LRP1与裂谷热病毒糖蛋白相互作用的生化基础及其在病毒进入中的作用

《Journal of Molecular Biology》:Biochemical basis for LRP1 interaction with Rift Valley fever virus glycoprotein and its role in viral entry

【字体: 时间:2026年06月12日 来源:Journal of Molecular Biology 4.5

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  低密度脂蛋白受体相关蛋白1(LRP1)是裂谷热病毒(RVFV)的宿主进入因子,RVFV属于布尼亚病毒纲(Bunyaviricetes)白纤病毒科(Phenuiviridae)的一种负义RNA病毒。先前的研究表明,RVFV糖蛋白(GnGc)主要与LRP1的簇II

  
低密度脂蛋白受体相关蛋白1(LRP1)是裂谷热病毒(RVFV)的宿主进入因子,RVFV属于布尼亚病毒纲(Bunyaviricetes)白纤病毒科(Phenuiviridae)的一种负义RNA病毒。先前的研究表明,RVFV糖蛋白(GnGc)主要与LRP1的簇II(CLII)和簇IV(CLIV)相互作用以促进病毒进入。然而,RVFV GnGc与LRP1结合的机制尚未完全阐明。在本研究中,研究人员成功绘制了单个LRP1配体结合区域(称为CR结构域)的作用,并确定CR25足以实现高亲和力的RVFV GnGc结合。对LRP1多CR与RVFV GnGc结合的分析还揭示了LRP1结合模式的冗余性。CR25内一个关键芳香族残基的突变导致与RVFV GnGc的结合近乎完全丧失,表明CR25在体外与GnGc结合中起关键作用。研究人员进一步评估了这些CR结构域抑制RVFV-MP12GFP感染的能力,并确定需要两个以上连续的LRP1 CR结构域才能实现体外中和。综上所述,这些结果为LRP1与RVFV GnGc的结合提供了生化基础,并提示类似机制可能在新发和再发病毒(包括布尼亚病毒、甲病毒和黄病毒)的LRP1介导感染中发挥作用。这些结果还突出了截短的LRP1胞外域可用于免疫原设计和治疗靶向。
# 论文解读:LRP1与裂谷热病毒糖蛋白相互作用的生化基础及其在病毒进入中的作用

## 研究背景
裂谷热病毒(Rift Valley Fever Virus, RVFV)是一种有包膜的负义RNA病毒,属于白纤病毒科(Phenuiviridae)白蛉病毒属(Phlebovirus)。RVFV是一种主要经蚊媒传播的人畜共患病毒,在撒哈拉以南非洲、北非和阿拉伯半岛流行,并因蚊虫扩散和人类活动而具有向非流行区传播的高风险。目前针对RVF的人类疫苗和抗病毒对策有限,亟需开发疫苗和治疗方法。RVFV基因组包含小(S)、中(M)、大(L)三个片段,其中M片段编码前体糖多蛋白,经细胞蛋白酶加工为Gn和Gc糖蛋白,形成GnGc异二聚体。RVFV利用GnGc异二聚体复合物进行细胞附着、进入和融合。既往研究已发现低密度脂蛋白受体相关蛋白1(LRP1)是促进RVFV进入的宿主因子,LRP1对SARS-CoV2、奥罗普切病毒(OROV)、登革病毒、发热伴血小板减少综合征病毒(SFTSV)、黄热病毒(YFV)等多种病毒的感染也至关重要。然而,RVFV GnGc与LRP1结合的分子机制尚未完全阐明,尤其是LRP1中富含半胱氨酸重复序列(CRs)的单个结构域如何参与结合及其功能冗余性仍不清楚。为此,研究人员开展了本研究,以明确LRP1 CLIV内单个CR域在介导RVFV糖蛋白结合和病毒进入中的作用。

## 研究内容与结论
本研究通过构建LRP1 CLIV的一系列截短蛋白(包括单CR、双CR和四CR结构域),结合生物层干涉测量法(BLI)、体外下拉实验和RVFV-MP12GFP体外感染中和实验,系统鉴定了CR25作为高亲和力结合RVFV GnGc的关键域,并揭示了多个CR之间的冗余结合模式。突变CR25内保守的关键芳香族残基(W3512)可导致单CR和四CR背景下与GnGc结合近乎完全丧失,但在完整CLIV背景下突变该残基却不影响结合,表明多CR环境中存在互补性。体外感染实验显示,仅单CR或双CR蛋白无法有效中和RVFV感染,而需两个以上连续CR(如四CR或完整CLIV)才能显著抑制病毒进入。AlphaFold3建模进一步预测了CR25与RVFV Gn之间的静电和疏水相互作用界面,并指出在病毒粒子中GnGc异六聚体/异五聚体结构限制下,LRP1 CLIV可能仅与少数CR位点接触。这些结果明确了LRP1与RVFV糖蛋白结合的生化基础,提示类似机制也可能适用于其他依赖LRP1进入的病毒,并为基于截短LRP1胞外域的免疫原设计和抗病毒靶向策略提供了理论基础。该论文发表在《Journal of Molecular Biology》。

