《Advanced Science》:Conformational Snapshots of CydDC in a Native Lipid Bilayer Coupling Heme Transport to Antibiotic Resistance
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血红素是众多生物过程中的必需辅因子,包括细菌呼吸。ABC转运蛋白CydDC通过输出血红素促进细胞色素bd末端氧化酶的组装和成熟,并且已被证明与细菌的抗生素耐药性有关。然而,CydDC在类天然脂质双层中的动态构象仍然未解,其耐药机制也尚不明确。本研究确定了纳米盘
血红素是众多生物过程中的必需辅因子,包括细菌呼吸。ABC转运蛋白CydDC通过输出血红素促进细胞色素bd末端氧化酶的组装和成熟,并且已被证明与细菌的抗生素耐药性有关。然而,CydDC在类天然脂质双层中的动态构象仍然未解,其耐药机制也尚不明确。本研究确定了纳米盘重构的CydDC在apo态、核苷酸结合态和血红素结合态的高分辨率冷冻电镜(cryo-EM)结构,为其底物刺激的水解机制提供了直接结构证据。体内和体外表征实验确定了CydDC中对底物结合和转运至关重要的关键残基。生物信息学分析进一步表明CydDC在细菌物种中高度保守。对抗生素耐药菌株中cydC/D的转录组分析显示,cydC/D的表达升高与抗生素耐药性增强相关。此外,血红素结合位点的突变改变了细菌对多种抗生素的敏感性,提示CydDC的输出活性也可能直接参与药物耐药。总之,这些发现为CydDC介导的血红素转运和潜在药物外排提供了机制见解,并为靶向呼吸链的抗菌策略开发提供了依据。
### 研究背景与意义
抗生素耐药性(AMR)的全球性蔓延对公共卫生构成严重威胁,亟需新型抗菌药物。细菌呼吸为病原菌存活与致病提供能量,其中细胞色素bd(cytochrome bd)作为呼吸链末端氧化酶,是细菌在胁迫环境下维持活力的关键因子,且仅在细菌中存在,线粒体中无同源物,因此其组装相关蛋白成为干预细菌能量代谢的潜在靶点。ABC转运蛋白CydDC负责输出血红素以促进细胞色素bd成熟,同时参与硫醇代谢、一氧化氮耐受、pH调节及免疫逃逸等多种生理过程,并在维持细菌氧化还原平衡中发挥核心作用。然而,CydDC在类天然膜环境下的完整动态构象尚未明确,其介导血红素转运与细菌抗生素耐药性之间的关联仍不清楚,不同物种间CydDC的进化关系也未系统表征。为此,研究人员开展了本项工作,论文发表在《Advanced Science》。
### 关键技术方法
研究人员采用了以下主要技术方法:1)生物信息学分析:基于913个原核物种的cydC和cydD直系同源基因进行系统发育重建和序列保守性分析(口袋评分、熵值计算);2)冷冻电镜(cryo-EM)结构解析:将纯化的E. coli CydDC复合物重构入脂质纳米盘(lipid nanodiscs,含E. coli极性脂质)中,分别与ATP、AMP-PNP或血红素孵育,利用Titan Krios显微镜和K2 Summit探测器采集数据,并经RELION和cryoSPARC处理获得apo态、ATP结合态、AMP-PNP结合态及两种血红素结合态(heme-bound I和II)的高分辨率结构;3)ATP酶活性测定:利用ATPase Activity Assay Kit检测不同条件下CydDC的水解活性;4)转录组分析:从GEO数据库获取E. coli耐药菌株数据集(GSE96706),分析12种抗生素耐药菌中cydC/D的表达变化;5)抗生素敏感性测试:利用λ-Red技术敲除MG1655菌株中的cydDC基因,回补野生型或突变体质粒,测量抑菌圈直径;6)生物层干涉法(BLI)测定血红素结合亲和力。
### 研究结果
#### 2.1 CydC/D在物种间具有进化保守性
通过对913个代表原核物种的cydC和cydD直系同源基因进行系统发育和序列保守性分析,研究人员发现两个基因的编码长度高度保守(cydC中位长度574 bp,cydD为588 bp),且系统发育树显示它们在Gammaproteobacteria、Actinomycetes和Methanomicrobia等类群中具有一致的进化轨迹。口袋评分显示平均完整性为0.955±0.038(cydC)和0.944±0.042(cydD),表明结构完整性高。基于保守性图谱,鉴定出多个保守残基作为候选功能位点,用于后续结构及生化验证。
