系统分析了循环体液中的毒素动态。

研究样本来源于日本东部海域10-30米水深养殖的活体虾夷扇贝(规格10.5–14.1 × 12.5–15.5 cm,采集于2025年4月22日、5月20日、6月17日及10月21日)与赤坂扇贝(规格7.5–9.3 × 7.2–8.9 cm,采集于2025年8月28日及2026年1月27日),每批次5只(2025年8月28日赤坂扇贝n=1,血淋巴样本由两只个体混合)。研究采用的关键技术方法包括:高效液相色谱-荧光检测法(LC-FLD)用于PSTs和TTX的定量分析;亲水作用色谱-串联质谱联用法(HILIC-LC-MS/MS,多反应监测MRM模式)用于TTX检测;高分辨亲水作用色谱-四极杆飞行时间质谱联用法(HR-HILIC-QTOF-MS)用于PSTs和TTX的精确鉴定。样本前处理采用活性炭柱纯化,消化腺样本需经乙酸酸化并沸水浴加热处理,TTX分析额外采用BioRex70弱阳离子树脂纯化。

研究结果部分:

2.1 血淋巴-S蛋白浓度测定

通过DC蛋白测定法测定,2025年4月22日采集的两只虾夷扇贝血淋巴-S蛋白浓度分别为3.3和3.8 mg/mL;2026年1月27日采集的两只赤坂扇贝血淋巴-S蛋白浓度分别为2.3和2.4 mg/mL,证实血淋巴-S中含有蛋白质而非仅含海水。

2.2 血淋巴-S中PSTs和TTX的定性分析

通过离心分离血淋巴-S与血细胞沉淀,血细胞沉淀中PSTs和TTX浓度低于检测限。利用HR-HILIC-LCMS的保留时间及精确分子量(m/z),在虾夷扇贝血淋巴-S中鉴定出C2、GTX1、GTX2(低于定量限)、GTX4等PSTs组分。在赤坂扇贝血淋巴-S(2025年9月16日采集)中通过HILIC-LCMS(MRM模式)检出TTX(0.18 nmol/mL),而PSTs低于检测限。进一步通过HR-HILIC-LCMS在虾夷扇贝(2025年10月21日)和赤坂扇贝(2025年8月28日)的血淋巴-S中鉴定TTX,通过准分子离子[M+H]+(m/z 320.1084)、脱水离子(m/z 302.0904)及特征产物离子(m/z 162.0614)进行确认。

2.3 血淋巴-S与消化腺中PSTs和TTX的定量分析

采用LC-FLD定量PSTs,LC-FLD与HILIC-LCMS(MRM)联合定量TTX。结果显示,虾夷扇贝血淋巴-S中PST浓度为消化腺的1.6%–17%(mol/mol),二者呈正相关(y = 0.0223x + 0.8304, r = 0.753)。赤坂扇贝所有样本血淋巴-S中PSTs均低于定量限,但消化腺中有低浓度检出。TTX在虾夷扇贝(2025年10月21日)和赤坂扇贝(2025年8月28日及2026年1月27日)的两个组织中均有检出,血淋巴-S与消化腺浓度比值为0.5%–5.4%。

2.4 血淋巴-S与消化腺中PST毒素图谱的比较及与培养亚历山大藻的比较

1965年4月22日样本中,消化腺以GTX1/4为主(57%),而血淋巴-S以C1/C2为主(56%),后者与同期暴发的主要产毒种Cochlodinium catenella(Group I)的PST组成高度相似。5月20日样本中两个组织的PST组成趋于一致;此后GTX2/3比例逐渐上升,而C1/C2和GTX1/4比例下降。

2.5 消化腺与血淋巴中11β-OSO3H与11α-OSO3H毒素比例的比较

4月22日和5月20日采集的虾夷扇贝血淋巴-S中,11β-OSO3H毒素(C2、GTX4、GTX3)占主导,与亚历山大藻细胞提取物的组成相似;而消化腺样本及6月17日和10月21日血淋巴-S样本中则以11α-OSO3H毒素(C1、GTX1、GTX2)为主。这一转变反映了毒素从初始摄入状态向化学平衡状态的转化过程。

