克服批次变异性:一种基于化学成分明确XRS的绵羊体外胚胎生产系统

《Veterinary Medicine International》:Overcoming Batch Variability: A Chemically Defined XRS-Based System for Ovine In Vitro Embryo Production

【字体: 时间:2026年06月10日 来源:Veterinary Medicine International 2

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  传统的绵羊胚胎体外成熟(IVM)和体外受精(IVF)系统依赖胎牛血清(FBS)和发情绵羊血清(ESS),这些血清存在批次变异性、伦理问题及供应限制等挑战。本研究评估了XRS Standard血清替代物作为绵羊体外胚胎生产(IVEP)中FBS和ESS的完全替代品

  
传统的绵羊胚胎体外成熟(IVM)和体外受精(IVF)系统依赖胎牛血清(FBS)和发情绵羊血清(ESS),这些血清存在批次变异性、伦理问题及供应限制等挑战。本研究评估了XRS Standard血清替代物作为绵羊体外胚胎生产(IVEP)中FBS和ESS的完全替代品。采用2×2析因设计,生成所有四种可能的IVM/IVF组合——FBS/ESS、FBS/XRS、XRS/ESS和XRS/XRS(每种添加剂在IVM和IVF培养基中均为10% v/v)。FBS/ESS组合作为传统对照组。量化了卵裂率(第2天)和囊胚发育率(第7天)。XRS/XRS组达到22.45%的囊胚率——是对照组(11.00%,p < 0.01)的2.0倍。FBS/XRS组显示出中等效果(15.43%),而添加ESS的组别发育能力降低(分别为12.71%和11.00%)。各组间总囊胚细胞数(122.1±22.3 vs. 126.0±22.4,p > 0.05)保持可比,表明胚胎质量得以保留。该方案在维持发育能力的同时消除了动物源性成分,符合3Rs原则(减少、优化、替代),并为商业化绵羊胚胎生产提供了可扩展的解决方案。
**研究背景与问题**
绵羊体外受精(IVF)是加速遗传增益和繁殖效率的关键技术。传统方案在成熟培养基中添加胎牛血清(FBS)以促进卵母细胞成熟,在受精培养基中添加发情绵羊血清(ESS)以促进精子获能。然而,依赖动物源性血清带来了关键限制:批次间变异性、供应链不稳定以及生物安全风险,阻碍了标准化和大规模应用。例如,ESS通过胆固醇外排和Ca2+内流机制诱导获能,但高浓度会上调凋亡转录本(如BAX和caspase-3),同时损害胚胎质量。将血清纳入胚胎培养系统已不再被认为可接受。因此,亟需开发不含动物源成分且能维持发育能力的无动物替代品。XRS Standard(XRSS10-500,杭州西锐无限生物科技有限公司)是一种新型溶液,旨在最小化动物源性输入并提高批次一致性。虽然FBS通常以10%(v/v)用于细胞系和原代细胞,初步剂量-反应实验确定10%(v/v)XRS为支持细胞增殖和生长动力学的最佳浓度。据研究人员所知,关于XRS在哺乳动物体外胚胎生产系统中经同行评审的评估仍然有限。本探索性研究考察了XRS添加对卵裂率和第7天囊胚发育的潜在影响,旨在为更可重复、伦理合理且可扩展的绵羊胚胎生产基础做出贡献。论文发表在《Veterinary Medicine International》。

**主要关键技术方法**
研究人员从当地屠宰场获取成年母羊卵巢(混合肉用品种,未记录遗传背景),采集卵丘-卵母细胞复合物(COCs)。采用2×2析因设计,在IVM和IVF阶段分别用XRS替代FBS和ESS,形成四个处理组(FBS/ESS、FBS/XRS、XRS/ESS、XRS/XRS),每组≥50个COCs,重复5次。关键方法包括:IVM使用M199培养基添加10% FBS或XRS及FSH、LH等;IVF采用上游法分离活动精子,在改良合成输卵管液(SOF)中添加10% ESS或XRS、肝素等;IVC在SOFaai培养基中进行;第7天囊胚用Hoechst 33342染色计数总细胞数。统计分析采用双因素方差分析(ANOVA)和Tukey HSD检验。

**研究结果**
**3.1 比较FBS或XRS Standard体外成熟24小时后的完全卵丘扩展**
在添加10% FBS或XRS Standard的M199培养基中成熟24小时后,所有COCs均显示完全卵丘扩展,两个补充组之间未观察到显著差异(图1)。

**3.2 IVM和IVF期间XRS添加对绵羊卵母细胞卵裂率和囊胚率的影响**
通过2×2析因设计评估XRS对绵羊IVEP的影响。XRS-XRS方案获得最高卵裂率(88.79%)和囊胚率(22.45%,p < 0.05),其次是FBS-XRS组合。相比之下,包含ESS的方案(XRS-ESS或传统FBS-ESS)产生最低发育指标;FBS-ESS组数值最弱,但差异在统计上不显著(p > 0.05)。具体而言,XRS-XRS组囊胚率较对照组提高2.0倍,FBS-XRS组为15.43%,XRS-ESS组为12.71%,FBS-ESS组为11.00%。

**3.3 血清替代物对囊胚总细胞数的影响**
各组间每个囊胚的总细胞数无差异(p > 0.05),表明XRS添加未影响植入前期的总体细胞增殖。Hoechst染色进一步证实囊胚细胞核均匀分布,支持XRS组胚胎质量未受损的结论。XRS-XRS组囊胚细胞数为127.40±19.438,对照组为122.17±22.311。

**讨论与结论**
讨论部分总结:XRS血清替代物在绵羊IVEP中优于传统血清。在IVM和IVF中完全替代FBS和ESS(XRS-XRS)显著改善了所有关键发育参数,囊胚率达22.45%(p ≤ 0.01 vs. FBS-ESS)。标准化配方可能更符合绵羊卵母细胞的代谢和信号需求。仅替换IVF培养基(FBS-XRS)产生中间结果,提示XRS的益处是累积的;保留ESS则持续抑制发育(≤67.82%卵裂率,≤11.00%囊胚率),这与ESS上调促凋亡和氧化应激通路的转录组证据一致。XRS在提高囊胚产量的同时未降低单个胚胎质量(总细胞数无差异),与牛IVF中其他血清替代物增强囊胚发育能力和冷冻耐受性的工作互补。使用化学成分明确的替代品消除了血清固有的变异性,提高了方案可重复性,符合3Rs原则。绵羊种群中布鲁氏菌(70.7%)、钩端螺旋体(55.2%)和流产衣原体(21.9%)的高血清阳性率凸显了人-动物疾病传播风险,XRS的采用与One Health原则一致。未来研究应聚焦XRS发挥有益作用的分子机制(如生长因子信号和氧化还原稳态)。研究人员还指出,ESS毒性而非XRS限制绵羊囊胚产量:低囊胚形成主要源于ESS在受精培养基中的细胞毒性,通过氧化应激和促凋亡级联反应抑制胚胎发育,尤其在非繁殖季节获取的卵母细胞或形态选择不严格时更为明显。完全替代血清可克服这一障碍。

结论部分翻译:2×2析因实验表明,用XRS完全替代IVM中的FBS和IVF中的ESS(XRS-XRS)显著提高了卵裂率和囊胚率,且不损害总细胞数。因此,这种明确的、无血清的方案为绵羊IVEP提供了一个稳健、可重复且生物安全的平台,并为优化其他家畜物种的胚胎生产方案建立了可转移的参考。
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