#### 2.2 CydDC在脂质纳米盘中的精确动态重构
研究人员成功捕获了CydDC在脂质纳米盘中的五种cryo-EM结构:apo态(3.71 ?)、ATP结合态(2.82 ?)、AMP-PNP结合态(2.93 ?)、heme-bound I(3.40 ?)和heme-bound II(3.41 ?)。ATP酶活性测定表明脂质纳米盘中的CydDC活性是去垢剂条件下的2.4倍。所有结构均呈现内向开口(IF)构象,但heme-bound I是此前未报道的核苷酸游离血红素结合状态。血红素结合在由CydC的TM2-3和CydD的TM4-6形成的侧腔中,而非中心腔,这与血红素的疏水性一致。
#### 2.3 血红素结合诱导CydDC构象变化
在heme-bound I中,CydD
H312侧链转向侧腔,与CydC
H85共同提供轴向配位;CydC
R81与血红素丙酸基团形成静电作用;CydC
R136上移并与另一丙酸基团相互作用。heme-bound I与heme-bound II的叠加显示CydD的TM4发生剧烈构象变化,控制侧门开闭:heme-bound I中侧门开放,heme-bound II中TM4显著移动并与血红素、TM6及CydD的肘螺旋形成复杂网络,将侧门锁定为稳定闭合构象。从apo到heme-bound I再到heme-bound II,TMD逐步重排,为后续外向开口和底物释放奠定构象基础。
#### 2.4 底物依赖性ATP水解机制
在apo态中,NBDs呈现不对称排列(Walker A与Signature motif间距离不同)。血红素结合后,NBDs逐渐趋于对称。ATP或AMP-PNP结合不能诱导NBD典型二聚化。heme-bound II中NBDs更对称,CydD的C端区域伸入CydC的NBD空间,将其“拉近”。血红素刺激CydDC的ATPase活性,增强水解效率。ATP结合态和heme-bound II结构为底物依赖性ATP水解机制提供了直接结构证据。CydD
R200与CydC
W467的相互作用在heme-bound II中被破坏,释放对TM4的约束,促进NBD重排。
#### 2.5 血红素转运受损影响细菌抗生素耐药性
转录组分析显示,在氨苄西林(AMP)、头孢西丁(FOX)、萘啶酸(NAL)、呋喃妥因(NIT)和四环素(TET)耐药菌株中,cydC和cydD均显著上调。抗生素敏感性测试发现,血红素结合位点突变体(CydC
R81A、CydC
H85A、CydC
T88A、CydC
H132A、CydD
F247A、CydD
H312A等)对NIT、左氧氟沙星(LEV)、美罗培南(MEM)和头孢他啶(CAZ)的敏感性增加。BLI实验表明这些突变体对血红素的亲和力下降(K
D值0.42–0.81 μm,野生型0.23 μm),在1 μm生理浓度下,血红素结合占有率从约81%降至55–70%。
### 讨论与结论
讨论部分指出,CydDC在细菌进化中高度保守,支持其作为广谱抗生素靶点的潜力。通过整合脂质纳米盘结构数据与已有研究,提出了更完整的血红素转运机制模型:apo态侧门开放;初始血红素结合(heme-bound I)引起TMD轻微移位,破坏CydD
R200-CydC
W467相互作用,导致TM4剧烈运动关闭侧门(heme-bound II);同时NBD从不规则排列变为对称,预备ATP结合与二聚化。CydC
R81和CydC
H85负责初始招募,CydC
R136和CydD
H312稳定结合。ATP结合驱动NBD二聚化、TMD旋转、周质出口开放及血红素释放。研究还发现CydDC在NBD不对称性方面不同于TmrAB等转运体,强调了其独特性。关于抗生素耐药性机制,研究人员推测血红素转运受损可能破坏电子传递链驱动的ATP生产,进而影响细胞壁和DNA合成,导致对靶向这些途径的药物敏感性改变;同时提出CydDC可能直接参与药物外排或具有其他底物(如谷胱甘肽)的运输功能。研究结论部分翻译如下:通过整合生物信息学、结构生物学和生物化学实验,本研究系统阐明了CydDC参与血红素转运的关键残基,并进一步探究了血红素转运受损对细菌抗生素耐药性的影响。研究工作为开发针对耐药细菌的新型治疗策略提供了新证据。