讨论部分总结:

本研究首次对双壳贝类血淋巴中的PSTs和TTX进行了定性定量分析,揭示了毒素在体内的动态循环规律。虾夷扇贝血淋巴-S中PST浓度与消化腺呈正相关,且为消化腺浓度的1.6%–17%,表明毒素经消化腺处理后部分进入循环系统。

关于PST组成的时间演变,4月22日(甲藻赤潮初期)血淋巴-S的PST图谱与亚历山大藻高度相似,以C2和GTX4等11β-OSO3H毒素为主,而消化腺中则以GTX1为主。随着季节推移,血淋巴-S组成逐渐趋同于消化腺,以GTX2/3为主。这一转变揭示了毒素在消化腺中经历了从C2向GTX2/3的转化,即13-氨甲酰基上的N-SO3H水解为NH2的过程。

11β-OSO3H与11α-OSO3H的C-11差向异构体平衡分析进一步支持了上述发现。4月22日和5月20日血淋巴-S中11β-OSO3H毒素占主导,与甲藻细胞提取物一致;而6月17日后血淋巴-S组成与消化腺一致,以11α-OSO3H毒素为主。由于11α-OSO3H毒素具有更高的化学稳定性,甲藻产生的11β-OSO3H毒素会自发转变为11α-OSO3H形式。血淋巴组成在6月后的转变表明,此时循环系统中的毒素已经过消化腺的充分转化并达到化学平衡。值得注意的是,即使在4月22日的初始阶段,消化腺中的毒素图谱也已相对于甲藻发生了转化,表明存在快速的酶促或非酶促生物转化过程,这与已报道的贻贝组织中的现象一致,可能涉及胃内的细胞外消化或消化腺内的细胞内消化机制。

样本处理方式的差异(消化腺经乙酸酸化和加热,血淋巴-S未经处理)可能对PST组成产生部分影响。初步评估表明,酸化加热可导致C2向C1、GTX4向GTX1的部分转化,但不会影响C1/C2向GTX2/3的转化或脱氨甲酰基生成dcSTX、neoSTX和STX的过程。

TTX在8月下旬至1月下旬的扇贝样本中检出,与以往报道的TTX蓄积季节(8月下旬至10月或11月)相符。本研究首次报道了1月下旬赤坂扇贝中TTX的检出。虽然TTX的确切来源尚待阐明,但可能的来源包括多触手扁虫(Planocera multitentaculata)及丝带状线虫(Cephalothrix simula)。

基于本研究结果并结合Li等关于扇贝基因组及磺基转移酶参与毒素转化的报道,研究人员提出了毒素动态模型:滤食过程中,PSTs和TTX通过 mantle(外套膜)形成的入水孔摄入,经鳃输送至消化腺进行消化处理;部分毒素进入血淋巴,在全身循环后分布至肾脏、肌肉、外套膜、性腺等器官,最终部分排出体外。血淋巴在毒素的体内循环和调节中发挥重要作用。此前Zheng等报道了贻贝中PSTs的代谢转化,涉及消化腺、外套膜等可食用组织。本研究为进一步验证该假设模型,未来需对其他器官中的毒素分布进行分析。

研究结论翻译:

本研究对日本东部养殖的虾夷扇贝和赤坂扇贝的血淋巴中的PSTs和TTX进行了分析。这些毒素在消化腺浓度升高的特定季节于血淋巴-S中被检出。虾夷扇贝消化腺和血淋巴-S中的PST浓度呈正相关。在甲藻赤潮暴发初期,虾夷扇贝血淋巴-S中的PST组成与产毒甲藻相似,但与消化腺中的组成不同。随后,血淋巴-S中的毒素图谱转变并趋同于消化腺的组成。基于这些发现,研究人员提出了PSTs和TTX的动态模型:摄入的部分毒素从产毒生物体直接快速流入血淋巴;另一部分毒素先被运送至消化腺进行消化,之后部分进入血淋巴并在扇贝全身循环。
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