## 主要技术方法
研究人员使用了以下关键方法:1)生物层干涉测量法(BLI)——用于定量检测不同CR蛋白与RVFV GnGc或受体相关蛋白(RAP)的结合动力学与亲和力;2)体外下拉实验——通过rProtein A磁珠共沉淀验证蛋白-蛋白相互作用;3)AlphaFold3结构预测——模拟CR25和CR24-28与RVFV Gn的复合物模型,并与近期发表的RVFV GnGc多聚体冷冻电镜结构(PDB 9v6r)进行比较;4)体外感染中和实验与流式细胞术——以小鼠小胶质细胞BV2为靶细胞,用RVFV-MP12GFP病毒评估不同CR蛋白的抑制效果。样本来源包括Expi293F(GnTI?)细胞(哺乳动物蛋白表达)和E. coli BL21细胞(细菌蛋白表达)。

## 研究结果
### 1. LRP1 CR25单独即可高亲和力结合RVFV GnGc
通过BLI筛选LRP1 CLIV的11个单CR蛋白发现,仅CR25在1000 nM浓度下与RVFV GnGc结合,解离常数(KD,app)为140 ± 13 nM。下拉实验和热稳定性分析确认了CR25的正确折叠和结合特异性。

### 2. LRP1多CR与RVFV GnGc结合揭示冗余结合模式
双CR蛋白结合分析表明,含CR25的构建体(如CR25-26)亲和力最高(KD,app = 150 ± 9.1 nM),其他不含CR25的双CR(如CR26-27)结合较弱或不结合。四CR蛋白中,含CR25的CR24-27结合力最强(KD,app = 280 ± 2.1 nM),而CR21-24和CR28-31结合力低一个数量级;值得注意的是,CR21-24在单CR或双CR水平无结合的情况下仍显示可测量结合,提示多CR组合可产生新的结合能力。

### 3. RAP与LRP1 CLIV和CR的结合偏好与RVFV糖蛋白结合相似
为验证CR蛋白的折叠和功能,研究人员使用另一LRP1配体RAP(受体相关蛋白)进行平行实验。mRAPD3同样仅与CR25单CR结合,双CR中CR25-26结合最强(KD,app = 94 ± 23 nM),四CR中CR24-27结合最强(KD,app = 150 ± 43 nM)。RAP与不同CR的结合趋势与RVFV GnGc总体一致,但存在细微差异,体现了CR的配体选择性。

### 4. LRP1 CR结构域足以体外中和RVFV感染
将不同CR蛋白预孵育RVFV-MP12GFP后感染BV2细胞,流式检测GFP阳性比例。单CR(CR25)和双CR(CR25-26)几乎无抑制效果,而四CR(CR24-27)和完整CLIV则显著抑制感染,且随浓度增加抑制增强(p<0.001)。这表明需要两个以上CR才能实现有效中和。

### 5. LRP1 CR25芳香族残基对结合RVFV GnGc至关重要
基于序列保守性,对CR25中四个保守残基(E3498、W3512、D3515、D3519)进行丙氨酸突变。完全突变体CR25EWDD/AAAA及单突变W3512A、D3515A、D3519A均导致与GnGc结合丧失,仅E3498A保留部分结合(KD,app = 600 ± 65 nM)。在感染抑制实验中,所有CR25突变体包括野生型CR25均不能抑制感染,进一步验证了单CR不足以中和病毒。

### 6. LRP1 CR25在孤立条件下可结合GnGc,但在LRP1 CLIV背景下并非必需
将W3512A突变引入四CR(CR24-27)和完整CLIV。CR24-27W3512A完全丧失与GnGc的结合,而CLIVW3512A结合亲和力(KD,app = 77 ± 7 nM)与野生型(88 ± 12 nM)无显著差异。感染抑制实验中突变型与野生型CR24-27和CLIV效果相似,表明在多CR环境中CR25的贡献被其他CR补偿。

### 7. AlphaFold3建模识别可能促进感染的界面
AlphaFold3预测CR25与RVFV Gn的复合物,显示CR25的带电残基(E3498、D3515、E3517、D3518、D3519)与Gn的碱性残基(K378、K395、K411、K412)形成静电相互作用,并由W3512增强疏水接触。将模型与RVFV GnGc六聚体冷冻电镜结构比较发现,CR25在单体或六聚体GnGc中均能结合而无显著空间位阻,但LRP1 CLIV在六聚体背景下与Gn结合时存在明显位阻,提示实际病毒粒子中LRP1仅接触少数CR位点。

## 讨论与结论
本研究通过还原论方法定义了LRP1 CLIV与RVFV糖蛋白结合的分子基础。尽管LRP1各CR之间高度相似,但CR25主导结合出乎意料,揭示了不同CR对病毒糖蛋白结合和感染支持的不同作用。结合RAP实验进一步确认了CR的正确折叠和配体选择性。体外受体阻断实验表明LRP1 CR与RVFV Gn的相互作用具有冗余性和互换性。研究结果支持LRP1 CR域通过静电相互作用(所有LDLR家族成员共通机制)与Gn结合,且需要两个以上CR域才能有效促进病毒进入。这些发现为理解LRP1介导的病毒进入机制提供了重要见解,并为开发抗病毒药物和疫苗免疫原提供了分子框架。论文结论翻译如下:综上所述,这些结果为LRP1结合RVFV GnGc提供了生化基础,并表明类似机制可能在新发和再发病毒(包括布尼亚病毒、甲病毒和黄病毒)的LRP1介导感染中发挥作用。这些结果还突出了截短的LRP1胞外域可用于免疫原设计和治疗靶向。
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